WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

загрузка...
   Добро пожаловать!

Pages:     || 2 | 3 |

На правах рукописи

НОВИКОВА АННА ЕВГЕНЬЕВНА ХРОМАТОГРАФИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИДЕНТИФИКАЦИИ И АНАЛИЗА АМИНИРОВАННЫХ МЕТАБОЛИТОВ В МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПРОЦЕССАХ Специальность 05.11.11 – хроматография и хроматографические приборы

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата химических наук

Москва 2008

Работа выполнена в Институте физической химии и электрохимии им. А.Н. Фрумкина Российской академии наук и в лаборатории № 5 Закрытого акционерного общества «Научноисследовательский институт Аджиномото-Генетика» (ЗАО «АГРИ»)

Научный консультант: доктор химических наук Буряк Алексей Константинович

Официальные оппоненты: доктор химических наук Ларин Александр Васильевич ИФХЭ РАН кандидат химических наук Назимов Игорь Владимирович ИБХ РАН

Ведущая организация: Химический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова

Защита состоится « 19 » февраля 2008 года в 14 час 00 мин на заседании Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 002.259.04 при Институте физической химии и электрохимии им. А.Н. Фрумкина Российской академии наук по адресу:

119991, г. Москва, Ленинский пр-т, д. 31, корп. 4.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института физической химии и электрохимии им. А.Н. Фрумкина Российской академии наук.

Автореферат размещен на сайте Института: http:/phyche.ac.ru Отзывы на автореферат (заверенные печатью) просим выслать по адресу:

119991, г. Москва, Ленинский пр-т, д.31, корп. 4, ИФХЭ РАН ученому секретарю Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 002.259.04 Автореферат разослан « » января 2008 года.

Ученый секретарь Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций кандидат химических наук Л.Н. Коломиец 2

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Биотехнологический процесс является основным способом получения многих биологически активных веществ, химический синтез которых сложен или экономически невыгоден. В частности, микробиологический способ получения аминокислот, которые играют большую роль в здравоохранении, животноводстве и пищевой промышленности, отличается существенными преимуществами, так как позволяет синтезировать аминокислоты L-формы из относительно дешевых источников углерода. Аминокислоты секретируются в среду штаммамипродуцентами, способными к эффективному биосинтезу основного продукта в результате генетического конструирования. В процессе микробиологического синтеза целевой аминокислоты могут накапливаться сопутствующие аминированные метаболиты, образующиеся как в процессе биосинтеза, так и при деградации основного продукта. Поэтому, на всех этапах биотехнологического процесса необходим аналитический контроль этих соединений.

В процессе разработки и оптимизации биотехнологического процесса необходимо контролировать не только количество целевого компонента и его известных метаболитов, но и отслеживать появление новых, не всегда предсказуемых примесей. Кроме того, аналитический контроль необходим и в процессе генетического конструирования штаммов-продуцентов для получения информации об изменении активностей ферментов, участвующих в биосинтезе целевого продукта.

Биотехнологические образцы, в частности культуральные жидкости (КЖ) штаммов-продуцентов, являются сложными смесями, содержащими компоненты исходной питательной среды, клетки микроорганизмов, продукты биосинтеза. Поэтому, при работе с реальными биологическими образцами целесообразно использовать комплексный подход, сочетающий высокоэффективные методы разделения, идентификации и количественного анализа соединений.

Используя метод высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), можно провести идентификацию соединений только по времени удерживания, что может быть недостаточным в случае неразделенных хроматографических пиков. Дополнительную информацию могут дать спектры поглощения и флуоресценции, и, безусловно, надежность идентификации повышается при использовании масс-спектрометра (МС). Однако, для анализа с использованием масс-спектрометрического детектора существует ряд ограничений по составу подвижной фазы. Традиционно используемые в ВЭЖХ подвижные фазы, содержащие фосфатные буферы, растворы солей высокой концентрации (50 – 100 мМ) не рекомендуется использовать при работе с МС, так как это может быть причиной подавления ионизации аналитов. При этом условия хроматографирования должны обеспечивать полное разделение соединений, имеющих одинаковую молекулярную массу, и, вместе с тем, быть совместимыми с МС.

Таким образом, актуальной является разработка комплекса высокоэффективных аналитических методов, необходимых на этапе генетического конструирования штаммов-продуцентов, а также при оптимизации условий биосинтеза целевого продукта.

Цель и задачи исследований: Целью диссертационной работы являлась разработка комплекса инструментальных методов идентификации аминосоединений с использованием ВЭЖХ, ВЭЖХ/МС и высокоэффективного капиллярного электрофореза (КЭ) для исследований биотехнологических образцов, таких как КЖ бактериальных штаммов и реакционные смеси изучаемых ферментных препаратов.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

- изучить влияние состава подвижной фазы на разделение N-[(6хинолиниламино)карбонил]-производных (ХАК) аминокислот и полиаминов в условиях обращенно-фазового режима ВЭЖХ (ОФ-ВЭЖХ);

- исследовать влияние параметров источника ионизации на интенсивность и соотношение сигналов ионов в масс-спектре ХАК-производных аминокислот и полиаминов;

- на основе проведенных исследований выбрать оптимальные условия хроматографического разделения и масс-спектрометрического детектирования ХАК-производных биогенных полиаминов и аминокислот, в том числе структурных изомеров;

- с помощью метода КЭ исследовать влияние состава компонентов буфера на разделение анионов дикарбоновых и N-замещенных аминокислот и выбрать условия для определения этих соединений.

Научная новизна:

1. Исследовано влияние pH и концентрации буферного раствора на удерживание ХАК-производных аминокислот и полиаминов в зависимости от структуры соединений при разделении их в режиме ОФ-ВЭЖХ.

2. Показано влияние параметров источника ионизации: напряжения на капилляре, напряжения на конусе, напряжения на экстракторе – на интенсивность и соотношение сигналов наблюдаемых ионов в масс-спектрах ХАК-производных аминокислот и полиаминов.

3. В КЖ исследуемых штаммов, продуцирующих аминокислоты, впервые идентифицированы примеси гомоизолейцина и димера валина в виде ХАКпроизводных с помощью ВЭЖХ/МС.

4. Предложены условия анализа для определения с помощью метода КЭ продуктов ферментативных реакций, катализируемых путресцинтрансаминазой, N-ацетилглутаматсинтазой, глутамат-N-ацетилтрансферазой, аргининосукцинатсинтетазой, карбамоилфосфатсинтетазой, гомосеринкиназой.

Практическая значимость работы: Разработанные ВЭЖХ и ВЭЖХ/МС методы были использованы для идентификации и анализа аминосоединений, в том числе непротеиногенных аминокислот, и полиаминов в КЖ различных штаммов-продуцентов. Полученные сведения о накоплении сопутствующих аминированных метаболитов способствуют пониманию путей биосинтеза этих соединений в генетически модифицированных микроорганизмах и позволяют снизить уровень накопления этих примесей. На основе полученных данных о накоплении полиаминов могут быть сделаны выводы об активации путей деградации соответствующих аминокислот, в том числе основного продукта, что позволяет оптимизировать процесс ферментации или селекции соответствующих штаммов-продуцентов.

Особое значение методы разделения имеют при подтверждении новых способов получения биологически активных соединений. Так, при использовании предложенных методов ВЭЖХ/МС и ВЭЖХ была подтверждена возможность получения 4-гидроксиизолейцина с помощью ферментативного синтеза, а также -аминомасляной кислоты (ГАМК), норвалина и/или норлейцина с помощью бактериальных штаммов, способных к сверхсинтезу этих соединений. Способы получения данных аминокислот защищены патентами РФ (патент № 2241036 и патентные заявки № 2004127011, № 2005127811) и могут стать основой их микробиологического производства.

Метод КЭ был использован для экспресс-анализа продуктов ферментативных реакций в реакционных смесях, что позволило получить информацию об изменении активностей ферментов в процессе селекции штаммов-продуцентов. Результаты вошли в патент РФ № 2264459.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Качественные закономерности влияния рH, концентраций ацетонитрила и буферного раствора на удерживание ХАК-производных аминокислот и полиаминов при разделении их в режиме ОФ-ВЭЖХ.

2. Результаты исследования закономерностей удерживания ХАК-производных аминокислот и полиаминов при разделении их на сорбентах разного типа с привитыми алкильными группами.

3. Результаты исследования влияния параметров источника ионизации МС на фрагментацию ХАК-производных аминокислот и полиаминов.

4. Результаты исследования влияния состава, концентрации и рН буферного электролита на время миграции анионов дикарбоновых и N-замещенных аминокислот при разделении с помощью метода КЭ.

5. Результаты идентификации и количественного определения примесей аминокислот и полиаминов в КЖ штаммов-продуцентов. Результаты анализа продуктов семи ферментативных реакций при исследовании активностей ферментов, участвующих в биосинтезе аминокислот.

Апробация работы. Результаты исследований докладывались на XII Российском национальном конгрессе «Человек и лекарство» (Москва, 2005), X Международной конференции «Теоретические проблемы химии поверхности, адсорбции и хроматографии» (Москва, 2006), III международной конференциишколе «Масс-спектрометрия в химической физике, биофизике и экологии» (Звенигород, 2007), Всероссийском симпозиуме «Хроматография в химическом анализе и физико-химических исследованиях» (Москва – Клязьма, 2007), научно-прикладном семинаре «Аналитические методы и приборы для химического анализа» (Санкт-Петербург, 2007), II Всероссийской конференции с международным участием «Масс-спектрометрия и ее прикладные проблемы» (Москва, 2007), XVIII Менделеевском съезде по общей и прикладной химии (Москва, 2007).

Публикации. По результатам исследования опубликовано 7 статей, 7 тезисов, 2 патента, поданы 2 заявки на патент (имеются положительные решения).

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, обсуждения результатов, выводов, списка цитируемой литературы и приложений. Материал изложен на страницах машинописного текста, включает 95 рисунков и 28 таблиц.

Библиография состоит из 198 источников.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Во введении дано обоснование темы, отражены актуальность исследований и практическая значимость.

1 глава. Обзор литературы Проведен анализ работ, посвященных исследованиям аминокислот и биогенных аминов методами ВЭЖХ, ВЭЖХ/МС, КЭ. Рассмотрены методы получения производных разного типа. Проведен сравнительный анализ различных хроматографических методов разделения аминокислот. Анализ литературы позволил обосновать целесообразность использования комплекса высокоэффективных методов разделения для идентификации и анализа аминосоединений в биологических образцах. На основе анализа литературных данных выбрано основное направление исследований: использование ХАКпроизводных для идентификации и анализа аминосоединений в биотехнологических образцах методом ВЭЖХ и ВЭЖХ/МС, использование КЭ для анализа продуктов ферментативных реакций в реакционных смесях.

2 глава. Экспериментальная часть В работе были использованы жидкостные хроматографы: Agilent 1100 Series (Agilent Technologies, США) с градиентным насосом Quaternary Pump 1100, автоматическим инжектором Autosampler 1100, воздушным термостатом Column compartment 1100, флуориметрическим детектором Spectrofluorimeter 1100 с программным обеспечением для обработки хроматографических данных ChemStation A.08.04 (Agilent Technologies, США); Alliance 2695 (Waters, США), оснащенный масс-спектрометрическим детектором Quattro-Micro (WatersMicromass, США) c ионизацией при атмосферном давлении в режиме электроспрея (API-ES) и программным обеспечением для обработки хроматографических данных Masslynx 4.0 (Waters-Micromass, США).

Хроматографическое разделение проводили на стальных колонках: Nova-Pak C18 150 x 3.9 мм, 4 мкм (Waters, США), Synergi Hydro-RP 250 х 4.6 мм, 4 мкм (Phenomenex, США), Synergi МАХ-RP 250 х 4.6 мм, 150 х 4.6 мм и 150 х 2 мм, мкм (Phenomenex, США), LUNA C18(2) 150 х 4.6 мм и 150 х 2 мм, 3 мкм (Phenomenex, США), AQUA C18 150 х 4.6 мм, 3 мкм (Phenomenex, США), Zorbax Eclipse XDB-C18 50 х 2.1 мм, 5 мкм (Agilent Technology, США). Условия хроматографирования приведены в таблице 1.

Таблица 1. Условия хроматографического разделения.

Градиент Условия № 100 % буферный раствор – 0 % ацетонитрил, через 0.5 мин 95 % буферный раствор – 5 % ацетонитрил, затем линейное увеличение ацетонитрила до 30 % за 59 мин, затем промывка колонки раствором 60 % ацетонитрил – 40 % вода и уравновешивание на начальных условиях.

Скорость подвижной фазы 0.4 мл/мин.

100 % буферный раствор – 0 % ацетонитрил, через 0.2 мин 95 % буферный раствор – 5 % ацетонитрил, затем линейное увеличение ацетонитрила до 30 % за 29 мин, затем промывка колонки раствором 60 % ацетонитрил – 40 % вода и уравновешивание на начальных условиях.

Скорость подвижной фазы 0.8 мл/мин 82 % буферный раствор – 18 % ацетонитрил в течение 30 мин, затем промывка колонки раствором 60 % ацетонитрил – 40 % вода и уравновешивание на начальных условиях.

Скорость подвижной фазы 0.2 мл/мин.

92 % буферный раствор – 8 % ацетонитрил, линейное увеличение ацетонитрила до 23 % за 35 мин, затем промывка колонки раствором 60 % ацетонитрил – 40 % вода и уравновешивание на начальных условиях.

Скорость подвижной фазы 0.3 мл/мин.

77 % буферный раствор – 23 % ацетонитрил, затем линейное увеличение ацетонитрила до 40 % за 30 мин, затем промывка колонки раствором 40 % ацетонитрил – 10 % вода – 50 % буферный раствор.

Скорость подвижной фазы 0.4 мл/мин.

Pages:     || 2 | 3 |






© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»