WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

загрузка...
   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 | 2 || 4 | 5 |   ...   | 12 |

Клинические признакиболезни –поражение кожи в области рудиментарныхкопытцев задних конечностей. Пораженныеучастки имели форму полосок размером 2,5–3,01,0–2,0 см. В начальнойстадии развития заболевания отмечалиотечность,гиперемию кожи, болезненность припальпации, хромоту, повышение местной температуры. Вовторой стадии заболевания образовываласьрана в виде язвы. Поверхность раны покрытафибринозно-гнойным экссудатом, на ней былиучастки некроза. Раневая поверхность быласухой; корочки фибринозного экссудатаотторгалисьна 3–4-йдень, образуя язву.

Одним из основныхфакторов, способствующих появлениюнекробактериоза, являлась сырость напастбище и в загонах. Заболеваемость коровнекробактериозом прекратилась в концеавгуста, когда установилась сухая погода.

Второй случайнекрабактериоза отмечен в пастбищныйпериод в ЗАО “Целинный” Коченевскогорайона Новосибирской области.Заболеванию был подвержен молодняк ввозрасте 12 мес.: 60% телочек из 450 голов и 50%бычков из 320 голов. У животных поражалисьучастки кожи над венчиком заднихконечностей. Клинические признакизаболевания: хромота, образованиевоспалительного отека, что сопровождалосьприпуханием кожи и повышением местнойтемпературы. Затем развивался абсцесс,с последующим образованием язвы; отраны исходил запах сероводорода. Появлениеболезни было связано с травмированиемстеблями сухой травы кожи конечностей врезультате засушливого жаркого лета.

Третий случайклинического проявления некробактериозасвязан с поражением кожи сосков вымени.Эта форма некробактериоза была отмечена увысокоудойных коров в одном из хозяйствНовосибирской области. При осмотре кожисосков обнаруживалисьгнойно-некротические язвы.Бактериологическим исследованиемвыделили чистую культуру, патогенную длябелых мышей. Поражения кожи сосков выменибыли вызваны травмированием ее резинойстаканов доильных аппаратов в процесседоения.

Поражение мышечнойткани тазовых конечностей принекробактериозе наблюдали внескольких хозяйствах Сибири(Новосибирская и Томская области,Красноярский край). В этих хозяйствахнекробактериозом заболеваливысокопродуктивные коровы и первотелки.Коровы не хромали; дистальный отделконечностейне поражался. При убое животных отмечалигнойно-некротические поражения мышцтазового пояса, бедренной кости иэпифизарной части костного мозга. Мышечная ткань былавишневого цвета, дряблой консистенции, отнее исходил неприятный запах. Костная ткань эпифизана разрезе наполнена кровью, костныймозг серо-коричневого цвета, мягкойконсистенции.

Согласно данным другихисследований, с интенсификациейоткорма крупного рогатого скота участилисьслучаи появления гнойного воспалениятканей хвоста, вызванные возбудителемнекробактериоза F. necrophorum. Они связывают это содносторонним кормлением бычков инеудовлетворительными условиямисодержания (Л.А. Сергеева и П.Н. Баканов, 1982;А.А. Самоловов, 1989; P. Klucznick,1976; W.Goldhorn, 1984).

Имеются сообщения обэтиологической роли F.necrophorum в воспаленииполовых органов (I.M. Sheldon et al., 2004; E. J. Williamset al., 2005) и вымени животных (T. Shinjo, 1983).Эндометриты встречаются у20–40% коровпосле отела. По данным зарубежныхисследователей, этиологияпослеродовых болезней у коров может бытьсвязана со следующими возбудителями:Arcanobacterium pyogenes, Fusobacterium necrophorum,Bacteroides melaninogenicus. Синергизммежду Arcanobacterium pyogenes и Fusobacteriumnecrophorum усиливает ихвирулентность, в результате чегоэндометрит у коров протекает очень тяжело.Fusobacterium necrophorumпродуцирует лейкотоксин, которыйспособствует распространению Arcanobacterium pyogenes в тканиорганов животных. В то же время, Arcanobacterium pyogenesвырабатывает фактор роста для Fusobacterium necrophorum (R.A. Laven,A.R. Peters, 1996; G.S. Lewis, 1997; E.Malinowski, 2004).

М.Н. Коннов, В.Г. Гумеров,В.Г. Гафаров и др., (2003), М.Н. Коннов (2004) врезультате вирусологических ибактериологических исследований доказали,что этиологическими агентами, вызывающимиинфекционный баланопостит откормочныхбычков, являются герпесвирус типа 1 ибактерии Fusobacteriumnecrophorum. Впервые установлено,что баланопостит у откормочных бычковпротекает, в основном, в виде смешаннойинфекции.

В КП “Беклемишевское”Читинской области поражение бычковнекробактериозом в форме баланопоститасоставляло до 35% (А.А. Ежинов,Б.Н. Бубеев, А.В. Волченко, 2002; Б.Н.Бубеев, 2004).

При лабораторномисследовании проб секретов из сосковвымени коров в летний период содержания в35% случаев выделяли Corynebacterium pyogenes, Peptococcus indolicus –31% и Fusobacterium necrophorum– 22% (J.M. Van Den Bogaard, M.J. HazenU Vecht, 1987).

Некробактериозныепоражения хвоста были отмечены у бычков наоткорме в одном из хозяйств Новосибирскойобласти. Заболевали бычки, находившиеся навтором периоде откорма. Болезнью былоохвачено 23,5% животных.

Следовательно,некробактериоз животных следуетрассматривать не как местное поражениетканей дистального отдела конечностей, акак системное заболевание, которомусвойственен эпизоотический процесс.Ведущими же факторами, влияющими настепень его проявления, выступаютусловия кормления и содержания. Исходя изэтих положений, необходимосовершенствовать диагностические,лечебные и профилактическиемероприятия.

2.2.2Совершенствование методов диагностикинекробактериоза сельскохозяйственныхживотных

2.2.2.1Усовершенствование метода отборабиоматериала из пораженной конечности длялабораторного исследования

По данным экспертизрайонных и областных ветеринарныхлабораторий в большинстве случаевдиагноз на некробактериоз неподтверждается. Одной из причин такихзаключений лабораторий мы связываем струдоемкостью взятия длябактериологического исследованиянекротизированных тканей изпораженного пальца внутри роговой капсулы.Второй причиной, на наш взгляд, является то,что некротизированные участки тканей дляисследования отбираются с поверхностипораженного органа. На поверхностипораженных тканей органа присутствует, какизвестно, большое количество аэробныхмикроорганизмов. А возбудительнекробактериоза относится к анаэробныммикроорганизмам и в пораженном органе находитсяглубоко, на границе здоровой инекротизированной тканей.

Для исследования влабораторию направляют обычно пораженнуюфалангу по путовый сустав. Взятие изглубины пораженной фалангинекротизированных фрагментов тканейскальпелем, ножницами, пинцетом или ложкойФолькмана, как правило, всегда оченьзатруднительно.

Мы предлагаемпораженную фалангу механически расчленить нанесколько фрагментов (34), в зависимости отстепени поражения. Затем вбоксе из пораженных участков фалангиложкой Фолькмана, скальпелем, ножницамиили пинцетом, предварительно обработанных70% спиртом илиподвергнутых фломбированию над пламенемгорелки, отбирают пробынекротизированных тканей дляисследований. Дальнейшеебактериологическое исследование проводятсогласно “Методическим указаниям полабораторной диагностикенекробактериоза” (1987).

При исследовании 15пораженных конечностей диагноз нанекробактериоз подтвердился приусовершенствованной методике отборабиологического материала длялабораторного исследования в 93,3 % случаев,а при обычной методе в 60%.

Таким образом, новыйметод отбора биоматериала изпораженной конечности способствовалувеличению эффективностидиагностики некробактериоза на 33,3% иможет быть рекомендован для ветеринарныхдиагностических лабораторий.

2.2.2.2Сравнительная эффективность индикацииFusobacteriumnecrophorumбактериологическим методом и с помощьюгнездовой ПЦР

Исследования поразработке гнездовой ПЦР для диагностикинекробактериоза проводили совместно слабораторией генной инженерии(заведующий В.И. Семенихин). Намипроводилась индикация возбудителянекробактериоза и сопутствующеймикрофлоры, накопление бактериальноймассы, и взятие биологическихобразцов.

Первоначальнопроверена специфичность разрабатываемойдиагностичес­кой тест-системы. Положительныеанализы продуктов ПЦР получали толькотогда, когда в качестве матрицыиспользовали ДНК патогенного возбудителяF.necrophorum subsp. necrophorum. Анализы были отрицательными,когда использовали ДНК других бактерий: стафило­кокков,стрептококков, кишечной палочки, протея,микоплазмы.

Затем провелитестирование возбудителя некробактериозав пробах, полученных от коров из разныххозяйств Кемеровской, Новосибирскойобластей и Алтайского края. Пробы быливзяты от животных по клиническимпоказаниям.

Во всех случаяхбактериологическое исследованиебиоматериала из пораженных конечностей(фаланга, костный мозг фаланги, кровьфаланги) при положительной биопробена белых мышах совпадало с положительнымрезультатом ПЦР, преимущественно свнутренним праймером (табл.1).

При исследованииабсцессов печени совпадениебактериологического исследования и ПЦРсоставило 50%.

Таблица 1–Результаты сравнительных исследованийбиологических
образцов нанекробактериоз


№ проб

Исследуемый

материал

Бактериологическоеисследование

ПЦР с праймерами

питательные среды и биопроба

получена чистая культура

наружные

внутренние

1

Фаланга 1

+

+

+

2

Фаланга 2

+

+

3

Фаланга3

+

+

4

Фаланга 4

+

+

+

5

Фаланга 5

+

+

+

6

Фаланга 6

+

+

7

Фаланга 7

+

+

8

Фаланга 8

+

+

9

Фаланга 9

+

+

+

10

Фаланга 10

+

+

+

11

Костный мозгфаланги

+

+

+

+

12

Кровь фаланги

+

+

13

Абсцесс печени 1

+

14

Абсцесс печени 2

+

15

Абсцесс печени 3

+

+

16

Абсцесс печени 4

+

+

17

Абсцесс печени 5

+

+

Pages:     | 1 | 2 || 4 | 5 |   ...   | 12 |






© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»