WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 |   ...   | 78 | 79 || 81 | 82 |   ...   | 101 |

Таблица 1. Объёмная доля этанола (V,%), содержание cухих веществ (M., г/100 мл) в экстрактах и их относительная антиоксидантная активность (1/D2) Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios Объ- Кора Корень Листья Трава зве- Трава ча- Корневи- Трава Плоды Трава зуект дуба солод- мать-и- робоя бреца ще аира мяты рябины бровки ки мачехи V 40 40 40 45 40 45 30 75 М 1,12± 2,58 ± 2,98 ± 1,64 ± 1,60 ± 2,39 ± 1,70 ± 3,48 ± 1,64 ± 0,17 0,32 0,37 0,28 0,28 0,31 0,25 0,41 0,1,92 ± 1,75 ± 1,61± 1,47 ± 1,32 ± 1,28 ± 1,22 ± 0,75 ± 0,74 ± 1/D2 0,062 0,060* 0,057*,** 0,045*,** 0,044*,** 0,042* 0,039* 0,021* 0,021* Примечание: * - достоверно (р < 0,05) относительно коры дуба; ** - достоверно (р < 0,05) относительно значения показателя предыдущего объекта.

Облучение приводит к достоверному увеличению МДА в ПЯФ и митохондриях при тенденции к увеличению в микросомах (табл. 2), что свидетельствует о повышении ПОЛ в мембранах клеток и клеточных органелл в результате интенсификации в организме свободнорадикальных процессов. В присутствии обоих экстрактов повышение ПОЛ, вызванное облучением, сдерживается, что указывает на их радиопротекторные свойства. При этом радиопротекторное действие экстракта из коры дуба оказывается более выраженным, чем экстракта из листьев мать-и-мачехи.

Таблица 2. Влияние экстрактов из коры дуба и листьев мать-и-мачехи на содержание МДА в ПЯФ, митохондриях и микросомах печени облучённых животных через 7 суток после экспозиции Объект МДА, нМ/мг белка Контроль Облучение Кора дуба Листья мать-и-мачехи ПЯФ 4,12 ± 0,53 5,36 ± 0,68* 3,39 ± 0,89** 3,48 ± 0,92** Митохондрии 2,65 ± 0,41 3,67± 0,51* 2,65 ± 0,46** 2,36 ± 0,42** Микросомы 2,42 ± 0,55 2,74 ± 0,50 1,50 ± 0,48*,** 2,04 ± 0,Примечание. В табл. 2 и 3: * - достоверно (р < 0,05) относительно контроля; ** - достоверно (р < 0,05) относительно облучения.

Одной из причин, по которой интенсификация ПОЛ в результате облучения тормозится экстрактами, является наличие в них соединений фенольного типа, являющихся активными антиоксидантами. Их содержание в экстрактах из коры дуба и листьев мать-и-мачехи составляет 530 мг и 159 мг на 1 г сухого вещества соответственно.

Другая причина заключается в том, что экстракты активируют ферменты антиоксидантной защиты – каталазу и глутатионредуктазу и повышают уровень восстановленного глутатиона (табл. 3), который нейтрализует свободные радикалы.

Таблица 3. Влияние экстрактов из коры дуба и листьев мать-и-мачехи на активность каталазы, глутатионредуктазы и содержание восстановленного глутатиона в гомогенатах печени облучённых животных через 7 суток после экспозиции Показатель Контроль Облучение Кора дуба Листья мать-имачехи К, (мкМ Н2О2/ мг белка)/ мин 144,4 ± 14,0 155,5 ± 12,8 163,0 ± 10,6* 249,0 ± 11,3*,** ГР, (нМ NАDFН2/ мг белка)/ мин 49,7 ± 4,1 43,0 ± 3,0 53,5 ± 7,6** 64,0 ± 17** Содержание GSH, мг % 84,3 ± 8,0 104,9 ± 10,5* 100,2 ± 8,7* 101,3 ± 9,3* Повышенный уровень восстановленного глутатиона сохраняется длительное время и через 2 месяца после экспозиции его величина в гомогенатах печени облучённых животных составляет (67,5 ± 5,2) мг % по сравнению с (58,9 ± 4,6) мг % у необлучённых контрольных животных.

Полученные результаты свидетельствуют о перспективности углублённого изучения действия исследованных экстрактов в качестве активаторов системы антиоксидантной защиты, способных модифицировать последствия лучевого поражения.

Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios ВЛИЯНИЕ ПРЕДПОСЕВНОЙ МИКРОВОЛНОВОЙ ОБРАБОТКИ НА НЕКОТОРЫЕ ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИчЕСКИЕ ПРОЦЕССЫ МЕЛИССЫ ЛЕКАРСТВЕННОЙ И АЛТЕЯ ЛЕКАРСТВЕННОГО Пушкина Н.В., Мазец Ж.Э.

Белорусский государственный педагогический университет им. М.Танка, г. Минск Эффективное использование адаптивного потенциала культивируемых растений в обеспечении устойчивого роста продуктивности, энергоэкономичности и природоохранности растениеводства имеет решающее значение. При этом применение удобрений, пестицидов, орошения и других факторов оптимизации абиотической и биотической среды рассматривается в качестве важного, но лишь вспомогательного средства. Современное растениеводство базируется на наиболее рациональном использование адаптивного потенциала культивируемых растений, обеспечивает перевод этой отрасли на принципиально новый уровень наукоемкости, открывая реальную возможность широкого практического использования знаний из других наук для повышения величины и качества урожая.

Регуляция роста и развития растений связана с углубленным изучением возможности управления жизненными процессами и направлена на более полную реализацию потенциальных возможностей, заложенных в генотипе, что является важным резервом повышения эффективности растениеводства. В этом отношении особый интерес представляет поиск таких способов регуляции роста и развития растений, которые бы оказывали наибольший эффект при наименьших экономических затратах [1].

Как показали проведеные ранее исследования, физические способы предпосевной обработки могут рассматриваться в технологии промышленного возделывания как альтернатива традиционным химическим и биологическим методам их предпосевной обработки.

В связи с этим целью данной работы является изучение влияние предпосевной микроволновой обработки на некоторые физиолого-биохимические процессы мелиссы лекарственной и алтея лекарственного.

Семена исследуемых культур были обработаны микроволновым излучением из расчета на их объем на расчетной длине волны внешнего воздействия 5,6 миллиметра с экспозицией 7 минут. Микроволновая обработка семян производилась в Институте ядерных проблем БГУ на лабораторной установке для обработки семян различных сельскохозяйственных культур в широком частотном диапазоне (от 37 до 120 ГГц) [2].

Исследования проводились в условиях полевых и лабораторных опытов.

Полевой мелкоделяночный опыт проводился на базе ЦБС НАН Беларуси. Для каждой исследуемой культуры были разбиты делянки 1 x 1м в пяти кратной повторности, с защитной полосой 50 см у каждой стороны. Семена мелиссы лекарственной и алтея лекарственного высаживались по 100 шт контрольных и опытных образцов через 30 см. В ходе опыта учитывалась всхожесть исследуемых культур [3].

В дальнейшем растения из полевого опыта второго года вегетации использовались для проведения биохимических исследований. Для этого были взяты образцы контрольных и опытных растений второго года вегетации, в которых определялось содержание фенольных веществ: общей фракции фенолов, флавонолов, катехинов и лейкоантоцианов, аскорбиновой кислоты.

Определение фенольных веществ в растениях. Навеску растительного материала (1,0 г) растирали в ступке и экстрагировали многократно небольшими порциями 70 % спирта до обесцвечивания. Далее брали 0,5 мл готового (исходного) экстракта и добавляли 1 мл реактива Фолин-Чокольтеу, 10мл 10% Na2CO3 медленно доводили дистиллированной водой до метки 50 мл и взбалтывали. Через 30 мин измеряли на ФЭКе с фильтром №9 (=630 нм), кювета 1 см [4].

Определение флавонолов в растениях мелиссы лекарственной проводили следующим образом. Из исходного экстракта для определения фенолов отбирали 10 мл, к которым добавляли 10 мл разбавленной в соотношении 1:4 соляной кислоты и 5 мл стандартного раствора формальдегида (8мг/мл). Колбу закрывали пробкой и оставляли на 24 часа при комнатной температуре. Через 24 часа проводили фильтрацию и определяли как общие фенольные соединения [4].

Определение лейкоантоцианов и катехинов. Из исходного экстракта для определения фенолов в пробирки отбирали в количестве 0,5–1 мл прибавляли по 5 мл 1% ванилинового раствора в концентрированной HCl. Через 3 мин производили измерение на ФЭК-56 с фильтром №5 (= 490 нм) в кювете 1 см [4].

Определение аскорбиновой кислоты. Навеску растительного материала (5,0 г) измельчали, заливали раствором соляной кислоты (20 см3), а затем растирали до образования гомогенной массы. Полученную массу сливали из ступки в мерную колбу на 100 см3, ступку споласкивали несколько раз 1%-й щавелевой кислотой и сливали в ту же мерную колбу. Содержимое колбы доводили до метки 1%-й щавелевой кислотой и закрывали пробкой, сильно встряхивали и давали отстояться 5 мин. Затем содержимое колбы отфильтровывали в колбу.

Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios Для титрования вытяжек из полученного фильтрата отбирали в пипетки две параллельные порции по 10 – 20 см3, наливали в химический стаканчик объемом 50см3 и титровали раствором 2,6-дихлорфенолиндофенола до появления ясно розового окрашивания, не исчезающего в течение 0,5-1 мин.Далее полученные данные рассчитывались по формуле (1).

x= (100VatV)/(V1n) (1) где Va – объем краски; t – объем титра; V – общий объем вытяжки; V1 – объем экстракта; n – навеска (г) [4].

В результате полевых исследований было выявлено, что всхожесть составила у мелиссы лекарственной 40% в контроле, и 60% после микроволнового воздействия. Что же касается алтея лекарственного, то у него полевая всхожесть в контроле была – 28%, в опыте – 46%.

В результате биохимических исследования установлено, что в контрольном образце мелиссы лекарственной (Melissa officinalis L.) содержится 2604,9 мг% фенольных соединений, в опытном мг%. Таким образом, в обработанном образце общее содержание фенольных веществ увеличилось на 1260,1 мг% или на 48,3 %.

Установлено, что в контрольном образце содержится 3,45 мг% флавонолов, а в опытном - 4,25 мг%, что на 23% больше в контроле.

В ходе опыта показано, что в контрольном образце содержится 149 мг% суммарной фракции катехинов и лейкоантоцианов, а в опытном – 164,8 мг %, что на 10% больше, чем в контроле (табл. 1).

Таблица 1. Влияние ЭМИ2 обработки на содержание соединений фенольной природы в листьях Melissa officinalis L.

Вариант Содержание веществ мг% на сухое вещество Фенольные соединения Флавонолы катехины + лейкоантоцианы Контроль 2604,9±4,2 3,45±0,28 149±2,ЭМИ 3865±6,3 4,25±0,34 164,8±3,В ходе исследования алтея лекарственного определено, что фенольных соединений в контрольном образце содержится 264 мг%, а в опытном – 272мг%, что 8 мг% или на 3% больше чем в контроле, т.е. в пределах ошибки опыта. Так же установлено, что в контроле содержание флавонолов составляет 44 мг%, в опыте – 46мг%, что на 2мг% больше чем в необработанном образце. Суммарное содержание катехинов и лейкоантоцианов в контроле составляет 43,5 мг%, а в опыте 42,3 мг%, что на 1,2 мг% меньше чем в опытном образце. (Табл.2) Таблица 2. Влияние ЭМИ2 обработки на содержание соединений фенольной природы в листьях Althaea officinalis L.

Вариант Содержание веществ мг% на сухое вещество Фенольные соединения Флавонолы катехины + лейкоантоцианы Контроль 264±2,66 44±0,66 43,5±0,ЭМИ 272±2,2 46±0,67 42,3±0,Кроме того, были проведены биохимические исследования по количественному содержанию аскорбиновой кислоты в изучаемых культурах.

В результате исследования установлено, что в контрольном образце алтея лекарственного содержится 270 мг% аскорбиновой кислоты, а в опытном – 465 мг%., что на 72,2% больше, чем в контроле. У мелиссы лекарственной в контроле и опыте содержание аскорбиновой кислоты было одинаковым – мг%.(Табл.3) Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios Таблица 3. Влияние ЭМИ 2 обработки на содержание аскорбиновой кислоты в листьях Althaea officinalis L. и Melissa officinalis L.

Вариант Содержание веществ мг % на сухое вещество Контроль Опыт % к контролю Алтей лекарственный 270±6,6 465±10 172,Мелисса лекарственная 40±0,5 40±0,5 В результате проведенных исследований видно, что предпосевная микроволновая обработка стимулирует ростовые процессы исследуемых лекарственных культур. Под влиянием обработки увеличивается полевая всхожесть, и при этом не ухудшается качество лекарственного сырья.

Литература:

1.Деева, В.П. Регуляторы роста растений и эффективность их применения /В.П.Деева. – Минск:

Белорусская наука, 2008. – 132с.

2. Karpovich, V.A., Rodionova, V.N., Slepyan, G.Ya. Application of microwave energy in modern biotechnologies // The Fourth International Kharkov Symposium “Physics and engineering of millimeter and sub-millimeter waves”: Symposium Proceedings/ National Academy of Sciences of Ukraine. – Kharkov, 2001. – P.909 – 910.

3.Доспехов, Б.А. Методика полевого опыта/ Б.А. Доспехов. – Москва: «Колос» 1978г., 415с.

4. Сейдер, А.И, Даутунашвили, Е.Н. ВНИИВиВ (Магарач). Виноделие и виноградорство СССР./ А.И. Сайдер, Е.Н. Даутунашвили – № 6.– 1972. – С. 31-34.

АЛЕЛОПАТИчНА АКТИВНІСТЬ ЛИСТКІВ BEtULa pEnDULa roth. ЗА РІЗНИХ УМОВ ВОДОЗАБЕЗПЕчЕННЯ Росіцька Н.В.

Національний ботанічний сад ім. М.М. Гришка НАН України, м. Київ Проблема адаптації рослин до різних негативних природних чинників набуває все більшої актуальності. Відома роль алелопатичних виділень у формуванні стійкості рослин до біотичних і абіотичних факторів [1]. У результаті багатьох складних процесів формується алелопатичний режим ґрунту, який суттєво змінюється під дією стрес-факторів, в т.ч. і посухи. Детальне вивчення цих процесів дозволяє визначити механізми формування стійкості рослинного організму.

Останнім часом дедалі частіше спостерігається пригнічення розвитку деревних рослин, в т.ч. і берези через посуху. У літературних джерелах практично відсутні дані щодо впливу водного дефіциту на алелопатичну активність рослин Betula pendula Roth. Проведення цих досліджень і слугувало метою нашої роботи. Експериментальна робота виконувалась у відділі алелопатії Національного ботанічного саду ім.

М.М. Гришка НАН України протягом 2008-20010 р.р. Об’єкти досліджень – одновікові рослини берези повислої, які зростали з дотриманням необхідної агротехніки на колекційній діляеці (контроль), рівень зволоження 75 % від повної вологоємності ґрунту, та без будь-якого догляду на ботаніко-географічній ділянці „Ліси рівнинної частини України” (дослід), рівень зволоження – 45 % від повної вологоємності ґрунту.

Алелопатичну активність визначали загальноприйнятим методом біологічних тестів А.М. Гродзінського [1]. Як модель рослинних виділень використовували водні екстракти (у концентрації 0,1%, 0,02%, 0,01%) листків B. pendula. Тест об’єкт – крес-салат (Lepidium sativum, сорт «Ажур»). За контроль (100%) приймали приріст коренів тест-об’єктів в дистильованій воді. Водний дефіцит (ВД) листків аналізували за І.П.

Григорюком та ін. [3].

Pages:     | 1 |   ...   | 78 | 79 || 81 | 82 |   ...   | 101 |



© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.