WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

загрузка...
   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 |   ...   | 2 | 3 || 5 | 6 |   ...   | 12 |

Модифицированнаятехнология включала следующие основныеоперации: гидролиз рыбного сырья пригидромодуле 1:2 с помощью поджелудочнойжелезы или панкреатина в течение 5,0-6,0 ч досодержания аминного азота 0,5-0,6%; кипячениесмеси в течение 15-20 мин и фильтрацию;подщелачивание фильтрата водным растворомаммиака до рН – 8,2-8,4; кипячение гидролизата втечение 15-20 мин и фильтрацию;концентрирование гидролизата до 12-15% сухихвеществ; высушивание концентрированногогидролизата на распылительной сушилке притемпературе на входе 180-2000С, на выходе100-1100С.

Полученная помодифицированной технологии сухаяпитательная основа содержала 5,4±0,2%аминного азота, 9,5±0,46% общего азота, 52,0±4,0%пептонов, 1,0±0,1% минеральных веществ, рН 2%раствора 7,1±0,1. Аминнокислотный состав былпредставлен 17 аминокислотами (в %):аспарагиновая кислота – 0,86±0,07, треонин– 0,8±0,08, серин– 0,7±0,06,глутаминовая кислота – 1,05±0,15, глицин– 0,7±0,04, аланин– 0,45±0,02,цистин-следы, валин – 1,4±0,08, метионин – 0,8±0,06, изолейцин– 1,2±0,08, лейцин– 2,8±0,4,тирозин –1,6±0,08, фенилаланин – 1,75±0,2, лизин – 2,5±0,2, гистидин – 1,0±0,15, аргинин– 2,2±0,3,триптофан –0,35±0,05.

В целом, по химическомусоставу полученная основа равноценнаклассическим ферментативным основам (Л.Я.Телишевская, 2000).

Однако низкоесодержание минеральных веществ (1,0±0,1%)позволило нам рассматривать ее какэлектролит-дефицитную, что былоподтверждено в биологических опытах припосеве тест-штаммов роящихся формпротеев (табл. 4).

Из данных табл. 4 видно,что на разработанной основе тест-штаммыP. vulgaris HX19 и 4636, P. mirabilis 71/2,3177 и 46 росли в виде отдельных колоний вО-форме (отсутствие роения), в то время какна питательном агаре они образовалисплошной вуалеобразный налет (роение,Н-форма). Подавляя роение протеев,полученная основа одновременноспособствовала росту других патогенных иусловно патогенных бактерий E.coli 3912/41 (055:К59), S.aureus FDA 209-Р, S.enterica TyphiН901, S.sonnei S form, E.faecalis 775, S.epidermidis 14990, P.aeruginosa27/99, S.flexneri 1а 8516, не уступая поколичеству и размеру выросших колонийпитательному агару.

Уникальная способностьданной основы подавлять роение протеев иподдерживать при этом рост широкого кругамикроорганизмов позволили в последующихисследованиях использовать ее приразработке новых электролит-дефицитныхпитательных сред.

При переработкеморепродуктов образуется большоеколичество отходов, представляющихсерьезную экологическую и экономическуюпроблему. Одним из направлений утилизацииотходов рыбной промышленности являетсяиспользование их в качестве сырья дляпроизводства питательных сред.

Таблица 4

Рост тест-штаммов изразведени1 10-6на электролит-дефицитной основе ипитательном агаре


Тест-штаммы

Рост тест-штаммов наэлектролит-дефицитной основе (М±m)

Рост тест-штаммов на питательномагаре

Контроль (М±m)

КОЕ

Форма иразмер (d) колоний

КОЕ

Форма иразмер (d) колоний

P. vulgarisHX19

42,0±3,0

О

1,0±0,2

сплошной вуалеобразный налет

Н(роение)

P. vulgaris4636

39,0±4,0

1,1±0,15

сплошной вуалеобразный налет

Н

P. mirabilis71/2

46,0±5,0

О

1,2±0,3

сплошной вуалеобразный налет

Н

P. mirabilis46

38,0±3,0

О

2,1±0,2

сплошной вуалеобразный налет

H

P. mirabilis3177

44,0±5,0

О

1,8±0,15

сплошной вуалеобразный налет

Н

E. coli3912/41 (O55:K59)

41,0±3,0

S

2,2±0,25

40,0±3,0

S

2,3±0,2

S. aureus FDA209Р

36,0±3,0

S

2,1±0,2

35,0±3,0

S

2,2±0,2

S. flexneri1a8516

32,0±4,0

S

1,4±0,2

33,0±3,0

S

1,3±0,15

S.entericaTtyphi H901

39,0±5,0

S

1,6±0,25

40,0±5,0

S

1,7±0,2

S. sonnei Sform

45,0±5,0

S

1,9±0,2

42,0±5,0

S

2,0±0,2

E. faecalis775

32,0±4,0

S

2,2±0,15

30,0±3,0

S

2,3±0,18

S. epidermidisATCC 14990

38,0±5,0

S

2,0±0,2

40,0±5,0

S

2,0±0,2

P. aeruginosa27/99

32,0±4,0

S

1,8±0,2

30,0±4,0

S

1,9±0,2

K.pneumoniae4140

35,0±3,0

2,0±0,2

37,0±4,0

2,1±0,2

Нами проведеныисследования по изучению возможностииспользования в производстве питательныхсред отходов, образующихся припроизводстве мяса криля. При исследованиипроцесса ферментативного гидролизаотходов мяса криля с помощью поджелудочнойжелезы и панкреатина установленыоптимальные соотношения сырья : фермент: вода – 1,0:0,1:3,0,обеспечивающие через 4,0-5,0 ч гидролизасодержание общего азота 0,9-1,0 %, аминногоазота – 0,26-0,32 %,что соответствовало степени расщеплениябелка 29,0-32,0 %.

Однако при испытанииполученного гидролизата в составепитательного бульона и питательного агара,отмечено отсутствие роста контрольныхтест-штаммов S.flexneri 1а 8516,S.enterica Typhi Н901, S.pyogenes Dick 1.

Высказанопредположение, что ингибирующий эффектгидролизата связан с присутствием в немионов кальция, которые образуются врезультате взаимодействия солянойкислоты, используемой при подкислениигидролизата, с углекислым кальцием изпанциря криля. Анализ гидролизата наналичие ионов кальция подтвердил данноепредположение. Содержание ионов кальция вгидролизате составляло довольно высокуювеличину –1,2±0,2 % всравнении с рыбным аналогом – 0,1±0,015 %.

Для очисткигидролизата использовали способностьионов кальция образовывать с фосфат – ионаминерастворимые соединения в виде фосфатовкальция. При этом оттитрована дозафосфорнокислого натрия (0,45 кг на 100 лгидролизата), а также значения рНгидролизата (7,8-8,2), температура (1000С) и времятермической обработки (10 мин),обеспечивающие полное осаждение ионовкальция. Дальнейшая обработка гидролизатавключала известные технологические приемыполучения сухих питательных основ.Полученный сухой гидролизат по содержаниюобщего азота –10,2±0,5%,аминного азота – 4,0±0,4%,пептонов –52,0±2,0%,углеводов –0,9±0,2% и поаминокислотному составу (16 аминокислот)отвечал основным требованиям,предъявляемым к питательным основам, чтоподтверждено результатами биологическогоконтроля питательного агара на основегидролизатов из отходов переработки мясакриля (табл. 5).

Из данных табл. 5 видно,что питательный агар на основепанкреатического гидролизата отходовпереработки мяса криля полностьюсоответствовал требованиям ФСП напрепарат. Разработка защищена авторскимсвидетельством №1587678 и внедрена впроизводство.

Задачей следующегоэтапа исследований явилась разработкапромышленной технологии получениягидролизата сои.

В сое содержится пять иболее ингибиторов протеаз (В.Б.Толстогузов,1987).

Для инактивацииингибиторов протеаз применяли термическуюденатурацию. Установлено, что обработкасуспензии соевой муки при 70-800С в течение 20-30 минутобеспечивала полную инактивациюингибиторов протеаз. Так, при гидролизе спомощью поджелудочной железы суспензиисоевой муки, предварительноподвергнутой термической обработке,содержание аминного азота в гидролизатесоставляло 0,23-0,25 %, пептонов – 2,5-3,0 %, тогдакак без термической обработки былосоответственно

0,13-0,15 %, 0,5-0,6%.

Таблица 5

Биологический контролькачества питательного агара на основепанкреатического гидролизата из отходовпереработки мяса криля

Тест-штаммы

Биологические показатели роста насредах

Питательный агар на основегидролизата из отходов мяса криля

Сухойпитательный агар (Контроль)

ФСП-42-0504-5807-04

S. flexneri1а 8516

Росттест-штамма при посеве 0,1мл микробнойвзвеси из разведения 10-6 в виде бесцветныхпрозрачных колоний d-1,0-1,5 мм в Sформе.

Росттест-штамма при посеве 0,1мл микробнойвзвеси из разведения 10-6 в виде бесцветныхпрозрачных колоний d-1,0-1,5 мм в Sформе.

S. sonneiS-form

Росттест-штамма при посеве 0,1мл микробнойвзвеси из разведения 10-6 в виде бесцветныхпрозрачных колоний d-1,0-1,5 мм в Sформе.

Росттест-штамма при посеве 0,1мл микробнойвзвеси из разведения 10-6 в виде бесцветныхпрозрачных колоний d-1,0-1,5 мм в Sформе.

S. entericaTyphi Н901

Росттест-штамма при посеве 0,1мл микробнойвзвеси из разведения 10-6 в виде бесцветныхпрозрачных колоний d-1,0-1,5 мм в Sформе.

Росттест-штамма при посеве 0,1мл микробнойвзвеси из разведения 10-6 в виде бесцветныхпрозрачных колоний d-1,0-1,5 мм в Sформе.

P. aeruginosa27/99

Сплошной рост с образованиемсине-зеленого пигмента при посеве 0,1 млмикробной взвеси по стандарту мутности 10ед.

Сплошной рост с образованиемсине-зеленого пигмента при посеве 0,1 млмикробной взвеси по стандарту мутности 10ед.

S. marcescens1

Сплошной рост с образованиемкрасного пигмента при посеве 0,1 млмикробной взвеси по стандарту мутности 10ед.

Сплошной рост с образованиемкрасного пигмента при посеве 0,1 млмикробной взвеси по стандарту мутности 10ед.

Pages:     | 1 |   ...   | 2 | 3 || 5 | 6 |   ...   | 12 |






© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»