WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

 

На правах рукописи

ГУНАР Ольга Викторовна

Методологические основы  совершенствования

системы  микробиологического  контроля качества лекарственных средств

15.00.02 – фармацевтическая химия, фармакогнозия

Автореферат

диссертации на соискание  ученой степени

доктора фармацевтических наук

       Пермь– 2009

Работа выполнена в Институте  стандартизации и контроля лекарственных средств  ФГУ «Научный Центр  Экспертизы средств медицинского применения»  Росздравнадзора и  ГОУ ВПО «Пермская государственная фармацевтическая академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию»

Научные консультанты: доктор фармацевтических наук, профессор

  Одегова Татьяна Федоровна

доктор медицинских наук, профессор 

Кочеровец  Владимир Иванович

Официальные оппоненты:  доктор фармацевтических наук, профессор

Ярыгина Татьяна Ивановна

доктор фармацевтических наук 

Боковикова Татьяна Николаевна

доктор медицинских наук, профессор 

Шендеров Борис Аркадьевич

Ведущая организация: ГОУ ВПО «Пятигорская государственная

фармацевтическая академия  Федерального агентства

  по  здравоохранению и социальному развитию»

Защита состоится  « 26 »  мая  2009 г. в 13 ч. на заседании диссертационного совета Д. 208.068.01 в ГОУ ВПО «Пермская государственная фармацевтическая академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» по адресу: 614990, ГСП -277, г. Пермь, ул. Ленина, 48. Тел./факс (342) 2129006.

С диссертацией можно ознакомиться в научной библиотеке ГОУ ВПО «Пермская государственная фармацевтическая академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» по адресу: 614077,  г. Пермь, ул.Крупской, 46.

Автореферат разослан  «____» _______________ 2009г. 

Ученый секретарь диссертационного совета,

кандидат фармацевтических наук,  доцент Липатникова И.А.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. На современном этапе развития отечественной фармацевтической промышленности и в связи с введением на фармацевтических предприятиях России правил надлежащей производственной (GMP)  и лабораторной (GLP) практик изменяются подходы к контролю качества лекарственных препаратов (ЛП) и субстанций. Необходимость контроля качества лекарственных средств (ЛС) обосновывается  важностью обеспечения их безопасности и эффективности, т.е. снижения риска возникновения побочных реакций при  применении  потребителем (Акимочкин В.Е., 2003). «Качество должно быть встроено в лекарственный препарат» (Брахт К. 2004, Pharmaceutical cGMP 2002). Таким образом, начиная с разработки новых фармацевтических препаратов, на всех этапах от производства до потребителя, необходимо оценивать вероятность риска выпуска некачественных средств и совершенствовать систему контроля, добиваясь обеспечения их качества. Особое место при этом занимают биологические методы исследований фармацевтических препаратов, относящиеся  в первую очередь к области фармакологии и микробиологии (Попов А.Ю. 2004, Хабриев Р.У.2005).

  Особенностью микробиологических видов анализов является специфика объекта исследования – живого микроорганизма, обладающего индивидуальными свойствами. К наиболее значимым особенностям ЛС,  влияющим на результаты анализа, относятся следующие:

  • Наличие антимикробного действия самих ЛС или их компонентов, а также присутствие в некоторых из них консервантов, препятствующих выявлению микроорганизмов.
  • Опережающий рост сопутствующей микрофлоры, затрудняющий  определение микроорганизмов-контаминантов.
  • Возможность присутствия в аналитических образцах микроорганизмов в «стрессовом» состоянии под воздействием условий  технологического процесса производства ЛС, и неравномерное распределение контаминантов в образцах.

Учитывая прямую зависимость микробиологических показателей с безопасностью ЛС, результаты испытаний продукции должны быть максимально точными и надежными.

Основными факторами, влияющими на вариабельность результатов микробиологических исследований, являются: специфичность пробы (физико-химические свойства НЛС и биологические особенности выделяемой популяции микроорганизмов), компетентность персонала и условия его работы, отбор образцов и подготовка пробы, условия инкубации, характеристики используемых питательных сред. Последние три фактора подлежат обязательной стандартизации (ИСО 13843:2000) и валидации, что подтверждается общей тенденцией по совершенствованию фармакопейных методов контроля.

Проблема разработки, обоснования и установления нормативов допустимого содержания микроорганизмов в ЛС тесно связана с выбором методов их выявления и идентификации, обусловливающих эффективность анализа.  Дальнейшее расширение номенклатуры ЛП и субстанций, внедрение правил GMP, GLP и систем менеджмента качества на фармацевтических производствах  и в контрольных службах требуют стандартных  подходов к  определению качества ЛC по показателю «Микробиологическая чистота», т.е. создания системы микробиологического контроля качества (СМКК) ЛС. Что  до настоящего времени сдерживалось рядом объективных трудностей:

  • постдипломная профессиональная подготовка и усовершенствование специалистов проводились в рамках Государственного образовательного стандарта по специальности «бактериология» для сотрудников, окончивших только медицинские ВУЗы,
  • не достигнута должная гармонизация с базовыми материалами и положениями  Европейской Фармакопеи в отношении классификации  ЛС с учетом их происхождения и  способа применения,
  • не разработан системный и универсальный алгоритм микробиологического контроля различных категорий ЛП, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ.
  • отсутствовали адаптированные к целям исследования методики и схемы определения качества ЛРС по показателю «Микробиологическая чистота»,
  • немногочисленные отечественные публикации о современном состоянии СМКК ЛС оставались разрозненными и разноплановыми по информации. Представленные в них результаты в силу различного методологического подхода и лабораторного оснащения авторов были часто несопоставимы,
  • отсутствие научно-практической оценки видового состава грибов-контаминантов ЛС.

Таким образом, возникла необходимость комплексного решения организационно-методических, теоретических и практических проблем, связанных с микробиологическим контролем качества ЛС. Их решение  должно обеспечить создание системы микробиологического контроля качества лекарственных средств (СМКК ЛС), как части системы Государственного контроля качества ЛС. Анализ и перечень приведенных положений определяет актуальность проблемы и практическую значимость темы настоящей работы.

  Цель работы - формирование теоретических основ и разработка современных методологических подходов к микробиологическому контролю  качества ЛС, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ с учетом положений GMP и GLP  в Российской Федерации.

Задачи исследования:

  1. Создать систему микробиологического контроля качества (СМКК) ЛС, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ, выработать концепцию рационального построения и функционирования, определить ее структуру.
  2. Изучить качество ряда ЛП, в том числе не контролируемых ранее растительных ЛС, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ по ведущему показателю безопасности –  «Микробиологическая чистота».
  3. Определить состав основной микрофлоры, содержащейся в различных лекарственных формах, и идентифицировать выделенные грибы.
  4. Гармонизировать с Европейской Фармакопеей  нормы допустимой микробной загрязненности ЛП; разработать требования к качеству ЛРС,  субстанций  и вспомогательных веществ по показателю «Микробиологическая чистота».
  5. Усовершенствовать методы определения антимикробного действия ЛС и изучить антимикробное действие ЛС различных лекарственных форм и фармакотерапевтических групп.
  6. Обосновать и внедрить в практику микробиологических исследований при контроле  качества ЛС  высокоэффективные методы количественного определения микроорганизмов, а также способы выделения и идентификации отдельных видов бактерий-контаминантов ЛС.
  7. Сравнить базовые характеристики питательных сред отечественного и импортного производства, используемых для контроля качества ЛС; обосновать рецептуры и  изучить качество соево-казеинового агара,  агара с бриллиантовым зеленым и среды типа агара Мак-Конки. 

  Научная новизна. Раскрыта и обоснована система микробиологического контроля качества (СМКК) ЛС, определена ее структура и концепция рационального построения и функционирования. Выполнен дифференцированный подход к установлению предельных норм допустимой микробной загрязненности ЛС, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ. Осуществлена классификация препаратов, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ по категориям с учетом  происхождения и способа применения. Определены пути повышения информативности микробиологических исследований при контроле качества ЛС. Это – обучение  основам выполнения контрольных испытаний, унификация подготовительного периода микробиологических исследований во избежание ложноотрицательных результатов анализа, комплексное использование достоверных и воспроизводимых методов выявления, количественного определения и идентификации отдельных микроорганизмов-контаминантов ЛС. Установлены особенности исследования микробиологической чистоты ЛРС в соответствии с их физико-химическими, биологическими свойствами, назначением и нормами микробной загрязненности для каждой категории растительных препаратов.

Выявлено антимикробное действие у ряда ЛС из различных фармакотерапевтических групп: нейротропные, антидепрессанты, седативные, антигистаминные, спазмолитические, гипотензивные, сосудорасширяющие, не наркотические противовоспалительные болеутоляющие, жаропонижающие ЛС.

Впервые проведена углубленная микологическая экспертиза грибов-контаминантов ЛС, при этом выявлена обсемененность 74 видами грибов из 16 родов.  В 28,9% изученных серий ЛС содержание грибов превышало допустимые нормы.

Теоретическая и практическая значимость работы.  Разработанные, усовершенствованные и внедренные в процессе выполнения работы алгоритм, этапы, схемы и методы микробиологических исследований позволили стандартизовать условия испытаний и обеспечить повышение эффективности контроля качества ЛС на фармацевтических предприятиях России и в контрольной службе.

  Предложен современный методологический подход к микробиологическому анализу качества ЛС, основанный  на использовании комплекса стандартных методов, позволяющих: достоверно установить количество аэробных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, . выделить из ЛС и  идентифицировать  отдельные виды нормируемых микроорганизмов (создание условий селективного выделения, использование пробирочного метода наиболее вероятных чисел).

  Разработан эффективный и экономичный чашечный агаровый  метод (модифицированный глубинный) количественного определения в ЛС  аэробных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов. Валидация предложенного метода позволила рекомендовать его использование наравне с двухслойным, поверхностным и глубинным методами для получения достоверных, воспроизводимых количественных результатов контроля качества ЛС.  Предложены методы количественного и качественного определения микроорганизмов-контаминантов различных  лекарственных форм медицинских препаратов  с учетом подготовки образцов перед анализом (материалы исследований внедрены в ОФС 42-0067-07 ГФ XII изд.).

Усовершенствованы методы  определения антимикробного действия различных ЛС, включая разработку альтернативного метода репликаций для водонерастворимых и окрашенных ЛП. Детализированы  подходы к нейтрализации антимикробного действия (материалы внедрены в Изменении №2 к Государственной Фармакопее XI изд. от 14.08.01 и ГФ XII изд.).

Данные сравнительного изучения ряда сухих питательных сред для контроля микробной загрязненности ЛС различных отечественных производителей свидетельствуют о возможности их использования наравне с импортными сухими и готовыми к употреблению питательными средами (материалы включены в ОФС 42-0067-07 ГФ XII изд.).

Связь задач исследования с проблемным планом фармацевтических наук. Диссертационная работа выполнена в  ИСКЛС ФГУ «НЦ ЭСМП» Росздравнадзора и в соответствии с планом НИР ГОУ ВПО «Пермская государственная академия» (номер регистрации темы 01.9.50007417).

  Апробация работы. Результаты и основные положения работы доложены на Международных научно-практических конференциях «Разработка и стандартизация микробиологических питательных сред и тест-систем» (г. Махачкала, 2001г., 2003 г.), на Международном семинаре «Современные проблемы химии  и технологии косметических средств. Консерванты в косметике» (г. Москва, 2001г.), на  обучающих семинарах ГНЦА «Современные требования к организации и деятельности микробиологических лабораторий отделов контроля качества фармацевтических предприятий» (г. Москва,  2001 г.,  2003 г.), на  IX, X, XI, XII, XIII, XIV, XV  Конгрессах  «Человек и лекарство» (г. Москва, 2002 г., 2003г., 2004 г., 2005г., 2006 г., 2007г., 2008г.),  на XV Международном симпозиуме «Медико-экологическая безопасность, реабилитация и социальная защита населения» (Италия,  2004 г.), на IV Международном Научно-практическом конгрессе «Медико-экологические проблемы лиц экстремальных профессий: работоспособность, здоровье, реабилитация и экспертиза профессиональной пригодности» (г. Москва, 2004 г.),  на 7 и 8 Всероссийских конференциях по биомеханике (г. Нижний Новгород, 2004г., 2006г.), на научно-практической конференции с международным участием «Роль клинической микробиологии в профилактике внутрибольничных инфекций» (г. Москва, 2004 г.), на VII съезде фармацевтов Республики Беларусь «Фармация XXI века» (г. Витебск, 2004г.),  на Международной научно-практической конференции Санкт-Петербургской хим.-фарм. Академии «Выпускник фармацевтического  ВУЗа (факультета) в прошлом, настоящем, будущем» (г. Санкт-Петербург, 2004 г.), на XVI-й Международной конференции АСИНКОМ «Правила GMP:задачи и опыт внедрения. Техника чистых помещений» (г. Москва, 2005 г.), на 60-й, 61-й и 63-й региональных конференциях по фармации и фармакологии  (г. Пятигорск, 2005, 2006, 2008 г.г.), на II Всероссийском съезде фармацевтических работников (г.Сочи, 2005 г.), на Международного съезде  «Фитофарм-2005» (г. Санкт-Петербург, 2005 г.), на XVI  Московской международной гомеопатической конференции «Развитие гомеопатического  метода в современной медицине» (г. Москва, 2006 г.), на  3 тематических семинарах в  ФГУ «НЦЭСМП» «Современные требования к организации производства и обеспечению контроля качества инъекционных и инфузионных лекарственных  форм» (г. Москва, 2006г., 2007 г., 2008г.), на 4 заседаниях секции медицинской и фармацевтической микробиологии Московского Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов (г. Москва, 2006 г., 2008 г.), на Всероссийской научно-практической конференции «Стандартизация в оториноларингологии» (г. Санкт-Петербург, 2007 г.), на научно-практическом семинаре ФГУП  ГНЦА «Организация работы ОКК фармацевтических предприятий» (г. Москва, 2008г.)

        Внедрение  в  практику.  Разработанные нами требования к качеству ЛП, субстанций и вспомогательных веществ по микробиологическим показателям утверждены Департаментом государственного контроля лекарственных средств, изделий медицинской техники и медицинского назначения  в виде Изменения №1 к ГФXI изд. от 26.12.95 , Изменения №2 к ГФXI изд.от 14.08.01, Изменения №3 к ГФXI изд. от 19.03.03 и Государственной Фармакопее XII изд. (2008г). Полученные материалы исследований утверждены в ОФС  42-0016-04 «Методы микробиологического контроля лекарственных растительных средств, состоящих из одного вида сырья или нескольких (сборы)– фасованная продукция, а также растительного сырья  «ангро»», в ОФС 42-0066-07 «Стерильность» и ОФС 42-0067-07 «Микробиологическая чистота».

Методы микробиологического контроля качества ЛС апробированы и внедрены на фармацевтических предприятиях: ОАО «Красногорсклексредства» (акт о внедрении от 26.12.2006), ООО «Бион» (акт о внедрении исх. №458 от 31.10.2006), ЗАО «ФПК ФармВИЛАР» (акт о внедрении исх. №28 от 31.01.07),  ОАО «АЗТ Фарма К.Б.»(акт о внедрении исх.№288 от 15 сентября 2006г).

   Публикации. По результатам проведенных исследований опубликовано 63  работ, из которых 19 статей в научных журналах, рекомендованных ВАК.

Подготовлены к выпуску и утверждены Изменения №1, №2, №3 к ГФ XI изд., ВФС 42-3455-99 «Определение ростовых свойств питательных сред, используемых для испытания на стерильность и микробиологическую чистоту лекарственных средств», ВФС 42-3454-99 «Метод наиболее вероятных чисел»,  ОФС 42-0016-04 «Методы микробиологического контроля лекарственных растительных средств, состоящих из одного вида сырья или нескольких (сборы)– фасованная продукция, а также растительного сырья  «ангро»», ОФС 42-0066-07 «Стерильность», ОФС42-0067-07 «Микробиологическая чистота», ОФС 42-0069-07 «Определение эффективности антимикробных консервантов ЛС» ГФXII изд.

Положения, выносимые на защиту:

  1. Концептуальная модель СМКК ЛС в сферах регистрации ЛС, производства и контроля качества.
  2. Методологический подход к исследованию качества ЛП, растительных лекарственных средств, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ по ведущему показателю безопасности –  «Микробиологическая чистота».
  3. Разработка  норм  и методов определения микробиологической чистоты  ЛРС,  позволяющие объективно оценить их качество.
  4. Микологическая экспертиза при микробиологическом анализе ЛС.
  5. Антимикробного действия ЛС – необходимый этап исследований для снижения риска ложных результатов микробиологических исследований фармацевтических  препаратов и субстанций.
  6. Разработка эффективного и экономичного метода количественного определения в ЛП микроорганизмов.
  7. Экспериментальное обоснование базовых характеристик питательных сред импортного и отечественного производства для контроля загрязненности ЛС.

  Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 271 страницах, содержит  68 таблиц, 22 рисунка, включает введение, обзора литературы (глава 1), экспериментальную часть (главы 2-7) список цитируемой литературы, содержащий  276 библиографических  источника, из которых  128 работ зарубежных авторов, и приложения.

Основное содержание работы

Объекты и методы исследования

Исследования проводили в 1992-2007 гг.  микробиологическими методами с использованием отечественных и импортных ЛП, субстанций  и вспомогательных веществ, тест штаммов микроорганизмов, питательных сред - сухих отечественного и импортного производства, готовых к употреблению, приготовленных в лаборатории микробиологии ИСКЛС. Объектами исследования явились:

1. Лекарственные препараты, субстанции и вспомогательные вещества.

  Исследовано качество и обобщены результаты испытания 11530 серий  различных лекарственных форм: мазей, капель, лейкопластырей, трансдермальных терапевтических систем, вагинальных суппозиториев, таблеток, капсул, порошков, гранул, плиток, суспензий, сиропов, растворов, масел, настоек, соков, жидких, сухих и густых экстрактов, эликсиров, бальзамов, свечей, ЛРС в виде пачек, пакетов, фильтр-пакетов, брикетов и средств «ангро»,  субстанций для производства стерильных, НЛС, вспомогательных веществ, а также лекарственных растительных препаратов 50 наименований 793 серий. Исследованные образцы ЛРС представлены:

  • цветками: ноготков,  пижмы, гибискуса, бессмертника песчаного, ромашки, липы;
  • корой: крушины, дуба;
  • корнями и корневищами: аира, девясила, змеевика, солодки, одуванчика, валерианы, алтея;
  • травой : пастушьей сумки, пустырника, горца птичьего, тысячелистника, череды, чистотела, чабреца, фиалки, мелиссы лекарственной, зверобоя, эрвы шерстистой, хвоща полевого, сушеницы топяной, душицы, золототысячника, полыни горькой;
  • листьями:  эвкалипта прутовидного, березы, мяты перечной, брусники, мать-и-мачехи, крапивы, толокнянки, шалфея, сенны, подорожника большого;
  • плодами и семенами: боярышника, шиповника, черемухи, укропа пахучего, льна, кориандра, тыквы, рябины, почек березовых.

Было изучено качество жидких лекарственных средств, содержащих этиловый спирт  в количестве от 14% до 95% (настоек, жидких экстрактов, эликсиров, бальзамов и др.) 20 наименований 269 серий.

  Для проведения микологической экспертизы дрожжевые и плесневые грибы были выделены из ЛС, изготовленных из сырья синтетического, природного происхождения и  лекарственного растительного :  брикетов цветков календулы, травы пустырника, травы череды, листа сенны, листа крапивы, травы душицы, листьев  брусники, зверобоя, толокнянки, пижмы, алтея, коры дуба, морской капусты, побегов багульника болотного, семян льна. Из вспомогательных материалов исследовали крахмал картофельный, муку пшеничную, тальк, сахар, порошок какао. Всего было испытано 264 образца (191 серия НЛС 36 наименований, 37 серий ЛРС 15 наименований и 36 партий вспомогательных материалов 5 наименований).

2. Тест-микроорганизмы: Bacillus cereus  ATCC 10702, Bacillus subtilis ATCC 6633,  Escherichia coli  АTCC 25922, E. coli 3912/41 (055: K59),  E. coli 168/59 (0111: K58),  Enterobacter cloaceae  ГИСК A-186,  Salmonella abony IHE 103/39 ,  S. enteritidis  ATCC 11272,  S. typhi H 901,  S. paratyphi A 225,  S. paratyphi B 506,  S. paratyphi B 8006,  S. typhimurium 301,  S. abortus bovis 2,  S. dublin 42,  S. gallinarum 665,  S. typhi bismuth,  S. sonnei “S-form”,  S. flexneri 1a N 8516,  Citrobacter frоndii N 33/57,  Enterobacter aerogenes 417,  Serratia marcescens 1,  Klebsiella rhinoscleromatis K3 NCTC 5046,  Proteus  mirabilis Сиднев,  Pseudomonas aeruginosa  ГИСК 453,  P. aeruginosa АТСС 9027,  P. aeruginosa 27/99,  Staphylococcus aureus ATCC 6538-P,  S. aureus Wood-46 , S.  saprophyticus CCM 186, Candida albicans NCTC 885-653,  C. albicans ATCC 1-0/11,  C. albicans  CCM 55/79, Aspergillus niger  АТСС 9642,  Penicillium verrucosum var. cyclopium BKM F-265,  Rhodotorula glutinis  BKM Y-332,  Saccharomyces cereviseae  BKM Y-2549,  S. cereviseae  BKM Y-56.

3.Питательные среды. Использовались сухие питательные среды отечественных и зарубежных произ­водителей, питательные агары и бульоны из  сухих сред отечественного производства для контроля микробной загрязненности №№ 1-15 (производства ФГУ ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии п. Оболенск Московской обл., ОАО «Микроген» г. Махачкала, ОАО «Биотехновация» г. Москва, ОАО «Биомед» п. Петрово-Дальнее), а также  производства фирмы «Меrk»: соево-казеиновый агар (Casein Soya Bean Digest Agar); соево-казеиновый (Casein Soya Bean Digest Broth), лактозный (Lactose Monohydrate Broth), Мосселя (Enterobacteria Enrichment Broth Mossel)  и Мак-Конки (MacConkey Broth) бульоны;  Мосселя (Crystal violet, Neutral Red, Bile Agar with Glucose) и Мак-Конки (MacConkey Agar) агары; тетратионатный (Tetrathionate Bile Brilliant Green Broth)  бульон; дезоксихолат-цитрат агар (Deoxycholate Citrate Agar); ксилоза-лизин-дезоксихолат агар (Xylose, Lisine, Deoxycholate Agar); агар с бриллиантовым зеленым, феноловым красным, с лактозой и сахарозой (Brilliant Green Agar Medium); трехсахарный агар с солями железа (Triple SugarIronAgar); цетримидный агар (Cetrimide Agar) и (Pseudomonas Agar Medium for Detection of Pyocyanin), а также Vogel Johnson Agar Medium,  Baird Parker Agar и Sabouraud Glucose Agar with antibiotics.

  При анализе выделения микроорганизмов использовали методы: чашечные агаровые, мембранной фильтрации на установке фирмы «Сарториус», пробирочные - метод наиболее вероятных чисел (НВЧ).

Для таксономического определения плесневые грибы культивировали на среде Чапека, на 10-12 сутки снимали морфологические характеристики колоний: измеряли диаметр, отмечали окраску колонии и реверзума, степень развития воздушного мицелия, высоту колонии, наличие тяжей, каймы, экссудата, склероциев и клейстотециев. Для определения типа конидиеносцев, формы, величины и цвета конидий, способа конидиогенеза готовили препараты для микрокопирования с использованием 20% уксусной кислоты. По результатам микроскопического исследования и морфологическим признакам проводили идентификацию плесневых грибов до вида с помощью определителей. Определение дрожжевых грибов проводили с помощью системы API 20C AUX (Франция).

В работе применяли оптический стандарт мутности (the international reference preparation of opacity of 10 international units, Лондон, Великобритания), камеру Горяева, микроскоп «Jnaval», оснащенный цифровой видеокамерой Wat-221S производств «Watec» (Япония) с программой ВидеоТесТ-Размер 5,0.

  Экспериментальные исследования проводили на искусственно и естественно контаминированных образцах.

Результаты исследования и их обсуждение

Сравнительная характеристика степени микробиологической чистоты различных лекарственных средств.

Качественный состав микроорганизмов-контаминантов.

  На первом этапе проводили расчет минимального количества необходимых исследований с помощью критерия Пирсона. При этом число наблюдаемых групп две, ожидаемая минимальная высеваемость 1%, а предполагаемый индекс эффективности используемой питательной среды 1,5.

N= 3,84· 2·1,5·(1+1,5) ·100/ 1·(1-1,5)2 = 11520

  Таким образом, для достоверной оценки результатов контроля качества ЛС необходимо рассмотреть не менее 11520 образцов. Согласно с этим расчетом изучали микробиологическую чистоту ЛП, субстанций и вспомогательных веществ 11530 серий. На основе обобщения результатов установлен высокий уровень качества как отечественных, так и импортных ЛС (табл. 1). При этом наивысший процент несоответствующих препаратов выявлен среди  ЛРС (1,9 и 3,5% соответственно в 2001 и 2002 г.г.) и препаратов, изготовленных из природного сырья  (0,8 и 1,9%). На основании полученных результатов показано, что наиболее качественными являются субстанции для производства стерильных ЛС. Менее 1% брака по показателю «Микробиологическая чистота» выявлено среди препаратов из синтетических  субстанций и самих субстанций для производства НЛС, а также ЛС для наружного и местного применения. 

Таблица 1

Результаты изучения качества НЛС по показателю «Микробиологическая чистота»

Категория

ЛП и субстанции

Качество лекарственных средств по годам

2001 год

2002 год

Количество исследован-

ных серий

Процент брака

Количество исследован-

ных серий

Процент

брака

ЛП для местного применения

704

1,0

689

1,2

Синтетические НЛС

3260

0,3

2692

1,0

Природные НЛС

735

0,8

469

1,9

Субстанции для изготов- ления стерильных ЛП

189

-

190

0,01

Субстанции для НЛС

772

0,5

721

1,0

ЛРС

272

1,9

312

3,5

  Повышение качества ЛС с нашей точки зрения последует после внедрения правил GMP на фармацевтических производствах, систематического повышения квалификации сотрудников контрольных микробиологических лабораторий, утверждении методов испытания ЛС, разработанных в результате настоящего исследования.

На следующем этапе проведено сравнительное изучение проконтролированных и забракованных  ЛП по показателю «Микробиологическая чистота» (рис.1-3).

Рис. 1 – Соотношение количеств исследованных серий отечественных  (40000 серий) и импортных (10000 серий) ЛС за период с 1993г. по 2007 г. (включительно).

Рис.2 - Количество отечественных ЛС, не соответствующих требованиям по показателю «Микробиологическая чистота» в  %.

Обозначения: по оси абсцисс - годы, по оси ординат – %  исследованных серий ЛС, не соответствующих  требованиям  по показателю «Микробиологическая чистота»

Рис. 3- Количество импортных ЛС, не соответствующих требованиям по показателю «Микробиологическая чистота»  в % .  Обозначения: те же, что и на рис. 2

Исследования показали, что в среднем  число несоответствующих требованиям документации серий  колебалось около 1%, максимальное количество брака приходилось на 1995г и 2002г. – для отечественных препаратов, на 1994, 1995, 1998 – для зарубежных лекарственных средств.  Представленные показатели брака продукции показывают, насколько своевременно были изменены подходы к нормированию микробиологической чистоты ЛС и утверждены разработанные нами Изменения №1 и №2 к ГФ XI изд. (1995 г. и 2001г. соответственно). Проведенное научно-экспериментальное изучение микробиологической чистоты ЛС свидетельствует о высокой значимости данного показателя. Внедрение дифференцированных норм допустимой микробной загрязненности ЛС и введение требований к качеству субстанций и вспомогательных веществ  вместе с методами выделения микроорганизмов-контаминантов позволили выявить большее количество некачественных препаратов,  т.е. не допустить их попадание к потребителю.

        Основываясь на многолетнем всестороннем изучении качества ЛС, отобраны препараты, представляющие особую группу, а именно жидкие препараты, изготовленные на основе этилового спирта (настойки, бальзамы,  экстракты и др.). Результаты изучения их качества представлены в табл. 2.

Таблица 2

Микробиологическая чистота исследованных жидких препаратов (в 1 мл) 

Наименование

препарата

Содержание спирта  %

Кол-во

серий

Среднее число КОЕ/г

бактерий

грибов

1

2

3

4

5

1.Бальзам  Московия

40

5

37000

< 10

2.Настойка Аралии

61

5

<10

<10

3.Настойка Боярышника

65

23

50

50

4.Настойка Валерианы

28

17

700

< 100

5.Настойка Женьшеня

67

37

11000

< 10

6.Настойка Зверобоя

36

5

< 10

< 10

7.Настойка Календулы

65

29

15000

< 10

8.Настойка Лимонника

95

11

< 10

< 10

9.Настойка Овса

40

5

5000

< 10

10.Настойка Пиона

35

18

700

50

11.Настойка Перца

86

3

< 10

< 10

12.Настойка Полыни

70

5

< 10

< 10

1

2

3

4

5

13.Настойка Пустырника

64

30

100

< 10

14.Настойка Чаги

65

8

1400

< 10

15.Экстракт водяного

Перца жидкий

64

6

< 10

< 10

16.Экстракт Левзеи жидкий

62

11

< 10

< 10

17.Экстракт Родиолы

розовой жидкий

34

6

< 10

< 10

18.Экстракт Элеутерококка

33

24

500

1000

19.Эликсир грудной

14

6

500

< 10

20.Эликсир «Демидовский»

40

10

< 10

< 10

Примечание: Бактерии сем. Enterobacteriaceae, P.aeruginosa, S.aureus не были обнаружены ни в одном из исследованных образцов.

Проведенные эксперименты показали высокое качество исследованных образцов по показателю «Микробиологическая чистота». Из препаратов 20-ти наименований 264 серий  в 9-ти наименований 62 серий (23,5%) микроорганизмы выделены не были (менее 10 КОЕ/мл). В то же время уровень микробной загрязненности препаратов 4-х наименований 95 серий (36%) превышал допустимые пределы: не более 10000 КОЕ аэробных бактерий и 100 КОЕ грибов в 1 мл при отсутствии  P. aeruginosa , S. aureus , E. coli, видов Salmonella, других кишечных бактерий  - не более 100 КОЕ в 1 г (мл). К ним относились бальзам «Московия», Настойка Женьшеня, Настойка Календулы, Экстракт  Элеутерококка.  Следует отметить, что даже наличие 70% спирта этилового не ингибировало рост спорообразующих бактерий и некоторых грибов.  Важным результатом проведенных исследований явились данные о том, что качество  жидких  ЛС,  содержащих этиловый спирт, не зависит от его концентрации. По нашему мнению, на микробиологическую чистоту спиртосодержащих ЛС влияет исходное растительное сырье, технологический процесс и условия производства.

В ряде экспериментов изучен качественный состав микроорганизмов-контаминантов ЛС. Исследования показали, что в ЛС в преобладающем большинстве встречались грамположительные спорообразующие палочки и плесневые грибы, реже – дрожжевые грибы, бактерии семейства Enterobacteriaceae и P. aeruginosa.  S. aureus  обнаружен не был.

В рамках изучения  контаминантов ЛС особое внимание было уделено грибам, так как именно среди них встречаются потенциальные продуценты микотоксинов (Тутельян, 1985, 2003). Выделенные из  570 серий 150 наименований ЛС культуры плесневых грибов отличались большим разнообразием. В табл. 3 обобщены результаты микологической экспертизы. В экспериментах идентифицировано 182 штамма, которые относились к 74 видам грибов из 16 родов, причем лишь 8 принадлежали к дрожжевым грибам. Cреди выделенных плесневых грибов-контаминантов более 70% относились к родам Aspergillus, Penicillium, Mucor.

Таблица 3

Грибы-контаминанты лекарственных средств

Категории грибов

Роды

Кол-во изолятов

Часто встречающиеся виды

мицелиальные

1. Аspergillus

36

flavus, candidus, niger

2. Penicillium

53

verrucosum, raciborskii, steckii

3. Mucor

39

Racemosus

4. Fusarium

4

5. Alternaria

8

Consortiall

6. Rhizopus

9

Nigricans

7. Trichoderma

6

Harcianum

8. Cladosporium

5

Cladosporioides

9. Botrytis

3

дрожжевые

10. Candida

9

11. Rhodotorula

1

12. Geotrichum

1

13. Cryptococcus

2

14. Acremonium

1

15. Pichia

1

дрожжеподобные

16.Aureobasidium

4

Методические особенности проведения микробиологических исследований качества ЛС

Современные подходы к определению антимикробного действия.

  Данный раздел включает научное обоснование необходимости определения антимикробного действия ЛС с последующей его нейтрализацией во избежание получения ложных результатов контроля качества ЛС.

На первом этапе проведено исследование антимикробного действия более 300 препаратов из ниже перечисленных фармакологических групп: сульфаниламидные препараты; производные 8-оксихинолина; нитрофурана; нафтипиридимина; хинолоны; фторхинолоны; производные хиноксалина; ЛП для лечения грибковых заболеваний; антисептические средства: окислители;  галогенсодержащие соединения; кислоты и щелочи; альдегиды; спирты; соли тяжелых металлов; производные фенола; красители; препараты дегтя, смолы,  продукты переработки нефти, минеральные масла, препараты с серой; разные противомикробные и противопаразитарные ЛС природного происхождения.

Полученные данные позволили выделить 4 группы препаратов:

1. ЛП противомикробной направленности, не обладающие антимикробным действием в отношении фармакопейных тест-микроорганизмов в условиях испытания их качества. Например: Стрептоцид, порошок; Сульфадиметоксин, табл. 0,5г; мазь Борная; Этиловый спирт 96 %, 70 %, 40 %; линимент Вишневского; Ихтиоловая мазь; Винилин; мазь Бензилбензоата  10 % в разведении 1:10 не оказывали влияние на бактерии и грибы.

  1. ЛП, действие которых направлено на один или несколько микроор-ганизмов и нивелировалось разведением в буферном растворе с твином-80 в качестве неспецифического инактиватора. Например: Сульфален, таблетки 0,2 г; раствор Диоксидина 1%; Диоксиколь мазь; Лидаприм суспензия для детей; Фурациллина раствор спиртовой 1:1500; раствор Салициловой кислоты спиртовой 1%; Йодинол; настойка Календулы; Деготь березовый.
  2. НЛС, антимикробное действие которых не удавалось нейтрализовать разведением или мембранной фильтрацией: Нитроксолин таблетки; Неграм капсулы 500мг; Фуразолидон таблетки 0,05г - в отношении спорообразующих грамположительных палочек, бактерий семейства Enterobacteriaceae, S. aureus; Кетоконазол суппозитории вагинальные – в отношении дрожжевых и плесневых грибов. В таких случаях не проводилось выявление микроорганизмов, на которые влияет конкретный ЛП.
  3. ЛП, показатель разведения, которых, снимающий антимикробное действие, совпадал с требованиями их категории. Например, Клотримазол крем 1% относится к категории 2 Изменения № 3 к ГФ XI изд. В 1 г препарата  допускается не  более 100 КОЕ бактерий и грибов суммарно при отсутствии бактерий  семейства Enterobacteriaceae,  S. aureus и P. aeruginosa. Исследования антимикробного действия 10 серий крема Клотримазол 1% различных производителей показали наличие ярко выраженного фунгистатического влияния на дрожжевые (C. albicans) и плесневые (A. niger) грибы. Выявленное влияние не устранялось ни указанным разведением образцов, ни использованием инактиваторов. Нерастворимость мази в изопропилмиристате не позволила использовать для контроля метод мембранной фильтрации. Таким образом, результаты опытов для этой группы ЛП доказывают возможность выполнения контрольных испытаний, ограничивающихся общим числом аэробных бактерий и отсутствием  бактерий  семейства Enterobacteriaceae,  S. aureus и P. aeruginosa. 

  Таким образом, впервые установлено наличие антимикробного действия  в условиях испытания микробиологической чистоты некоторых ЛС. Среди них препараты из следующих фармакологических групп: нейротропные, антидепрессанты, седативные, антигистаминные, спазмолитические, гипотензивные, сосудорасширяющие, ненаркотические противовоспалительные болеутоляющие, жаропонижающие ЛС. Выявленное антимикробное действие выше перечисленных веществ связано с химической структурой  используемой субстанции.

Для достоверного определения антимикробного действия ЛС нами был модифицирован фармакопейный метод. Суть такой процедуры заключалась в проведении  испытания в условиях контроля микробиологической чистоты, начиная с первоначального разведения 1:10 в буферном растворе,  а не сухого вещества, как предусматривала ГФ XI изд.  Это было выполнено для сохранения связи метода определения антимикробного действия с алгоритмом анализа микробиологической чистоты. В связи со значительной стоимостью фармацевтических субстанций и ЛП, иногда небольшими размерами серий отдельных ГЛС и их физико-химическими свойствами изменился подход к  контролю, начиная, прежде всего, с количества образца для анализа.

  Разработан метод репликаций, рекомендуемый, в том числе, для нерастворимых и окрашенных образцов ЛС. Он заключается в том, что на внесенное в соответствующую агаризованную среду (в чашке Петри) разведение препарата наносят тест-микроорганизмы в виде бляшек. На следующем этапе исследований проведено сравнительное изучение двух методов определения антимикробного действия ЛС. Данные, полученные путем определения антимикробного действия водонерастворимых и окрашенных ЛС двумя методами, показали аналогичные результаты (табл. 4). К преимуществам  метода репликаций относятся: экономичность по материалам и времени (требуются только 2 агаризованные среды без пересева на дифференциально-диагностические среды, а результаты можно получить через 24-72 ч); увеличение тест-штаммов микроорганизмов при использовании всего  2-х чашек Петри.  При этом не используются жидкие среды, рост тест-штаммов в которых требует подтверждения путем пересева на плотные питательные среды.

Результаты выполненных опытов доказывают наличие антимикробного действия у ЛС в отношении тех тест-микроорганизмов, которые не допускаются или ограничены количественно в ЛС. На основании полученных результатов нами выделены группы ЛС с различным антимикробным действием, перспективные для изучения, а именно: противогрибковые  ЛС.  Проведенные эксперименты по изучению антимикробного действия более 30 наименований противогрибковых ЛП под международными непатентованными названиями (МНН): тербинафин, клотримазол, флуконазол, итраконазол, кетоконазол, эконазол, бутоконазол, циклопироксоламин, нистатин, нихлоргин и субстанций для их производства показали в большей степени фунгистатическое действие in vitro в отношении C.albicans и A.niger у всех изученных ЛС.

Таблица 4

Определение антимикробного действия  некоторых лекарственных средств с использованием 2-х методов:  модифицированного (1) и  репликаций (2)

Наимено-вание препарата

Мето-ды

Минимальное разведение ЛС, при котором отсутствовало антимикробное действие  в отношении тест- микроорганизмов

B.cereus

№1*

B.subtilis

№1

E.coli

№3

S.abony

№3

P.aerug.

№8

S.aureus

№8

C.albiсans

№2

A.niger

№2

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

1.Деготь березовый

1

1:20

1:20

1:10

пере-сев**

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:20

пере-сев

1:10

1:10

2

1:20

1:20

1:10

1:10

1:10

1:20

1:10

1:10

2.Дротаве-рин табл. 0,08г

1

1:200

1:200

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:200

пере-сев

1:20

1:10

2

1:200

1:200

1:10

1:10

1:10

1:200

1:10

1:10

3.Йодинол

1

1:10

1:10

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

1:50

2

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

4.Олифен таблетки

1

1:50

1:50

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:100

пере-сев

1:100

пере-сев

1:10

1:10

2

1:50

1:50

1:10

1:10

1:100

1:100

1:10

1:10

5.Тамоксифен табл. 0,01г

1

1:200

1:200

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:500

пере-сев

1:10

1:10

2

1:200

1:200

1:10

1:10

1:10

1:500

1:10

1:10

6.Ундецин мазь

1

1:50

1:50

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:50

пере-сев

1:100

1:100

2

1:50

1:50

1:10

1:10

1:10

1:50

1:100

1:100

7.Фукор-цин

1

1:50

1:50

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:100

пере-сев

1:20

1:20

2

1:50

1:50

1:10

1:10

1:10

1:100

1:10

1:10

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

8.Хлорофи-липт 1%  спиртовой раствор

1

1:200

1:200

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:50

пере-сев

1:10

1:10

2

1:200

1:200

1:10

1:10

1:10

1:50

1:10

1:10

9.Эмульсия пихтовой смолы

1

1:10

1:10

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

пере-сев

1:10

1:10

2

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

1:10

Пересев**-посев петлей из жидкой среды на плотную, чтобы доказать наличие бактериального  роста; №1*, 2,3,8  - номера питательных сред

  Полученные данные с использованием двух разработанных нами методов определения антимикробного действия показали, что невозможно  однозначно определить наличие или отсутствие антимикробного действия ЛС, исходя из его физико-химических свойств или включения его в определенную фармакологическую группу. Результаты ряда экспериментов не позволили обнаружить непосредственную связь антимикробного действия ЛП и субстанции, из которой он изготовлен. Таким образом, доказана необходимость изучения антимикробного действия каждого конкретного ЛС во избежание дальнейших ложных результатов контроля по показателю «Микробиологическая чистота».

Разработка методов выделения и идентификации микроорганизмов-контаминантов ЛС.

  В решении многих проблем изучения микробиологической чистоты ЛС существенную роль играют экспериментальные исследования с тест-микроорганизмами, позволяющие моделировать необходимые состояния микроорганизмов в ЛС, изучать их  динамику в производственном процессе.  Данный раздел включает модельные эксперименты с использованием тест-штаммов микроорганизмов, а также различных лекарственных форм, искусственно и естественно контаминированных микроорганизмами.

Стандартным методом количественного определения микроорганизмов в ЛС в нашей стране на сегодняшний день является двухслойный чашечный агаровый метод посева (ГФ XI изд.). В Европейской и Американской фармакопеях рекомендованы глубинный и поверхностный чашечные агаровые методы. Однако в ряде случаев  использование указанных методов затруднено и мало эффективно, например, при определении:

  • спорообразующих бактерий - крупных, волокнистых, вязких, слизистых, склонных к слиянию уже через 24-48 ч инкубации. 
  • грибов из родов Mucor, Rhizopus и др., рост которых едва заметен через 24 ч инкубации, а через 48 ч даже единичные колонии покрывают всю поверхность агара в чашке Петри, делая невозможным подсчет отдельных колониеобразующих единиц (КОЕ).
  • медленно растущих микроорганизмов, напротив, образующих колонии лишь через 5-7 суток, удлиняя сроки микробиологического контроля.

  Описанные трудности побудили нас усовершенствовать метод посева для получения достоверных результатов в тех случаях, когда традиционные методы неэффективны. Предложен модифицированный глубинный (МГ), заключающийся во внесении 1 мл разведения препарата в стерильную чашку Петри и равномерного перемешивания с 5-7 мл агаризованной питательной среды. В отличие от известных методов предлагаемый метод позволяет снизить количество питательной среды. При этом образовавшийся тонкий слой агара создает аэробные условия (с одной стороны) и ограничивает количество питательных веществ для выделяемых бактерий и грибов (с другой стороны), что приводит к более интенсивному росту колоний, что облегчает их учет.

В ряде экспериментов изучена эффективность предлагаемого метода. Проведенные валидационные испытания позволяют обосновать применение МГ метода посева в качестве альтернативного при количественном определении бактерий и грибов, контаминирующих ЛС.

Данные в табл. 5,6 характеризуют положительные результаты валидации, так как полученные при различных методах посева  значения общего числа бактерий и грибов при статистическом анализе  имеют достоверные различия с вероятностью 0,95. В экспериментах показаны особенности  формирования колоний микроорганизмов, снижение времени инкубации до формирования колоний, облегчение количественного учета бактерий и грибов с сокращением сроков анализа.

Таблица 5

Количество КОЕ тест-микроорганизмов при различных методах посева

Тест-штаммы

Методы посева

поверхностный

2-х слойный

глубинный

модифицированный глубинный

1.B.cereus

71+1

84+2

68+2

108+4

2.B.subtilis

112+6

125+6

147+6

160+6

3.A.niger

131+3

153+4

89+3

190+5

4.P.verrucosum

41+1

59+3

57+3

70+3

5.S.cereviseae

60+1

60+2

58+1

64+3

6.C.albicans

44+1

31+6

36+2

39+1

Особенности роста колоний

Типичные  недиссоциированные колонии, легко сосчитываемые, но при подсчете их количества исполь-зуют коэффициент как минимум 100, что не годится для некоторых ЛС.

Склонность к сливному росту, необходимость учета через 18ч,  диссоциация колоний

Типичные, недиссоцииро-ванные четко изолированные колонии,

облегчен учет через 18-24ч

инкубации

(бактерии),

48-72ч (грибы).

  Положительные результаты апробации методов количественного определения микроорганизмов на тест-штаммах (более 12 повторностей) позволили перейти к опытам с использованием сначала искусственно контаминированных ЛС, а затем естественно загрязненных препаратов (табл. 6). Как доказано результатами наших исследований, МГ метод посева может быть использован при количественном определении  микроорганизмов, выделяемых  из ЛС различных фармакологических групп и лекарственных форм.

Таблица 6

Количественное определение  плесневых, дрожжевых  грибов и аэробных бактерий в контаминированных НЛС  (КОЕ/г)

Наименование препарата

Методы посева

поверхностный

2-х слойный

глубинный

модифицирован-ный глубинный

Плесневые и дрожжевые грибы

1.Аллохол табл.

194,0+4,0

222,0+6,0

204,0+5,0

236,0+2,0

2.Гипозоль

250,0+4,0

210,0+1,0

190,0+3,0

260,0+1,0

3.Желчь медицин.

100,0+1,0

85,0+6,0

72,0+4,0

105,0+1,0

4.Парацетамол таблетки

(6,3+0,1) 103

(6,2+0,1) 103

(6,0+0,2) 103

(7,1+0,3) 103

5Финлепсин табл

(1,8+0,5) 104

(6,3+0,2) 104

(6,6+0,1) 104

(6,9+0,1) 104

6.Холензим табл.

250,0+8,0

300,0+6,0

300,0+2,0

350,0+8,0

7.Желчь мед.

(3,0+0,1) 103

(6,0+0,2) 103

(5,0+0,2) 103

(6,0+0,2) 103

8.Карсил-100кап.

(1,3+0,2) 104

(1,3+0,2) 104

(1,0+0,2) 104

(1,4+0,4) 104

9.Карсил-50 кап.

(2,8+0,1) 104

(1,7+0,2) 104

(1,3+0,2) 104

(2,2+0,1) 104

10.Пиперазина адипинат раствор

(1,9+0,1) 104

(0,9+0,2) 104

(2,4+0,2) 104

(2,7+0,2) 104

11Хай-Трим сусп

(4,4+0,2) 103

(4,0+0,1) 103

(4,0+0,2) 103

(4,2+0,1) 103

Особенности роста колоний

недиссоциированные колонии, но при подсчете их количества используют коэффициент  100, что не годится для определенных категорий  ЛС. 

диссоциация колоний, время инкубации более 72ч

недиссоциированные четко изоли-рованные, легко сосчитываемые колонии,

облегчен учет через 48ч инкубации

Аэробные бактерии

12.Альмагель

(2,4+0,1) 106

(2,6+0,2) 106

(3,0+0,1) 106

(3,0+0,1) 106

13.Феназепам таблетки

(4,5+0,1) 103

(4,8+0,2) 103

(4,4+0,2) 103

(6,6+0,3) 103

14.Ортосифона тычиночного листья

(2,1+0,3) 108

(2,1+0,2) 108

(2,1+0,1) 108

(2,1+0,1) 108

Особенности роста колоний

Диссоциированные колонии, склонные к слиянию.

Склонность к сливному росту, необходимость учета через 18ч, выраженная диссоциация колоний.

Недиссоциирован-ные изолирован-ные, легко учиты-ваемые  колонии,   учет через 24ч инкубации.

Преследуя цель гармонизировать методы контроля качества ЛС с методами Европейской Фармакопеи, на следующем этапе  нами разработаны методы выделения из ЛС и идентификации отдельных видов бактерий, а именно: E. coli, Salmonella spp., P. aeruginosa, S. aureus, количественное определение  E. coli, энтеробактерий и других грамотрицательных бактерий. На основании экспериментальных исследований определен алгоритм выделения и  идентификации отдельных  видов бактерий с  использованием питательных сред отечественного производства наряду с импортными аналогами. Проведено сравнение среды №3ГРМ (для  выделения энтеробактерий) и бульона Мак-Конки, среды №4-М (для идентификации энтеробактерий) и агара Мак-Конки, среды №8ГРМ (для культивирования бактерий) и Триптиказо-соевый бульона; среды №12 (селенитовой), магниевой среды (для накопления сальмонелл) и тетратионатного бульона, трех-сахарного агара с солями железа и среды №13.  На основании достоверно выполненных экспериментов установлено:

1. Эффективность испытанного селективного агара для выделения и предварительной идентификации энтеробактерий в моче, сухого, (аналога Мак-Конки агара) производства НПО «Питательные среды» г. Махачкала позволяет рекомендовать эту среду  для целей выделения  E. coli из ЛС.

2. Наличие в препарате сопутствующей микрофлоры в виде грамположительных спорообразующих бактерий не влияет на выделение  E. coli.

3. Количество бульона Мак-Конки или  среды №3 ГРМ  в схеме определения E. coli может быть  уменьшено до 10 мл. 

4. С целью гармонизации в схему испытания на наличие бактерий рода Salmonella дополнительно к висмут-сульфитному агару (среда №5) предложено ввести еще 3 плотные дифференцирующие среды: Дезоксихолат-цитрат агар, Ксилоза-лизин-дезоксихолат агар, Агар с бриллиантовым зеленым, феноловым красным, с лактозой и сахарозой.  Обнаружение типичных колоний на 2-х из 4-х указанных питательных сред позволяет гарантировать, что выделенные из исследуемого образца бактерии относятся к  роду Salmonella.

5.Эффективность разработанной нами среды - Агара с бриллиантовым зеленым  позволяет рекомендовать его для выделения бактерий рода Salmonella  из НЛС.

6. Результаты апробации диагностических наборов фирмы «HiMedia» (Индия) не позволяют рекомендовать их для целей выделения и идентификации контаминантов ЛС. Диагностические наборы представляют собой комплексные системы из жидких селективных  и агаризованных дифференциально-диагностических питательных сред, помещенных во флакон, для идентификации E. coli, Salmonella spp., P. aeruginosa, S. aureus. Использование флакона, содержащего  жидкую (накопительную)  и 1 (или 2) плотные питательные среды, сокращает сроки анализа. Однако при использовании подобных наборов невозможна дальнейшая идентификация колоний, выросших на плотной среде во флаконе с жидкой. Это относится к НЛС, где были обнаружены  несколько контаминатов.

Особенности испытания лекарственных растительных средств на микробиологическую чистоту

В рамках изучения  ЛРС по показателю «Микробиологическая чистота»  с целью формирования требований к их качеству было проведено комплексное изучение их физико-химических, биологических свойств и особенностей. На первом этапе определены категории в зависимости от способа применения:  4А (применяемые после термической обработки)  и 4Б (применяемые без термической обработки). В зависимости от способов приготовления и применения этих препаратов нормы, ограничивающие микробную загрязненность ЛРС и сырья, различны и представлены в Изменении №3 к ГФXI изд. и ОФС 42-0016-04. В результате экспериментов выявлены существенные особенности ЛРС, которые следует учитывать:

  • Высокий уровень контаминации аэробными бактериями и грибами, возникающий из-за объективных условий сбора, переработки и хранения  сырья.
  • Значительные  пределы количественного содержания микроорганизмов (в 1 г образца допускается не более 107 аэробных бактерий, 105 дрожжевых и плесневых грибов). Большинство ЛРС используется после термической обработки, в результате которой микробная загрязненность отваров и настоев снижается в среднем на 2 порядка. Это положение доказано нами экспериментально на 157 образцах ЛРС 22 наименований отваров и настоев.
  • Проба для анализа некоторых средств при массе  10 г  может занимать большой объем, не смачиваемый разбавителем в количестве 100 мл.
  • При добавлении разбавителя ЛРС в виде трав, листьев, цветков и их смесей, набухают настолько сильно, что невозможно использовать  условное разведение 1:10 (смыв) для посева на питательные среды. В таких случаях рекомендовано разведение 1:100 (смыв) при контроле их качества.

С учетом перечисленных особенностей был разработан алгоритм определения микробиологической чистоты ЛРС категория 4А (в качестве примера), что отражено на рис.4.

       1мл         1 мл        1 мл

       

       10г в 100 мл

       физ.р-ра

        Исх. смыв ср.№3 ср.№3  ср.№3

  1:10  9мл 9мл 9мл

      + + + пересев 

       петлей

                количество E.coli

требуемые разведения

Общее число

бактерий Общее число грибов  ср. №4

 

ср. №1 ср. №2 1.Микроскопирование  -  Грам - палочки

2.Цитохромоксидазная реакция -

  ср. №1 ср. №2  3.Посев на среду  №14 -

4.Посев на среду  №15  +

Рис.4 - Схема испытания ЛРС (Кат. 4.А) по показателю «Микробиологическая чистота»

Состояние и перспективы развития материально-технической базы микробиологических исследований при контроле ЛС

  Вопрос оснащенности лабораторий микробиологии  в настоящее время  стоит достаточно остро. В первую очередь это касается питательных сред. Из всего разнообразия выпускаемых промышленностью питательных сред для целей контроля качества ЛС используется ограниченный набор сред. Помимо накопительных и дифференциально-диагностических сред применяют специализированные среды для нейтрализации антимикробных агентов ЛС и для восстановления жизнеспособности поврежденных в технологическом процессе производства клеток. 

  Качество питательных сред – это тот фактор, от которого  наравне с правильно выбранным методом испытания и квалификацией персонала зависит достоверность, воспроизводимость и повторяемость микробиологических анализов. Поэтому экспериментальное качество питательных сред подтверждается перед анализом микробиологической чистоты ЛС.

Проведенное научно-экспериментальное изучение качества питательных сред обосновывает общий подход к оценке их биологических свойств, который был разработан нами и утвержден в ВФС 42-3455-99 «Определение ростовых свойств питательных сред». На модельных опытах с тест-штаммами и с естественно контаминированными образцами Альмагеля, таблеток Карбамазепина, Феназепама, субстанции Метилурацила, листьев Ортосифона тычиночного подтверждено качество среды №1ГРМ, сухой.  Результаты, представленные на рис.5, показывают, что количество КОЕ тест-микроорганизмов и бактерий из ЛС находилось в пределах от 86 до 98 %, если за 100 % принять количество КОЕ, выросших на соево-казеиновом агаре.  Аналогичные результаты были получены для других питательных сред, используемых для контроля качества ЛС. Таким образом, результаты изучения ростовых свойств питательных  сред позволяют обосновать возможность их использования для целей микробиологического контроля качества ЛС. 

Рис.5 Количество тест-микроорганизмов и КОЕ/г в  контаминированных препаратах  (время инкубации 48 ч)

Обозначение : Ряд 1- Количество КОЕ, выросших на соево-казеиновом агаре принято за 100%; Ряд 2- КОЕ, выросших на среде №1ГРМ в % по отношению к первому ряду.

По оси абсцисс  - 1 - B. cereus, 2- B. subtilis, 3- E. coli, 4- S. aureus, 5- Альмагель,

6- Карбамазепин таблетки, 7- Метилурацил субстанция, 8- Феназепам таблетки,

9- Ортосифона тычиночного листья

По оси ординат – количество КОЕ, %

  В настоящее время в ГФ XI изд.  для количественного определения  бактерий, выделяемых из НЛС, рекомендована среда №1, приготовленная на основе мясной  воды. В последних изданиях  ЕР и USP для тех же целей предложена соево-казеиновая среда, в составе которой содержится 0,5% папаинового гидролизата бобов сои и 1,5% панкреатического гидролизата казеина. Переход на питательные среды с соевой основой перспективен и в нашей стране. Это обосновано их стандартностью, высокой биологической ценностью, уникальным химическим составом и относительной дешевизной сои. В связи с этим является актуальным разработка рецептов сред на соевой основе и  оценка их ростовых свойств с использованием фармакопейных тест-микроорганизмов и бактерий, часто выделяемых из НЛС. Результаты представлены в виде коэффициентов прорастания (Кпр), т.е. отношением среднего числа колоний, выросших на испытуемой среде, к среднему числу колоний на контрольной среде.  Данный раздел включает эксперименты по сравнению  сконструированных сред (пептонно-соевого и казеиново-соевого) со средой №1ГРМ и соево-казеиновым агаром (Casein Soya Bean Digest Agar, Merck, №1.05458). Статистически обработанные значения Кпр на испытуемых средах колебались от 0,5 до 1,2 (Кпр=1,0 на соево-казеиновом агаре (табл. 7). В соответствии со стандартом ИСО XP CEN ISO/TS 11133-2 (2004 г.) Кпр должен быть не менее 0,7. Экспериментальные партии были наработаны на ОАО «Биомед» и с положительными результатами прошли апробацию в ИСКЛС.

Таблица 7

Коэффициенты прорастания тест-штаммов на испытуемых питательных средах

Тест-микроорганизмы

Коэффициенты прорастания  на питательных средах

Соево-казеино-вый агар (Merсk)

СКА

(ОАО «Биомед»)

№1ГРМ

(п.Оболенск)

B.cereusATCC 10702

1,0

0,9

0,5

B.subtilis ATCC 6633

1,0

1,2

0,7

E. coli  ATCC 25922

1,0

1,2

0,9

S.aureus ATCC 6538

1,0

1,2

1,0

Как видно из табл.7  предложенные среды не уступали традиционным.

  Важным результатом выполненных исследований явились размеры клеток бактерий, культивируемых  на испытуемых средах. Определение проводили  в сравнении с  размерами клеток бактерий по определителю Берджи (р. Bacillus 1,2-7,0 – 0,3-2,2, p. Escherichia 0,4-0,7 – 1,0-3,0, p. Staphylococcus 0,5-1,5 мкм в диаметре)  (табл. 8).

Таблица 8

Размеры клеток фармакопейных тест-микроорганизмов на питательных средах

Тест-микро-

Организмы

Размеры клеток тест-микроорганизмов на питательных средах, мкм

Соево-казеиновый агар (Merсk)

СКА

(ОАО«Биомед»)

№1ГРМ

(п.Оболенск)

Длина

Ширина

Длина

Ширина

Длина

Ширина

B.cereus

ATCC 10702

3,94+0,50

1,00+0,15

4,26+0,59

1,14+0,13

4,14+0,44

1,10+0,06

B.subtilis

ATCC 6633

3,13+0,47

0,62+0,10

3,48+0,53

0,66+0,07

4,41+0,50

0,72+0,08

E. coli

ATCC 25922

2,27+0,43

0,54+0,08

2,29+0,38

0,52+0,06

2,11+0,37

0,55+0,07

S.aureus

ATCC 6538

Диаметр 0,59+0,04

Диаметр 0,52+0,05

Диаметр 0,52+0,06

Выполненное сравнительное изучение  роста тест-микроорганизмов продемонстрировало высокие Кпр (от 0,9 до 1,2) через 24 ч инкубации, типичный вид колоний, а также характерные размеры клеток в мазках  после окраски по Грамму доказывают целесообразность использования агара на основе соевого гидролизата в качестве среды для подсчета микроорганизмов-контаминантов ЛС.

Пути совершенствования эффективности работы микробиологических лабораторий в сфере лекарственного обращения

  Микробиологические лаборатории фармацевтических предприятий и контрольных служб отличаются от других лабораторий. Это связано с тем, что сотрудники проводят контроль качества заведомо стерильной или незначительно контаминированной продукции при четком  соблюдении правил GMP и GLP. В используемых в настоящее время нормативных документах приводятся только обобщенные положения работы любых лабораторий подобной направленности.  При проектировании новых или перепланировке существующих лабораторий  имеются отличительные особенности, без учета которых невозможно их дальнейшее функционирование. Микробиологический анализ на фармацевтическом производстве строго ограничен по времени в связи с экономическим аспектом. Основываясь на проведенном научно-экспериментальном изучении комплекса вопросов, связанных с микробиологическим контролем качества ЛС, определена необходимость решения этих вопросов в системе.

Система микробиологического контроля качества лекарственных средств (СМКК ЛС) - направление фармацевтической микробиологии, -  комплекс элементов, технических средств и организационных мероприятий, обеспечивающих качество и безопасность ЛС по микробиологическим показателям.  СМКК ЛС  в составе контроля качества (QC), обеспечения качества (QA), надлежащей производственной (GMP) и лабораторной (GLP) практик является частью  Государственной системы контроля качества, эффективности и безопасности ЛС, утвержденной Федеральным законом «О лекарственных средствах»(№86-ФЗ от 22 июня1998 г.)

Структура СМКК представлена следующими элементами:

1.Требования к качеству в виде допустимых пределов количественного содержания бактерий и грибов, а также ограничения по наличию или количественному содержанию определенных бактерий в лекарственных препаратах, субстанциях и вспомогательных веществах.

2.Методы микробиологического контроля качества ЛС.

3.Методы микробиологического мониторинга производственных и лабораторных помещений.

4.Питательные среды с гарантированными ростовыми и селективными свойствами  и  методами их определения.

5. Персонал, аттестованный на работу в контрольной службе.

6.Микробиологическая лаборатория (специализированный набор помещений) со специфическим оборудованием и  методами его валидации и аттестации.

7.Документация (ОФС, ФСП, НД, СОП и др.)

Все элементы СМКК ЛС участвуют в оценке достоверности полученных результатов, подтверждая  надежность указанной системы (рис. 7).

Методологический подход к совершенствованию СМКК ЛС с учетом особенностей разработанной системы действует на основе принципов: научности, адаптивности, оптимальности и экономичности (рис. 6).

 

Рис.6  Методический подход к совершенствованию СМКК ЛС

36

Рис.7 Оценка достоверности полученных результатов и принятия правильных решений  в системе микробиологического контроля качества ЛС

Связи пользователей СМКК ЛС в составе системы Государственного контроля качества ЛС представлены на рис. 8.

Рис.8  Связи пользователей СМКК ЛС в составе системы Государственного контроля качества ЛС

38

Концепция рационального построения и функционирования  СМКК ЛС:

  1. Наличие современных нормативных документов, определяющих правовые нормы работы СМКК ЛС.
  2. Взаимосвязь всех элементов  СМКК, образующих 3 главных направления - регистрацию, производство и контроль качества ЛС.
  3. Систематическое обучение персонала.
  4. Регулярное проведение внутренних лабораторных проверок и периодическое выполнение заданий внешних аудитов. 

Выводы

1. Созданная система микробиологического контроля качества лекарственных средств (СМКК ЛС), фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ позволяет обеспечить качество и безопасность ЛС по микробиологическим показателям и  состоит из следующих элементов: - требования к качеству ЛС;

- методы микробиологического контроля и мониторинга производственных и лабораторных помещений; - питательные среды с гарантированными ростовыми и селективными свойствами  и  методами их определения; - персонал;

- микробиологическая лаборатория (специализированный набор помещений) со специфическим оборудованием и  методами его валидации и аттестации;

- документация (ОФС, ФСП, НД, СОП и др.).

2. На основе системного анализа отечественных и зарубежных ЛС  определено качество различных лекарственных форм фармацевтических препаратов по микробиологическим показателям и  показана зависимость уровня контаминации микроорганизмами от природы ЛС: препараты на основе субстанций природного происхождения не соответствовали требованиям в 1,9%,  лекарственные растительные средства – в 3,5%. Представленные методы определения микробиологической чистоты различных форм растительных препаратов в соответствии с утвержденной в ОФС 42-0016-04  схемой исключают преинкубацию в лактозном бульоне (среда №11), что сокращает сроки и трудоемкость анализа на 5 ч и приводит к экономии питательной среды.

3. Выявлено, что характер микрофлоры, выделяемой из ГЛС, фармацевтических субстанций и вспомогательных веществ является полиморфным и обнаруживается преимущественно в виде аэробных бактерий,  дрожжевых и плесневых грибов. Проведенный анализ количественного содержания и видового состава дрожжевых и плесневых грибов показал, что  28,9% изученных 570 серий 150 наименований ЛС содержали грибы выше допустимых пределов, при этом 69% идентифицированных штаммов 70 видов из 17 родов относились к родам  Penicillium, Aspergillus, Mucor.

4. На основании анализа  уровня микробиологической чистоты ЛС в нашей стране и за рубежом представлены и утверждены требования по микробиологической чистоте ЛС, гармонизированные с Европейской Фармакопеей. Впервые в России обозначены и утверждены нормы допустимого содержания бактерий и грибов в  фармацевтических  субстанциях и вспомогательных веществах.

5. Установлено антимикробное действие в условиях испытания микро-биологической чистоты различных ЛС, не являющихся бактериостатическими и фунгистатическими, а относящихся к фармакотерапевтическим группам: нейротропные, антидепрессанты, седативные, антигистаминные, спазмолитические, гипотензивные, сосудорасширяющие и др. Полученные результаты подтвердили необходимость определения антимикробного действия ЛС во избежание получения ложноотрицательных результатов контроля и возможность проводить анализ микробиологической чистоты в полном или сокращенном объеме. Разработанные методики определения антимикробного действия позволят стандартизовать подготовительный этап контроля качества ЛС.

6. Внедрены (ОФС 42-0067-07) современные методы количественного определения микроорганизмов в ЛС, в том числе альтернативный метод, который отличается экономичностью  (за счет сокращения количества питательной среды) и высокой эффективностью ввиду ускоренного (48-72 ч) образования колоний, четкого, компактного их формирования, облегчающего их количественный учет. Выполненная валидация предложенного метода позволяет рекомендовать его для получения достоверных  результатов в более короткие сроки. Разработанные методологические приемы определения отдельных видов бактерий-контаминантов ЛС (ОФС 42-0067-07) содержат испытание на наличие E.coli, Salmonella sp., P.aeruginosa, S. aureus, количественное определение E.coli, энтеробактерий и других родственных им грамотрицательных микроорганизмов. Они позволяют оценить качество ЛС на  сухих питательных средах отечественного производства  наравне с сухими и готовыми импортными питательными средами.

7. Апробация и сравнительное изучение отечественных аналогов Соево-казеинового агара, питательных сред типа Мосселя и Мак-Конки, изготовленных на ОАО  «Биомед», наряду с зарубежными, позволяет рекомендовать их для использования в схемах испытания качества НЛС по показателю «Микробиологическая чистота».

Используемые сокращения:

GMP - правила надлежащей производственной практики

GLP - правила надлежащих лабораторных испытаний

ЛС - лекарственные средства        

ЛП - лекарственный препарат

ГЛС- готовое лекарственное средство

НЛС – нестерильные лекарственные  средства

ЛРС – лекарственные растительные средства

ИСКЛС ФГУ НЦ ЭСМП  Росздравнадзора – Институт стандартизации и контроля  лекарственных средств Федерального Государственного Учреждения Научный Центр экспертизы средств медицинского применения Росздравнадзора

ГФ – Государственная Фармакопея

ОФС – общая фармакопейная статья

ВФС – временная фармакопейная статья

Метод НВЧ – метод наиболее вероятных чисел

ОЧБ – общее число бактерий

ОЧГ – общее число грибов

Кпр – коэффициент прорастания питательной среды

Список научных работ, опубликованных по теме диссертации

  1. Гунар, О.В. Различные модификации среды Сабуро для количественного определения грибов, контаминирующих нестерильные лекарственные средства / О.В. Гунар, К.А. Каграманова// Химико-фармацевтический журнал.- 1992.- №6.- С.67-68.
  2. Каграманова, К.А. Сравнительное изучение микробной загрязненности лекарственного растительного сырья и препаратов, изготовленных на его основе / К.А. Каграманова , О.В. Гунар // Фармация.- 1992.-  №6. – С.24-26.
  3. Каламова, Н.И. Изменение к статье ГФ XI изд. «Методы микробиологического контроля лекарственных средств»/ Н.И. Каламова, К.А. Каграманова, О.В. Гунар [и др.]// Фарматека.- 1997.- №1.- C.37-38.
  4. Каламова, Н.И. Проекты фармакопейных статей. Дополнение к  статье ГФ XI  изд. «Методы микробиологического контроля лекарственных средств»/ Н.И. Каламова, К.А. Каграманова, О.В. Гунар [ и др.]  //Фарматека.-1995.-№5.- С.7-8. 
  5. Каламова, Н.И. Определение ростовых свойств питательных сред / Н.И. Каламова, К.А. Каграманова, О.В. Гунар [и др.] // Ремедиум. Ведомости Научного Центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств МЗ РФ (НЦ ЭГКЛС). - 2001.- №2 (6).-  С.75-76.
  6. Каламова, Н.И. Количественное определение микроорганизмов в нестерильных лекарственных средствах/ Н.И. Каламова, К.А. Каграманова, О.В. Гунар// Ремедиум. Ведомости Научного Центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств МЗ РФ (НЦ ЭГКЛС). -2001.- № 2(6).- С.77-78.
  7. Гунар, О.В. Валидация питательных  сред, используемых для контроля микробиологической чистоты лекарственных средств/ О.В. Гунар, К.А. Каграманова, Н.И. Каламова // Мат-лы  Междунар. науч.-практ. конф.: Химия в технологии и медицине. Махачкала, 2001.- С.53-54.
  8. Гунар, О.В Микробиологический мониторинг окружающей среды фармацевтических производств/ О.В. Гунар, К.А. Каграманова// Мат-лы междунар. семинара: Современные проблемы химии  и технологии косме-тических средств. Консерванты в косметике. РКПА , 2001.- С. 2-7.
  9. Каграманова, К.А. Изменение N2  к статье ГФ XI изд. «Методы микробиологического контроля лекарственных средств» / К.А. Каграманова, Н.И. Каламова, О.В. Гунар // Ремедиум. Ведомости Научного Центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств МЗ РФ (НЦ ЭГКЛС).- 2002.- №1(9).- С.33-39.
  10. Гунар, О.В. Определение качественного состава микофлоры в лекарственных средствах и сырье/ О.В. Гунар, Н.С. Евтушенко// Ремедиум. Ведомости Научного Центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств МЗ РФ (НЦ ЭГКЛС).- 2002.- №1(9).-  С.110-112.
  11. Гунар, О.В. К вопросу о качестве лекарственного растительного сырья по показателю «Микробиологическая чистота» / О.В. Гунар, Г.М. Булгакова, Н.И. Каламова [и др.]// Фармация.- 2002.- №1.- С.19-22.
  12. Гунар, О.В. Проблемы оценки качества лекарственных средств по показателю «Микробиологическая чистота» на стадии Государственного контроля/ О.В. Гунар, К.А. Каграманова, Н.И. Каламова [и др.]// Ремедиум. Ведомости Научного Центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств МЗ РФ (НЦ ЭГКЛС). -2002.- №1(9).- С. 102-106.
  13. Гунар, О.В. Качественный и количественный состав грибов-контаминантов нестерильных лекарственных средств/ О.В. Гунар // Мат-лы обучающего семинара: Современные требования к организации и деятельности микробиологических лабораторий отделов контроля качества фармацевтических предприятий. М.,  2001г.- С.76-77.
  14.   Гунар, О.В. Определение антимикробного действия лекарственных средств. Практические подходы/ О.В. Гунар, Н.И. Каламова, Н.С. Евтушенко // Фармация. - 2002.- №2.- С.4-7.
  15.   Гунар, О.В. Микробиологическая лаборатория для контроля качества лекарственных средств по показателю «Стерильность»: устройство и оборудование/ О.В. Гунар, К.А. Каграманова, А.Ф. Рылин// Химико-фармацевтический  журнал.- 2002.- Т.36. № 6.- С.52-54.
  16.   Каграманова, К.А. Испытание на стерильность. Методы микробиологического контроля лекарственных средств. Проект Общей фармакопейной статьи для ГФ XII изд./ К.А. Каграманова, Н.И. Каламова, С.В. Денисова [и др.]// Ремедиум. Ведомости Научного Центра экспертизы и государственного контроля лекарственных средств МЗ РФ (НЦ ЭГКЛС).- 2002.- №2.- С.52-58.
  17. Гунар, О.В. Особенности контроля качества некоторых лекарственных средств с противогрибковым действием по показателю «Микробиологическая чистота» / О.В. Гунар, Н.И Каламова., Н.С. Евтушенко // Химико-фармацевтический  журнал. - 2003. - Т.37. №1. - С.46-48.
  18. Гунар, О.В. Валидация метода количественного определения аэробных бактерий и грибов, выделяемых из лекарственных средств. Альтернативный агаровый  метод / О.В. Гунар // Химико-фармацевтический журнал. - 2003. - Т.37. № 3.- С.53-56.
  19. Гунар, О.В. Особенности испытания лекарственных растительных средств на микробиологическую  чистоту / О.В. Гунар // Фармация.- 2003.- №3.- С.5-8.
  20. Гунар, О.В. Микробиологические аспекты анализа качества воды / О.В. Гунар // Фармация.- 2003.- №1.- С.21-23.
  21. Гунар, О.В. Использование нейтрализующей жидкости для снятия антимикробного действия некоторых лекарственных средств // О.В. Гунар/ X Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2003.- С. 710.
  22. Гунар, О.В. Разработка питательных сред для контроля микробиологической чистоты нестерильных  лекарственных средств на основе ферментативного гидролизата соевой муки / О.В. Гунар, К.А. Каграманова // Мат-лы Междунар. науч.-практ. конф.: Разработка и стандартизация микробиологических питательных сред и тест-систем. Махачкала, 2003.- С.62-63.
  23. Гунар, О.В. Сравнение селективных свойств диагностических питательных сред для выделения Salmonella spp. / О.В. Гунар // Мат-лы  Междунар. науч.-практ. конф.: Разработка и стандартизация микробиологических питательных сред и тест-систем. Махачкала, 2003.- С.11-12.
  24. Гунар, О.В. Этапы контроля качества питательных сред, используемых в фармацевтической микробиологии, на стадии их валидации. / О.В. Гунар // Мат-лы Междунар. науч.-практ. конф.: Разработка и стандартизация микробиологических питательных сред и тест-систем. Махачкала, 2003.- С.71-72.
  25. Гунар, О.В. Некоторые аспекты использования метода мембранной фильтрации при контроле стерильности некоторых лекарственных средств/ О.В. Гунар, А.С. Колбикова// Мат-лы XI конгр.: Человек и лекарство. М., 2004.- С. 867.
  26. Гунар, О.В. Значение количеств тест-микроорганизмов, вносимых в чашки Петри при определении антимикробного действия лекарственных средств/ О.В. Гунар, Г.М. Булгакова //  Мат-лы XI Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2004,- С. 20.
  27. Гунар, О.В. Развитие методов оценки безопасности лекарственных препаратов/ О.В. Гунар, С.И.Столяров, А.Г. Ковалев, [и др.]// Мат-лы XV Междунар. Симпозиума: Медико-экологическая безопасность, реабилитация и социальная защита населения. Италия, 2004.- С.227-232.
  28. Гунар, О.В. Определение и нейтрализация антимикробного действия лекарственных средств/ О.В. Гунар // Фармация.- 2004.-№3.- С.5-8.
  29. Гунар, О.В. Метод мембранной фильтрации в контроле качества лекарственных средств/ О.В. Гунар, А.С. Колбикова// Фармация.- 2004.-  №4.- С.11-13.
  30. Науменко, А.В. Роль биомеханических характеристик бактерий при фильтрационном анализе стерильности лекарственных средств/ А.В. Науменко, О.В. Гунар, Н.С. Снегирева// Мат-лы VII Всерос. конф. по биомеханике. 2004 , Н. Новгород.- Т.2.- С.81-82.
  31. Гунар, О.В. Совершенствование методов микробиологического контроля  качества лекарственных средств / О.В. Гунар // Мат-лы VII съезда фармацевтов Республики Беларусь: Фармация XXI века. Витебск, 2004.- С.147-149.
  32. Гунар, О.В. Разработка критериев оценки работы специалистов-микробиологов фармацевтических производств и контрольных служб / О.В. Гунар // Мат-лы VII съезда фармацевтов Республики Беларусь: Фармация XXI века. Витебск, 2004.- С.49-51.
  33. Каграманова, К.А. Сравнение жидких питательных сред, применяемых для выделения Salmonella из нестерильных лекарственных средств/ К.А. Каграманова, О.В. Гунар, И.А. Буйлова// Мат-лы - XII Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М.,  2005.- С.19-20.
  34. Денисова, С.В. Особенности отбора образцов при контроле стерильности лекарственных средств / С.В. Денисова, О.В. Гунар, Е.С. Новик [и др.]//  Мат-лы XII Рос. нац.  конгр.: Человек и лекарство. М.,  2005.- С.16.
  35. Гунар, О.В. Риск получения ложных микробиологических результатов при контроле качества лекарственных средств/ О.В. Гунар// Фармация.-2005.-№2.- С.29-31.
  36. Гунар, О.В. Определение антимикробного действия лекарственных средств различными методами/ О.В. Гунар,  К.А. Каграманова// Химико-фармацевтический журнал.-2005.- Т.39. №5. - С.53-56.
  37. Гунар, О.В. Анализ риска получения ложных результатов контроля качества лекарственных средств по микробиологическим показателям / О.В. Гунар //  Мат-лы XVI междунар. конф. АСИНКОМ: Правила GMP: задачи и опыт внедрения. Техника чистых помещений. М., 2005.- С. 56-59.
  38. Гунар, О.В. Изучение антимикробного действия некоторых нейротропных лекарственных  средств в условиях испытания микробиологической чистоты препарата/ О.В. Гунар// Мат-лы 60-й регион. конф.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Пятигорск, 2005.- С.326.
  39. Гунар, О.В. Зависимость уровня микробиологической чистоты лекарственных средств от природы субстанций/ О.В. Гунар,  К.А. Каграманова //  Мат-лы IX междунар. съезда: Фитофарм. С.-Пб., 2005.- С.249-251.
  40. Гунар, О.В. Современные методы выделения E. coli и Salmonella из нестерильных лекарственных средств/ О.В. Гунар // Фармация.- 2005.- №4.- С.42-46.
  41. Гунар, О.В. Современные методы контроля микробиологической чистоты поверхностей при  мониторинге помещений фармацевтических предприятий и контрольных лабораторий/ О.В. Гунар, С.Ю. Шишканов //Медицинский бизнес – Лекарства.- 2005.- №7-8 (131-132).- С.38-41.
  42. Гунар, О.В. Особенности подготовки таблетированных препаратов для посева на микробиологическую чистоту/ О.В. Гунар, Г.М. Булгакова, Т.Н. Красильникова// Мат-лы XII Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2005.- С.656.
  43. Гунар, О.В. Изучение возможности переживания микроскопических грибов в НЛС и вспомогательных веществах для их производства/ О.В. Гунар// Химико-фармацевтический журнал. -2006.- Т.40. №2.- С.54-56.
  44. Денисова, С.В. Изучение эффективности антимикробных консервантов некоторых отечественных лекарственных средств/ С.В. Денисова, О.В. Гунар, Ж.И. Аладышева // Ведомости НЦ ЭСМП,-2006,- №1, с. 70-73.
  45. Гунар, О.В. К вопросу о контроле качества некоторых антигистаминных лекарственных средств (ЛС) по показателю «Микробиологическая чистота»/ О.В. Гунар// Мат-лы 61 рег. конф.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции. Пятигорск, 2006.- С.188-189.
  46. Багирова, В.Л. Направления развития микробиологического контроля лекарственных средств в Российской Федерации/ В.Л. Багирова, О.В. Гунар, К.А. Каграманова, [и др.]//  Ведомости НЦ ЭСМП. – 2006.- №2.- С. 65-67.
  47. Гунар, О.В. Микробиологическая чистота новой лекарственной формы антисептических препаратов для местного применения / О.В. Гунар, А.С. Колбикова // Ведомости НЦ ЭСМП.-2006.- №2.- С. 75-76.
  48. Гунар, О.В. Гармонизация подходов к анализу качества питательных сред, используемых для микробиологического контроля лекарственных средств с международными требованиями/ О.В. Гунар,  К.А. Каграманова, В.А. Мельникова// Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф.: Вакцинология 2006. Совершенствование иммунобиологических средств профилактики, диагностики и лечения инфекционных болезней. М., 2006.- С.37-38.
  49. Новик, Е.С. Изучение качества некоторых препаратов инсулина по показателю «Стерильность» / Е.С. Новик, О.В. Гунар// Химико-фармацевтический журнал. – 2007.- Т.41. №3.- С.55-56.
  50. Гунар, О.В. Влияние некоторых лекарственных средств, обладающих антимикробным действием, на морфометрические характеристики Bacillus cereus АТСС 10702/ О.В. Гунар, Г.М. Булгакова// Мат-лы XIV Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2007. - С.14.
  51. Новик, Е.С. Особенности пробоподготовки некоторых лекарственных средств при определении размера частиц методом Каултера / Е.С. Новик, О.В. Гунар // Мат-лы XIV  Рос. нац.  конгр.: Человек и лекарство. М., 2007. - С.26.
  52. Денисова, С.В. Сравнение методов определения антимикробной активности препаратов хлорофиллипта в масле / С.В. Денисова, О.В. Гунар // Мат-лы XIV  Рос. нац.  конгр.: Человек и лекарство. М., 2007.- С.16-17.
  53. Гунар, О.В. Современное положение и задачи фармацевтической микробиологии, как одного из разделов микробиологии / О.В. Гунар // Мат-лы XIV съезда Всерос. науч.-практ. общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов: Итоги и перспективы эпидемического благополучия населения Российской Федерации. М., 2007.- т.1.- С.142-143.
  54. Зилфикаров, И.З. Вопросы стандартизации препарата Хлорофиллипт раствор в масле 2% / И.З. Зилфикаров, О.В. Гунар // Фармация.- 2007.- №3.- С.7-9.
  55. Гунар, О.В. Пробоподготовка лекарственных препаратов на основе клея БФ-6 перед испытанием  на микробиологическую чистоту/ О.В. Гунар, А.С Колбикова// Мат-лы XIV Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2007.- С.15.
  56. Гунар, О.В. К вопросу о качестве препарата уголь активированный по показателю «Микробиологическая чистота» / О.В. Гунар, А.С. Колбикова // Мат-лы XV  Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2008.-С.535.
  57. Новик, Е.С. Определение частиц в неиньекционных лекарственных средствах методом Каултера/ Е.С. Новик, О.В. Гунар // Мат-лы XV  Рос. нац. конгр.:  Человек и лекарство. М.,  2008.- С. 555.
  58. Гунар, О.В. Влияние  фунгистатического действия некоторых противогрибковых препаратов на морфологические характеристики Candida Albicans NCTC 885-653/ О.В. Гунар, Г.М. Булгакова, Т.Н. Красильникова// Мат-лы XV Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М.,  2008.-С. 535.
  59. Денисова С.В. К вопросу устранения антимикробного действия некоторых лекарственных средств для наружного применения при контроле по показателям «Стерильность» и «Микробиологическая чистота» / С.В. Денисова, О.В. Гунар // Мат-лы XV Рос. нац. конгр.: Человек и лекарство. М., 2008.- С.536.
  60. Гунар, О.В. Проблемы, возникающие при оценке качества фармацевтических субстанций по микробиологическим показателям/ О.В. Гунар, К.А. Каграманова// Мат-лы 63 рег. конф.: Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции.  Пятигорск, 2008.- С.401-402.
  61. Гунар, О.В. Руководство по медицинской микробиологии. Общая и санитарная микробиология. Книга 1 /О.В. Гунар, Л.А. Каграманова// Санитарно-микробиологическое исследование фармацевтических препаратов/ Под ред. А.С. Лабинской, Е.Г. Волиной. - М., Изд. БИНОМ, 2008.- С.989-1011.
  62. Одегова, Т.Ф. Микроорганизмы и лекарства: опастность и польза /Т.Ф Одегова,. О.В. Гунар, Н.В Николаева // Мат-лы Российск. науч.-практ. конф.: Современное состояние и пути оптимизации лекарственного обеспечения населения. Пермь, 2008. - С. 27-29.
  63. Одегова, Т.Ф. Методическое руководство. Микробиологический контроль качества лекарственных средств/ Т.Ф. Одегова, О.В. Гунар // Пермь, Изд. ПГФА, 2008. –68с.

ГУНАР Ольга Викторовна (Россия)

Методологические основы  совершенствования

системы  микробиологического  контроля качества лекарственных средств

Предложен методологический подход по совершенствованию системы микробиологического контроля качества лекарственных средств (ЛС), как основы фармацевтической микробиологии, Проведена оценка результатов испытания микробиологической чистоты более 11,5 тыс. серий ЛС различных фармакологических групп и лекарственных форм. Выявлено, что наиболее контаминированными являются препараты на основе природных субстанций (1,9%) и лекарственных растительных средств (3,5%). Установлено, что 28,9%  от 570 изученных серий НЛС содержали грибы выше допустимых пределов, Разработаны методы определения антимикробного действия ЛС, количественного и качественного определения аэробных бактерий, дрожжевых и плесневых грибов, энтеробактерий и  других грамотрицательных бактерий, E. coli, Salmonella spp.  Обоснованы  схемы  испытания различных ЛС (в том числе, растительных препаратов) на отечественных и  зарубежных питательных средах. Разработаны рецептуры питательных сред на соевой основе и проведена их апробация.  Обобщены принципы работы современных микробиологических лабораторий, занимающихся контролем качества ЛС на фармацевтических производствах и в контрольных службах. 

Olga Victorovna Gunar

Methodological base of perfection of the system of control quality pharmaceutical preparation

  We offered the methodological base of perfection of the system of control quality pharmaceutical preparation. There is a complex decision of drug microbiological control in pharmaceutical microbiology. More than 11500 series of pharmaceutical preparation have been controlled, various pharmaceuticals gropes and forms.

It was establish, that the preparations of the natural raw material and herb had the highest level of microbial contamination, exactly: 1,9% and 3,5%. From 570 inspected series 28,9% of non-sterile preparations had more molds, than in allowed. We worked out methods of microbial count (bacteria, moulds, yeasts, enterobacteria), methods of identification of bacteria (E. coli, Salmonella spp.).

There is guidance of various drugs examination using home and foreign nutritive media.  The formulas of soya media have been formed. Media of firm «Biomed» were examined.

The work principles of modern microbiological laboratories whish control drugs in firms and control service have been summarized.




© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.