WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 |   ...   | 66 | 67 || 69 | 70 |   ...   | 101 |

Согласно результатам исследования влияния комплексов цинка с дикарбоксильными кислотами и имидазолом на содержание каротиноидов, была установлена возможность использования данных комплексов в качестве регуляторов синтеза каротиноидов в биомассе дуналиеллы. Следует отметить, что для всех исследуемых соединений цинка с органическими кислотами и имидазолом оптимальной явилась концентрация 10 мг/л.

Наибольший эффект на биосинтез каротиноидов оказал комплекс [Zn(COO(CH2)4COO)2(C3N2H4)(H2O)2]•nH2O способствующий увеличению содержания каротиноидов в вышеуказанной оптимальной, концентрации в 1,55 раза по сравнению с контролем. Учитывая полученные данные, можно отметить, что комплексы цинка с дикарбокисльными кислотами и имидазолом способствуют более значительному увеличению содержания каротиноидов в биомассе дуналиеллы по сравнению с комплексами марганца с дикарбокисльными кислотами и имидазолом. Этот факт может объясняться тем, что в данном случае на Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios процессы биосинтеза каротиноидов оказывает влияние как природа лигандов, так и металл, входящий в состав комплексов.

Положительный эффект, оказываемый комплексными соединениями цинка на содержание каротиноидов, во многом объясняется тем, что цинк является кофактором некоторых важных ферментов цепи биосинтеза каротиноидов. Установлено, что в состав энзима ДМАПФ – изомеразы, катализирующего одну из основных реакций изопреноидного пути - реакцию превращения ИППФ в ДМАПФ, входят ионы Zn2+ [3]. Другой важный энзим, участвующий в реакции синтеза геранил геранилпирофосфата, фарнезилтрансфераза также содержит в активном центре ионы Zn2+ [14-16].

Биомасса зеленой микроводоросли Dunaliella salina с повышенным содержанием каротиноидов может быть рекомендована для получения пищевых биодобавок с дальнейшим применением для лечения и профилактики онкологических, инфекционных и сердечно-сосудистых заболеваний. Преимущества пищевых биодобавок на основе биомассы дуналиеллы с повышенным содержанием каротиноидов (в частности 9 - цис изомеров - каротина) состоят в том, что они являются более эффективными и обладают большим спектром антиоксидантного воздействия, чем биодобавки на основе искусственно синтезированного - каротина.

Abd El-Baky H. et. al. Production of carotenoids from marine microalgae and its evaluation as safe food colorant and lowering cholesterol agent. In: Journal of Agriculture and Environmental Science. 2007, vol. 6, no.

1, p. 792-800.

Ben-Amotz, A, Avron, M. The biotechnology of cultivating the halotolerant alga Dunaliella salina. Trends in Biotechnology, 1990, vol. 8, no. 1, p. 121 - 126.

Carrigan C., Poulter D. Zinc is an essential cofactor for type I isopentenyl diphosphate: dimethylallyl diphosphate isomerase. In: J. Am. Chem. Soc. 2003, no.30, p. 9008-Cogdell R., Gardiner A. Functions of carotenoids in photosynthesis. In: Methods Enzymology. 1993, vol.

214, no. 3, p. 185-193.

Dere,., Gne, T., SIVACI, R. Spectrophotometric Determination of Chlorophyll A, B and Total Carotenoid Contents of Some Algae Species Using Different Solvents. Tr. J. of Botany, 1998, vol. 22, p. 13 - 17.

Frank H., Cogdell, R J. Carotenoids in photosynthesis. In: Photochemistry and photobiology. 1996, vol. 63, no. 3, p. 257-264.

Garca-Gonzlez, M., Moreno, J., Manzano, J. Production of Dunaliella salina biomass rich in 9-cis-carotene and lutein in a closed tubular photobioreactor. Journal of Biotechnology, 2005, vol. 115, no. 12, p. 81 – Lee I-M. et al. Beta-carotene supplementation and incidence of cancer and cardiovascular disease: In: J. of the Cancer Institute. 1999, vol. 91, no.24, p. 2102-2106.

Raja R. et. al. Perspective on the Biotechnological Potential of Microalgae, Critical Reviews in Microbiology, 2008, vol. 34, no. 2, p. 77-Raja R. et.al. Exploitation of Dunaliella for beta - carotene production. In: Appl. Microbiol. Biotechnol.

2007, vol. 74, no. 3, p. 517-523.

Rudic V. i alii. Sinteza orientat a carotenoizilor i ficobiliproteidelor de ctre unele microorganisme fototrofe. n: Anale t USM. 2000, p.50-54.

Rudic, V. Ficobiotehnologie - cercetri fundamentale i realizri practice. Editura Elena - VI, Chiinu, 2007, 364 p.

Sies, H., Stahl, W. Vitamins E and C, beta-carotene, and other carotenoids as antioxidants. American journal of clinical nutrition, 1995, vol. 62, no. 6, p. 1315 - 1321.

Sousa S. Farnesyltransferase-new insights into the zinc-coordination sphere paradigm. In: Biophys. J.

2005, vol. 88, no. 1, p. 483-Sousa, S., Fernandes, P., Ramos, M. Farnesyltransferase - new insights into the zinc-coordination sphere paradigm: evidence for a carboxylate-shift mechanism. Biophys. J., 2005, vol. 88, no. 1, p. 483 - 494.

Tobin D. et. al. Structural characterization of the zinc site in protein farnesyltransferase. In: Journal of the American Chemical Society. 2003, vol. 125, no. 33, p. 9962-9969.

Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios ВПЛИВ КОМПОНЕНТІВ СЕРЕДОВИЩА НА КАТАЛАЗНУ АКТИВНІСТЬ FIStULIna hEpatIСА SChaEFF. ЕХ Fr.

Гербутова А.К.

Донецький національний університет, біологічний факультет, м. Донецьк Результати багаторічних фундаментальних досліджень життєдіяльності макроміцетів, в особливостей їх росту і розвитку, характеру механізмів метаболічної і ферментативної активності показали можливість використання грибів для створення профілактичних і лікарських засобів. Отже, вивчення процесів метаболізму базидіоміцетів – перспективних об’єктів біотехнології фізіологічно активних речовин є одним з важливих напрямків розвитку сучасної біології [4, 5].

Каталаза (КФ 1.11.1.6) широко розповсюджений у природі фермент, його активність спостерігається у всіх організмів, за виключенням облігатних анаеробів. Сутність каталітичної дії каталази полягає в розкладанні пероксиду водню, що утворюється при дисмутації супероксидного аніону і при аеробному окисненні відновлених флавопротеїдів з виділенням молекулярного кисню. Каталаза відноситься до ферментів‚ що найбільш довго зберігають свою високу активність‚ майже не потребує енергії активації, швидкість реакції цього ферменту обмежується лише швидкістю дифузії субстрату до активного центру.

Тому, каталаза поряд з іншими ензимами‚ у численних дослідах використовується як маркерний фермент, що адекватно відображає реакцію організмів на зміну умов (факторів) живильного чи навколишнього середовищ. З’ясовано, що каталаза разом з пероксидазами відіграють відповідну захисну роль антиоксидантної системи організму на несприятливі умови життєдіяльності і інфекції при утворенні токсичних сполук реакцій перекисного окиснення ліпідів [2].

Сутність каталітичної дії каталази полягає в розкладанні пероксиду водню, що утворюється при дисмутації супероксидного аніону і при аеробному окисленні відновлених флавопротеїдів з виділенням молекулярного кисню [2].

Існує зростаючий дефіцит тваринної сировини – основного джерела промислових ензимів, що обумовив вибір ферменту каталази базидіоміцетів, як об’єкта дослідження. Проведений нами первинний скринінг активних продуцентів серед великої групи базидіоміцетів дозволив отримати штами з високим рівнем каталазної активності в культурі [1, 5].

Метою роботи було вивчення впливу вуглецевмісних компонентів живильного середовища на каталазну активність культури Fistulina hepatica.

Об’єктом досліджень був штам Fh-08 гриба F. hepatica, що зберігається в колекції культур шапинкових грибів кафедри фізіології рослин ДонНУ. Штам культивували при 25°С в колбах Єрленмейера ємністю 250 мл на глюкозо-пептонному живильному середовищі об’ємом 50 мл (рН0 = 5,3) [1]. Штам культивували на живильних середовищах, які містили 14 джерел вуглецевого живлення, середовище з глюкозою використовували в якості контролю. Інтенсивність каталазної активності (КА) в культуральному фільтраті (КФ) і міцеліальному гомогенаті (МГ) вимірювали на 10-і та 15-і сутки росту за методом, який базується на визначенні інтенсивності забарвлення продукту реакції перекису водню з молібдатом амонія [2]. Отримані експериментальні дані обробляли за методом дисперсійного аналізу, порівняння середніх арифметичних – по методу Дункана [3].

Результати дослідів дозволяють зробити наступні висновки. Вуглецевмісні компоненти живильного середовища суттєво впливають на каталазну активність штаму Fh-08 гриба F. hepatica. Максимальне значення каталазної активності міцелію спостерігається на живильному середовищі з дульцитом, а мінімальне – з арабінозою. Порівняння експериментальних даних показало, що максимум ферментативної активності культурального фільтрату спостерігається в середовищі з ксилозою, мінімум - з лактозою та манітом. Не зафіксована КА як в міцелії, так і в КФ на середовищах, що містили щавлеву, бурштинову, яблучну та саліцилову кислоти.

Література Дудка И.А. Методы экспериментальной микологии. Справочник / И.А. Дудка, С.П. Вассер, И.А.

Элланская. – К.: Наук. Думка, 1982. – 550 с.

Патент 39243 А України. Спосіб визначення каталазної активності базидіоміцетів / Федотов О.В., Гавриленко Г.В. Заявка № 2000116560, від 21.11.00, кл. 7С12N9/58, Бюл. № 5, від 15.06.01.

Приседський Ю.Г. Статистична обробка результатів біологічних експериментів / Ю.Г. Приседський.

– Донецьк: Кассиопея, 1999. – 210 с.

Соломко Э.Ф. Перспективы использования высших базидиомицетов в микробиологической промышленности / Э.Ф. Соломко, И.А. Дудка // ВНИИСЭНТИ: Обзорная информация. Сер. 3. – М., 1985. – с.

Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios Fedotov O.V. Wood–destroying fungi as bio–sources of ferments for medicinal and nutritional purposes / O.V. Fedotov // Plant and Microbial Enzymes: isolation, characterization and biotechnology applications (2–5th July, 2007, Tbilisi, Georgia). – Tbilisi: Myza, 2007. – P. 52–61.

СОДЕРЖАНИЕ БИОЛОГИчЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ В ЛЕКАРСТВЕННЫХ И ЭФИРНОМАСЛИчНЫХ РАСТЕНИЯХ ГОР КРЫМА Гребенюк Г.Е. 1, Яковенко М.Г. 2, Россихин В.В. 3, Кривицкая И.А.Крымский гуманитарный университет, г. Симферополь, Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина, г. Харьков Харьковская медицинская академия последипломного образования, г. Харьков Разработка подробных рекомендаций для организации рационального сбора растительного сырья включает в себя ряд важнейших параметров /1-3/, одним из которых является выявление фазы и времени сбора сырья, характеризующегося максимальной урожайностью и количественным накоплением действующих веществ. Это позволяет собрать наиболее оптимальное количество лекарственного и эфирно-масличного сырья с наибольшим содержанием биологически активных соединений. Установление динамики накопления действующих веществ по фазам вегетации проводится экспериментально для каждого вида растения, а также одного и того же вида в различных почвенно-климатических условиях /4-6/.

Если для фармакопейных видов лекарственных растений и эфироносов, используемых в народном хозяйстве, ранее были определены оптимальные фазы заготовки растительного сырья [2, 4, 5, 7], то для впервые вводимых в практическое использование видов эти параметры неизвестны.

На территории гор Крыма проведен сбор сырья некоторых лекарственных и эфирно-масличных растений по фазам вегетации (отрастание, бутонизация, цветение, плодоношение). Химический анализ был проведен на базе кафедры биотехнологии и аналитической химии НТУ «ХПИ».

Результаты исследования для 18 эфирно-масличных растений показали, что обычно максимум накопления приходится на фазы бутонизации – массового цветения (таблица 1) [4].

Таблица 1. Динамика накопления и характеристика эфирных масел некоторых эфирно-масличных растений гор Крыма Вид, сырье Фаза вегетации Количественное накопление Цвет эфирного эфирного масла, % масла Achillea nobilis L., трава Отрастание 0,11 Светло-желтый Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Thymus rasitatus Klok., Отрастание 0,12 Светло-желтый трава Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Ziziphora clinopodioides Отрастание 0,24 Светло-желтый Lam., трава Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Thymus marschallianus Отрастание 0,32 Ярко-желтый Willd., трава Бутонизация 0,Цветение 1,Плодоношение 0,Hyssopus ambiguus (Trautv.) Отрастание - Насыщенно-желIljin, трава Бутонизация 0,60 тый Цветение 0,Плодоношение 0,Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios Ferula soongarica Pal.ex Отрастание - Зеленовато-желSpreng., трава Бутонизация - тый Цветение 1,Плодоношение 1,Libanotis buchtormensis Отрастание - Светло-зеленый (Fisch.) DC., трава/корни Бутонизация Цветение 1,0 / 0,Плодоношение 0,9 / 0,Juniperus sabina L., хвоя Отрастание 0,5 Светло-зеленый Бутонизация Цветение 0,Плодоношение 0,Artemisia pontica L, трава Отрастание 0,05 Голубой Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение Artemisia frigida Willd., Отрастание - Светло-желтый трава Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Artemisia nitrosa Web.ex Отрастание - Бледно-желтый Stechm. Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Artemisia vulgaris L., трава Бутонизация 0,1 Синий Цветение 0,Плодоношение Tanacetum vulgare L., трава Отрастание 0,1 Желто-зеленый Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Salvia stepposa Schost., Отрастание - Светло-желтый трава Бутонизация 0,Цветение 0,Плодоношение 0,Heracleum sibiricum L., Отрастание - Светло-желтый трава Бутонизация Цветение 1,Плодоношение 0,Только для 1-го вида (Ferula soongarica) накопление эфирного масла оказалось выше в фазу плодоношения, что можно объяснить значительным его накоплением в плодах растения.

Наибольшее накопление эфирного масла отмечено для представителей семейства зонтичных выше 1,0 %, на втором месте находятся виды из семейства Губоцветных и Кипарисовых – от 0,5 до 1,1 %. На последнем, среди исследованных объектов находятся виды семейства сложноцветных, накопление эфирного масла в которых обычно не превышает 0,2-0,4 %.

Изученные эфирно-масличные виды по накоплению эфирного масла были условно разделены на группы:

-эфироносы с высоким количественным содержанием эфирного масла (от 0,8 до 1 % и выше) -эфироносы со средним содержанием эфирного масла (от 0,3 до 0,8 %);

-эфироносы с низким содержанием эфирного масла (ниже 0,3 %).

В первую группу были включены Thymus rasitatus, Ziziphora clinopodioides, Libanotis buchtormensis, Juniperus sabina, Heracleum sibiricum.

Во вторую группу вошли: Achillea nobilis, Thymus rasitatus, Hyssopus ambiguus, Artemisia frigida, Tanacetum vulgare, Salvia stepposa, Nepeta pannonica, Lophanthus schrenkii.

В третью группу были включены: Artemisia pontica, Artemisia nitrosa.

Pages:     | 1 |   ...   | 66 | 67 || 69 | 70 |   ...   | 101 |



© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.