WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 |   ...   | 65 | 66 || 68 | 69 |   ...   | 101 |

ZnSO4•7H2O – 0,00022; CuSO4•5H2O – 0,00008; MoO3 – 0,000015, 1 мл 0,09M раствора FeHEDTA и дистиллированная вода до 1л при температуре 30 - 350C, pH 9,5-10,0 и при постоянном освещении. В качестве регуляторов содержания фикобилипротеинов были добавлены координационные соединений Cu(II) Согласно данному способу, содержание фикобилирпотеинов в биомассе цианобактерии Spirulina platensis составляет (27,11-30,33% АСБ). Такая биомасса спирулины может применяться в качестве источника биоактивных веществ, применяемых в фармацевтической промышленности, медицине, косметологии.

Список литературы:

Abdel-Monem M. M., Anderson M. D. Copper complexes of alfa-amino acids that contain terminal amino groups, and their use as nutritional supplements. 1990. US Patent № 4948594.

Batr Ludmila, Rudic Valeriu, Bulimaga Valentina, Zosim Liliana, Elenciuc Daniela, Gulea Aurelian, Bejenari Natalia, apcov Victor. „Procedeu de cultivare a cianobacteriei Spirulina platensis”. Cerere de brevet s2009 0211 din 2009.11.13, Hotrre de acordare a BI nr. 6321 din 2010.01.Belay A. The potential application of Spirulina (Arthrospira) as a nutritional and therapeutic supplement in health management. J. Am. Nutraceutical Assoc. 2002, vol. 5, p. 27-48;

Blinkova L., Gorobets O., Baturo A. Biological activity of spirulina. Zh. Mikrobiol. Epidimiol. Immunobiol., 2001, no. 2, p. 114-118;

Boussiba S., Richmond A. C-phycocyanin as a storage protein in the blue-green alga Spirulina platensis.

Arch. Microbiol. 1980, no.125, p.143-147;

Ciumac D. Studiul modificrii componenei biochimice a cianobacteriei Spirulina platensis la cultivarea n prezena compuilor coordinativi ai Cr(III). Autoreferatul tezei de doctor n biologie, 2008, 26 p.

Farukh Arjmand, Bhawana Mohani, Shamim Ahmad. Synthesis, antibacterial, antifungal activity and interaction of CT-DNA with a new benzimidazole derived Cu(II) complex. European Journal of Medicinal Chemistry, 2005, vol. 40, no. 11,, p. 1103-1110;

Gulea A, Poirier D., Pahonu E.-M., apcov V., Bejenari N., Roy J. (MD). “Inhibitorii leucemiei umane mieloide n baza compuilor coordinativi ai cuprului(II) cu salicilidentiosemicarbazidele substituite”. Brevet de invenie 3890MD, BOPI Nr. 4, Gulea Aurelian, apcov Victor, Graur Vasile, Batr Ludmila, Rudic Valeriu, Bulimaga Valentina. „Hidratul de 2-{[2-(2-hidroxietilamino)-etilimino]-metil}-benzen-1,4-diolo(2-)cupru i procedeu de cultivare a cianobacteriei Spirulina platensis cu utilizarea acestuia”. Hotrre de acordare a BI nr. 6325 din 2010.01.22;

Hemlata Tasneem Fatma. Screening of Cyanobacteria for Phycobiliproteins and Effect of Different Environmental Stress on Its Yield. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 83, Nr. 4, 2009, Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios 509-515.

Rudic V. Aspecte noi ale biotehnologiei. – Chiinu, 1993, 140 p.

Rudic V. Ficobiotehnologie – cercetri fundamentale i realizri practice. Editura Elena-VI, Chiinu 2007, 364 p.;

Rudic V., Bulimaga V. Procedeu de obinere a ficocianinei. Brevet de invenie 1008MD, BOPI Nr.8, 1998.

Rudic V., Gudumac V., Bulimaga V., Dencicov L., Ghelbet V., Chiriac T. Metode de investigaii n ficobiotehnologie. CE USM, 2002, 61p.

Rudic Valeriu, Turt Constantin, Bulimaga Valentina, Dencicov Lidia, Chiriac Tatiana, Lzrescu Ana.

Procedeu de cultivare a cianobacteriei Spirulina platensis. Brevet de invenie Nr. 2386MD, BOPI Nr.2, 2004, p.45.

НАКОПЛЕНИЯ ПРОСТЫХ ЛИПИДОВ И ОСОБЕННОСТИ МОРФОЛОГИИ КЛЕТОК ПРИ ЖЕСТКОМ ОПУШЕНИИ ПШЕНИЦЫ Богданова Е.Д1., Яковенко М.Г.2, Россихин В.В.3, Корниенко Е.М.Харьковский университет механизации и электрификации сельского хозяйства, г. Харьков Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина г. Харьков Харьковская медицинская академия последипломного образования, г. Харьков Трихомы листовой пластинки служат производными эпидермиса и выполняют в растениях целый ряд важнейших функций [1]. Среди них, например, запасание влаги, защита от иссечения в результате ветровой эрозии почв, вредителей и секреция вторичных метаболитов. Селекционно-исследовательский интерес к опушенным формам пшеницы можно легко объяснить возрастанием роли таких проблем, как давление абиотических и биотических стрессоров и необходимость эффективной регуляции продукционного процесса, исчерпание почвенных ресурсов при сохранении потребности в увеличении урожаев, усиление сопутствующих загрязнений генетического материала в процессе гибридизации и необходимость контроля случайных загрязнений с помощью определенных фенотипических маркеров. Основные хозяйственноценные формы пшеницы в Восточной Украине имеют мягкий тип опушения [2]. Но противодействовать растущему комплексу неблагоприятных факторов способствует новый, жесткий тип опушения листовой пластинки.

Целью данного исследования является морфофизиологический и биохимический анализ жестких клеток опушения (трихом) листовой пластинки для применения имеющегося генетического материала-носителя такого опушения, повышения устойчивости и продуктивности отечественных сортотипов пшеницы.

Для выполнения полевых наблюдений, микроскопического и хроматографического анализа были высеяны оригинальные константные отечественные формы пшеницы - носители жесткого опушения. Ранее метод получения трихом арабидопсиса [3] был успешно использован для экстракции клеток опушения из пшеницы и других высших растений. В ходе данной работы также проведен анализ простых липидов из листьев. Анализ жесткого опушения у ряда форм показывает, что этот тип опушения сохраняется на протяжении всего периода вегетации и не проявляет ярусной дискриминации, в то время как мягкое опушение наиболее интенсивно развивается в начальных фазах онтогенеза (всходы и кущение) и более интенсивно в нижних ярусах листьев по сравнению с верхними. Такое различие является, с нашей точки зрения, ключевым для двух типов опушения. Сравнительный анализ удлинения жестких и мягких трихом листовой пластинки устанавливает, что клетки жесткого типа удлиняются в тех же начальных фазах гораздо более интенсивно, чем клетки мягкого типа. Степень удлинения трихом в этот период на на 16% превышает относительное удлинение контрольных клеток мягкого опушения. Из данных клеточных измерений также ясно, что жесткие трихомы практически не редуцируются в период между фазами трубкования и восковой спелости, в отличие от клеток мягкого опушения, заметно уменьшающимися на том же заключительном этапе для листовой вегетации. Анализ плотностного распределения двух типов клеток опушения выявляет меньшую плотность жестких трихом относительно данного параметра для клеток мягкого опушения.

При этом плотность распределения жестких трихом в течение онтогенеза уменьшается в 2-3 раза на фоне снижения плотности мягких клеток опушения в 3-4 раза. То есть при сравнительно плавном «разрежении» клеток жесткого типа тот же процесс для мягких трихом протекает динамичнее, в частности, в ранний период онтогенеза, до начала фаз трубкования и колошения. Относительная «поверхностная разреженность» жестких трихом может быть следствием более высокой функциональной активности индивидуальных трихом данного типа. В отличие от мягких трихом клетки жесткого опушения в начальный период онтогенеза накапливают жировые включения в дистальной части поляризованного отростка. Анализ жирнокислотКаразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios ного состава листьев с жестким и мягким типами опушения показывает следующие закономерности. Листья с жестким опушением содержат более представительную фракцию линоленовой кислоты (ЛК, C18:3), уровень которой на 20% выше, чем в листьях с мягким опушением. Хроматографические профили для листьев с двумя типами опушения приведены на рис. 1. Доля триеновой фракции ЛК (C18:3) к сумме двух моно- и диеновых простых липидов (С18:1+С18:2) при жестком опушении также возрастает в среднем на 15,6-23,3%. Одновременно при жестком опушении растет концентрация других жирных кислот, включая фракции C14:0, C15:0, C16:0, C18:0 и C20:1. Лишь два класса жирных кислот, C18:1 и C18:2, более выражены в листьях с мягким опушением. Однако это превышение не выходит за пределы 5,3-5,9%. Из полученных данных можно сделать вывод, что значительное увеличение концентрации ЛК в листьях с жестким опушением способствует предотвращению солидификации липидов, тем самым обеспечивая как целостность клеток жесткого опушения на протяжении всего онтогенеза пшеницы, так и увеличение плавучести интегрированных мембранных белков.

Рис. 1. Сравнение профилей десорбции для фракции С18:3 (ЛК) из экстракта листьев с мягким (1,2) и жестким (3) опушением. (Нанесение и десорбция материала из 1 г листьев с помощью 20% полиэтиленгликоль-адипината при 188С-230С в течение 1 час).

Таким образом перспективные линии пшеницы с характерным жестким опушением по ряду морфо-физиологических и биохимических свойств отличаются сортов с мягким типом опушения. Предполагается, что «верхушечная» локализация липидов, накапливаемых в трихомах, и обогащение их фракцией ЛК (и, возможно, других полиеновых компонентов) поддерживают целостность клеток жесткого опушения, их нередуцируемость в заключительный период вегетации и плавучие свойства белковых комплексов, «инкрустированных» в биологические мембраны. Указанные свойства жесткого опушения могут играть решающее значение при действии внешних стрессоров.

ЛИТЕРАТУРА 1. Callow J.A. (ed.) Plant Trichomes, Adv. Bot. Res. Harcourt Publishers, 2000, V. 31, 450 p.

2. Шулембаева К.К., Есырева Е.Д. Изучение генетики признака опушения листьев пшеницы // Вестник КазНУ, сер. экол, вып. 2 (20), с. 53-57, 2003.

3. Zhang X, Oppenheimer D.G. A simple and efficient method for isolating trichomes for downstream analyses // Plant Cell Physiology, v. 45, p. 221-224, 2004.

СПОСОБ ПОЛУчЕНИЕ БИОМАССЫ ЗЕЛЕНОЙ МИКРОВОДОРОСЛИ DUnaLIELLa SaLIna С ВЫСОКИМ СОДЕРЖАНИЕМ КАРОТИНОИДОВ Бульмага В.1, Рудик В.2, Джур С.В.1, Ефремова Н.2, Кирияк Т.2, Зосим Л.1, Еленчук Д.2, Бивол ч.1, Батыр Л.2, Олан О.Молдавский Государственный Университет Институт Микробиологии и Биотехнологии Академии Наук Молдовы В последнее время, возрос интерес исследователей к зеленой микроводоросли Dunaliella salina, являющейся перспективным биотехнологическим объектом [12]. Биомасса дуналиеллы используется для Каразинские естественнонаучные студии Каразінські природознавчі студії Karazin natural science studios получения целого ряда биоактивных веществ, обладающих антиоксидантными свойствами, таких как липиды (полиненасыщенные жирные кислоты), каротиноиды (-каротин, зеаксантин, лютеин), витамины (-токоферол) и др. Известно, что каротиноиды преимущественно предотвращают образование пероксил радикалов и форм синглетного молекулярного кислорода, а также подавляют процессы перекисного окисления липидов [13]. Антиоксидантные свойства, помимо -каротина, присущи и другим каротиноидам - лютеину и зеаксантину, присутствующим в биомассе дуналиеллы [7]. Каротиноиды являются одними из важнейших пигментов, осуществляющих фотосинтез, а также предотвращающих повреждение клеточных структур в результате процессов фотоокисления [4, 6]. Цветные каротиноиды осуществляют защиту от фотоокисления, действия синглетного кислорода и радикалов, синтезирующихся под действием света и эндогенных фотосенсибилизаторов, таких как хлорофилл, гемм и протопорфирин IX. Во время фотосинтеза каротиноиды могут переносить световую энергию к молекулам хлорофилла, рассеивать избыточную энергию с помощью ксантофиллового кольца (в высших растениях и некоторых водорослях) и напрямую гасить возбужденное состояние хлорофилла. Кроме того, доказана структурная роль каротиноидов, выполняющих функцию «молекулярного клея» в фотосинтетическом комплексе пигмент - белок [4].

Обладая высокой антиоксидантной активностью, каротиноиды (в частности, - каротин) проявляют антиканцерогенные, противовоспалительные, иммуномодулирующие свойства [1]. В результате исследований, проведенных на лабораторных животных, было обнаружено, что -каротин стимулирует деятельность T и B лимфоцитов, защищает клетки фагоцитов от воздействия окислительного стресса. Было доказано, что витамин А обладает меньшей антиоксидантной активностью, чем его предшественник -каротин.

Доказано, что -каротин ингибирует процессы роста раковых клеток и предотвращает на ранних стадиях развитие онкозаболеваний (в частности рака легкого, кожи, органов пищеварительного тракта) Антиканцерогенные свойства -каротина объясняются во многом его участием в реакции нейтрализации форм синглетного молекулярного кислорода [8]. Эффективным является также применение в качестве пищевой добавки -каротина при лечении и профилактике сердечно-сосудистых заболеваний [1, 9, 10].

Антиоксидантные свойства, помимо - каротина, присущи и другим каротиноидам - лютеину и зеаксантину, присутствующим в биомассе зеленой мироводоросли Dunaliella salina [9].

На процессы синтеза каротиноидов в биомассе микроводоросли Dunaliella salina могут оказывать влияние следующие факторы: интенсивное освещение, недостаток питательных веществ (в частности, азота), высокая степень засоления среды, повышенная температура культивирования и др. [2, 7, 10, 11]. Ранее сотрудниками лаборатории «Фикобиотехнология» (Молдавский Государственный Университет) было установлено, что некоторые комплексные соединения Cr(III), Fe(III) и Co(II) способствуют увеличению продуктивности дуналиеллы и синтеза каротиноидов в биомассе [12].

Цель исследования: получение биомассы зеленой микроводоросли Dunaliella salina с повышенным содержанием каротиноидов.

Объект исследования: зеленая микроводоросль Dunaliella salina CNM–AV-01, хранящаяся в Национальной Коллекции Непатогенных Микроорганизмов Института Микробиологии и Биотехнологии АН РМ. Дуналиелла культвировалась на питательной среде Ben – Amotz [2]. В качестве регуляторов роста и стимуляторов синтеза каротиноидов были использованы координационные соединения Zn(II) с органическими кислотами и имидазолом, внесенные в питательную среду концентрациях 0,1 – 30 мг/л. Определение содержания каротиноидов осуществлялось по методу Dere [5].

Согласно полученным данным, применение всех комплексов цинка с дикарбоксильными кислотами и имидазолом во всех используемых концентрациях оказало значительный положительный эффект на продуктивность дуналиеллы. Наибольшее увеличение продуктивности (в 1,82 - 1,71 раз по сравнению с контролем) наблюдалось в случае использования комплекса [Zn(COO(CH2)4COO)2(C3N2H4)2(H2O)2]•nH2O в концентрациях 1 - 10 мг/л.

Pages:     | 1 |   ...   | 65 | 66 || 68 | 69 |   ...   | 101 |



© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.