WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!


Московский государственный университет имени М.В.Ломоносова Химический факультет

На правах рукописи

БЕНДРЫШЕВ АЛЕКСАНДР АЛЕКСАНДРОВИЧ

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ВИТАМИНОВ И КОЭНЗИМОВ Q9 И Q10 В ОБЪЕКТАХ СО СЛОЖНОЙ МАТРИЦЕЙ МЕТОДОМ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Специальность — 02.00.02 — аналитическая химия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата химических наук

Москва – 2012

Работа выполнена на кафедре аналитической химии химического факультета Московского государственного университета имени М.В.Ломоносова

Научный консультант: чл.-корр. РАН, профессор Шпигун Олег Алексеевич

Официальные оппоненты: доктор химических наук, профессор Центр Биоинженерии РАН Варламов Валерий Петрович кандидат химических наук, начальник лаборатории фармацевтического анализа ООО «Технология лекарств» Чернобровкин Михаил Геннадьевич

Ведущая организация: ФГБОУ ВПО «Кубанский государственный университет»

Защита состоится 31 октября 2012 г. в 15 ч. 00 мин. в аудитории 446 химического факультета на заседании Диссертационного совета Д 501.001.88. по химическим наукам в Московском государственном университете имени М.В.Ломоносова по адресу: 119991, Москва, Ленинские горы, МГУ, Химический факультет.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Химического факультета Московского государственного университета имени М.В.Ломоносова.

Автореферат разослан 28 сентября 2012 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат химических наук Торочешникова И.И.

Общая характеристика работы



Актуальность темы В современном химическом анализе существует задача определения витаминов и коэнзимов Q в объектах различной природы, прежде всего в различных фармпрепаратах, продуктах питания, кормах, плазме крови и биологических тканях. Особую сложность представляет собой определение этих соединений в объектах, имеющих сложный состав, например, в продуктах питания. Существует большое число методик, ориентированных на определение витаминов и коэнзимов в различных матрицах. Однако подобные методики обладают рядом недостатков. Как правило, они позволяют одновременно определять только небольшое число соединений. При этом круг объектов, на который они ориентированы, в большинстве случаев ограничен одним или несколькими типами (например, плазма крови). При переходе от одного типа объектов к другому такие методики зачастую перестают работать и дают ошибочные результаты, например, методики, позволяющие определять водорастворимые витамины в фармацевтических препаратах, перестают работать при переходе к анализу продуктов питания.

Пробоподготовка, которая используется во многих методиках, довольно сложна и не всегда обеспечивает необходимые степени извлечения и воспроизводимость, а используемые варианты детектирования не позволяют добиться требуемой селективности.

Особенно остро необходимость в селективных и экспрессных методиках чувствуется при анализе продуктов питания (в том числе витаминизированных). Приведенные на сегодняшний момент в литературе способы определения витаминов и коэнзимов противоречивы и неоднозначны.

Задачу определения соединений в объектах со сложной матрицей можно решать различными путями. Для улучшения чувствительности и селективности можно либо использовать селективную пробоподготовку, либо обеспечить селективное разделение определяемых и мешающих соединений, либо вариант детектирования, позволяющий проводить селективное определение соединений без полного разделения. Для каждой из групп определяемых соединений существуют различные возможности использования того или иного пути или их комбинаций.

Таким образом, задача разработки новых подходов для определения витаминов и коэнзимов Q, обеспечивающих определение широкого круга соединений в различных объектах со сложной матрицей с высокой селективностью и чувствительностью является актуальной. При этом используемые процедуры пробоподготовки должны быть максимально экспрессными и воспроизводимыми. Наилучшим методом для одновременного селективного определения соединений выбранных групп является жидкостная хроматография.

Цель работы Цель данной работы состояла в разработке способов определения водо- и жирорастворимых витаминов, а также коэнзимов Q в объектах со сложной матрицей (пищевых продуктах, кормах, БАДах, премиксах, биологических объектах) методом ВЭЖХ. Достижение поставленной цели предусматривало решение следующих задач:

1. Оптимизация пробоподготовки и выбор условий пробоподготовки, обеспечивающих количественное извлечение и определение наибольшего числа водорастворимых витаминов.

2. Исследование возможности использования упрощенных и ускоренных процедур пробоподготовки для определения жирорастворимых витаминов. Оценка возможности использования различных растворителей в качестве экстрагентов. Разработка экспрессных способов пробоподготовки.

3. Исследование стабильности окисленных и восстановленных форм коэнзимов Q9 и Q10 в биологических матрицах. Разработка способа пробоподготовки, обеспечивающего сохранность исходного соотношения окисленных и восстановленных форм коэнзимов.

4. Исследование влияния различных параметров на селективность хроматографического разделения определяемых соединений. Выбор условий хроматографического разделения определяемых соединений для различных вариантов детектирования.

5. Оценка возможностей различных вариантов детектирования. Выбор варианта детектирования, обеспечивающего селективное определение соответствующей группы соединений в объектах с матрицами различной сложности. Выбор параметров детектирования.

6. Разработка способов определения водорастворимых витаминов, жирорастворимых витаминов и коэнзимов Q9 и Q10, в объектах со сложной матрицей, включающих в себя пробоподготовку, хроматографическое разделение и детектирование определяемых соединений разными вариантами детекторов.

Научная новизна работы 1. Установлено влияние состава неподвижных и подвижных фаз и температуры на хроматографическое разделение водорастворимых витаминов, влияние полярных взаимодействий с сорбентом на порядок элюирования, селективность и асимметрию.

Влияние температуры на хроматографическое поведение водорастворимых витаминов незначительно.

2. Предложено использовать для разделения витаминов гибридную неподвижную фазу Gemini C18, которая обеспечивает преимущество в эффективности и снижение асимметрии пиков разделяемых соединений по сравнению с колонками на основе гидрофобизованного силикагеля.

3. Предложены водно–этанольные смеси в качестве подвижной фазы для определения жирорастворимых витаминов. Использование этанола в качестве основного компонента подвижной фазы позволяет снизить стоимость анализа по сравнению с традиционными метанольными и ацетонитрильными фазами.

4. Показана неэффективность использования для экстракции жирорастворимых витаминов из образцов с полярной матрицей (каолин, мел) неполярных и слабополярных растворителей.

5. Показано, что добавка воды (5-10%) при экстракции жирорастворимых витаминов метанолом из твердых объектов ускоряет процесс экстракции и улучшает воспроизводимость без снижения степени извлечения за счет растворения агломератов, нерастворимых в метаноле.

6. Показана возможность использования градиентного элюирования для снижения мешающего влияния матрицы и роста чувствительности определения ретинола и ретинола ацетата.

7. Продемонстрирована возможность одновременного определения окисленных и восстановленных форм коэнзимов Q9 и Q10 методом ВЭЖХ-МС. Показано, что использование источника химической ионизации при атмосферном давлении позволяет получать одинаковые масс-спектры при использовании различного оборудования, что делает предложенный подход более универсальным.

Практическая значимость работы 1. Предложены способы определения водорастворимых витаминов с различными вариантами детектирования. Способ позволяет проводить одновременное определение водорастворимых витаминов за 14 мин. в случае использования масс-селективного детектирования или 12 водорастворимых витаминов за 35 мин. в случае использования спектрофотометрического детектирования. При этом используемые процедуры пробоподготовки обеспечивают количественное извлечение витаминов из различных матриц.

2. Продемонстрировано, что определение водорастворимых витаминов при помощи квадрупольного МС анализатора дает значимый выигрыш в стоимости, по сравнению с тандемным МС, при достаточной чувствительности определения, и существенный рост селективности, по сравнению со спектрофотометрическим детектированием.

3. Показана возможность использования в качестве экстрагента во время пробоподготовки твердых образцов 0,5% фосфорную кислоту при проведении ВЭЖХ-МС определения водорастворимых витаминов.

4. Расширен круг объектов, в которых возможно определение водорастворимых витаминов методом ВЭЖХ-МС (витаминные препараты и добавки, витаминизированные минеральные воды, соки, спиртосодержащие напитки, витаминизированные корма, премиксы, молочные продукты, сухие пищевые продукты).

5. Предложен новый осадитель (смесь фосфорной и трихлоруксусной кислот) для коагуляции молочных продуктов во время пробоподготовки для определения водорастворимых витаминов методом ВЭЖХ, позволяющий более эффективно осуществлять коагуляцию белков и обеспечивающий сохранность аскорбиновой кислоты.

6. Разработаны способы пробоподготовки молочных продуктов, позволяющие сократить требуемое время пробоподготовки для определения жирорастворимых витаминов в два и более раза.

7. Разработан способ экстракции жирорастворимых витаминов из объектов, матрица которых содержит большое количество полярных соединений.

8. Предложен способ хроматографического определения жирорастворимых витаминов с различными вариантами детектирования. Способ позволяет проводить определение 6 витаминов и витамерных форм за 20 мин.

9. Предложен способ пробоподготовки биологических тканей и плазмы крови, обеспечивающих неизменное соотношение окисленных и восстановленных форм коэнзимов в процессе пробоподготовки и хранения образцов.

10. Разработан способ одновременного хроматографического определения окисленной и восстановленной форм коэнзимов Q9 и Q10 с масс-спектрометрическим детектированием.

В работе защищаются следующие положения:

Условия пробоподготовки при определении водорастворимых витаминов в фармпрепаратах, БАДах, кормах, пищевых продуктах, напитках и молочных продуктах.

Зависимости параметров хроматографического разделения водорастворимых витаминов от природы неподвижной фазы, природы и рН подвижной фазы, температуры и профиля градиента.

Условия хроматографического разделения и детектирования 14 водорастворимых витаминов со спектрофотометрическим и масс-спектрометрическим детектированием.

Результаты определения водорастворимых витаминов в реальных объектах.

Условия пробоподготовки при определении жирорастворимых витаминов в фармпрепаратах, БАДах, премиксах и молочных продуктах.

Зависимость степеней извлечения жирорастворимых витаминов из объектов с полярной матрицей от природы экстрагирующего растворителя.

Условия хроматографического разделения и детектирования шести жирорастворимых витаминов и витамерных форм со спектрофотометрическим и массспектрометрическим детектированием. Результаты определения жирорастворимых витаминов в реальных объектах.

Условия пробоподготовки образцов плазмы крови и биологических тканей, позволяющие сохранять исходные соотношения окисленной и восстановленной форм коэнзимов Q9 и Q10.

Условия одновременного хроматографического разделения и детектирования окисленных и восстановленных форм коэнзимов Q9 и Q10 с масс-спектрометрическим детектированием. Результаты определения коэнзимов Q9 и Q10 в реальных объектах.

Апробация работы Основное содержание работы

изложено в 6 публикациях. Результаты исследований докладывались на International conference on Instrumental methods of analysis. Modern trends and application. (Ираклион, Греция, 2005); International congress on analytical science «ICAS-2006» (Москва, 2006). Предложенные схемы пробоподготовки и способы определения витаминов в продуктах питания. БАДах, премиксах, кормах, фармпрепаратах и напитках используются при проведении анализа в Аналитическом центре Химического факультета МГУ им. Ломоносова.

Структура и объем работы Диссертация изложена на 232 страницах машинописного текста и включает 58 рисунков, 80 таблиц и список цитируемой литературы из 297 наименований.

Основное содержание работы Теоретическая часть работы состоит из трех глав. Первая, вторая и третья главы посвящены методам определения водорастворимых витаминов, жирорастворимых витаминов и коэнзимов Q. В главах рассмотрены основные подходы к определению витаминов и коэнзимов в объектах с различными типами матриц. Особое внимание уделено хроматографическим методам определения. Рассмотрены различные варианты детектирования, используемые при хроматографическом определении. Специальные секции посвящена рассмотрению методик, сочетающих в себе хроматографическое разделение с масс-селективным детектированием. Использование масс-селективного детектирования в сочетании с хроматографическим разделением позволяет добиться дополнительной селективности при анализе проб сложного состава. Однако, многие методологические вопросы, затрагивающих сочетание двух методов, остаются открытыми и требуют более детального рассмотрения при создании гибридного метода. Рассмотрены как способы определения индивидуальных соединений, так и способы, позволяющие определять одновременно несколько веществ или несколько форм одного вещества.

Отдельные разделы посвящены проблемам пробоподготовки при извлечении исследуемых соединений из объектов со сложной матрицей.

В четвертой главе перечислены реагенты и аппаратура, используемые в работе, а также описана техника эксперимента. В ходе работы использовали следующие хроматографические системы: Система ВЭЖХ-МС (Shimadzu, Япония), состоящая из квадрупольного масс-спектрометрического детектора LCMS-2010A, оснащенного двумя источниками ионизации: источником химической ионизации при атмосферном давлении и источником электрораспылительной ионизации, насоса, системы четырехканального градиентного элюирования, двухволнового спектрофотометрического детектора, системного контроллера, дегазатора подвижной фазы и крана ввода пробы.

Система ВЭЖХ-МС (Agilent Technologies, США), состоящая из хроматографа Agilent 1100 с бинарным градиентным насосом, автоматической системой ввода пробы, термостатом колонок, диодно-матричным и квадрупольным масс-спектрометрическим детектором серии SL с источниками электрораспылительной ионизации и химической ионизации при атмосферном давлении.

Система ВЭЖХ (Agilent Technologies, США), состоящая из хроматографа Agilent 1200 с четырехканальным градиентным насосом, автоматической системой ввода пробы, термостатом колонок, диодно-матричным и флуориметрическим детектором.

Система ВЭЖХ Dionex 3000 (Dionex) состоящая из автосэмплера градиентного насоса, термостата колонки, крана ввода пробы и электрохимического детектора.

Регистрацию хроматограмм осуществляли с помощью персонального компьютера и программных пакетов LC-MS solution, ChemStation и Chromeleon.

В работе использовали неорганические и органические реагенты квалификации х.ч. и ч.д.а., в качестве растворителей использовали бидистиллированную деионизованную воду (установка очистки воды Milli-Q plus 185 (Millipore, Бедфорд, США); омическое сопротивление не ниже 18.2 МОм), органические растворители квалификации «для градиентной ВЭЖХ». В главе 4 также приведены условия проведения различных экспериментов (методики).

Пятая глава посвящена разработке способов совместного определения водорастворимых витаминов с различными вариантами детектирования. На первом этапе исследовали влияние различных факторов на разделение водорастворимых витаминов.

Исследование закономерностей удерживания витаминов на различных неподвижных фазах на первом этапе проводили в градиентном режиме элюирования с использованием фосфатных буферных растворов в качестве подвижной фазы А, ацетонитрила в качестве фазы В, и спектрофотометрическим детектированием, и лишь затем перешли к использованию подвижных фаз на основе летучих органических кислот и их солей и масс селективному детектированию.

В ходе работы исследовали влияние на удерживание витаминов природы неподвижной фазы, рН подвижной фазы, температуры. Исследование влияния неподвижной фазы выполняли с использованием колонок Synergi Hydro–RP, Luna C18(2), Gemini C18, Synergi Polar RP, Luna PFP(2), Zorbax Eclipse XDB C18, Zorbax SB-C18, Kromasil C18. Влияние природы неподвижной фазы исследовали во всем используемом диапазоне рН (1,5-7,5 (для ряда колонок 2,5-7,5). При исследовании использовали градиентное элюирование.

Выяснилось, что колонки Synergi Polar RP и Luna PFP(2) не обладают достаточной емкостью и селективностью для разделения витаминов, и от их дальнейшего использования пришлось отказаться. При использовании колонка Kromasil C18 при содержании ацетонитрила в подвижной фазе менее 5% наблюдалось явление коллапса Cгрупп, емкость и эффективность колонки значительно падала. Поскольку при градиентном разделении витаминов на начальном этапе процентное содержание ацетонитрила в подвижной фазе зачастую ниже 5%, дальнейшее использование колонки прекратили.





Остальные исследованные неподвижные фазы в целом показали приемлемые характеристики разделения модельной смеси витаминов. Общие закономерности влияния рН подвижной фазы на времена удерживания витаминов для всех исследуемых неподвижных фазах выглядят идентично. Однако, природа неподвижной фазы может заметно влиять на порядок элюирования витаминов и на селективность разделения некоторых пар витаминов. Зависимости времен удерживания водорастворимых витаминов от рН для колонки Luna C18(2) приведена на рис. 1.

Рис. 1 Зависимости времен удерживания витаминов от рН подвижной фазы. Колонка Luna C18(2) 250x4.6мм А) 1-никотинамид, 2-тиамин, 3-пиридоксин, 4-пиридоксаль, 5-никотиновая кислота, 6-пиридоксамин, 7-аскорбиновая кислота; В) 1-биотин, 2-рибофлавин, 3рибофлавин-5-фосфат, 4-цианокоболамин, 5-фолиевая кислота, 6-пантотеновая кислота Различное влияние рН на удерживание прежде всего обусловлено природой витаминов. Часть витаминов являются кислотами, которые протонируются при понижении рН, что приводи к увеличению времени удерживания. Другая группа витаминов имеет основные свойства. За счет этого при понижении рН вещества становятся заряженными и время их удерживания уменьшается. Третья группа соединений не имеет ярко выраженной кислотной или основной природы и времена удерживания у этой группы практически не зависят от рН. Исходя из проведенных исследований, с учетом того, что ряд витаминов нестабилен в нейтральной и щелочной средах, целесообразно проводить разделение витаминов при рН 1,5-2.

Природа неподвижной фазы оказывает влияние на селективность и порядок элюирования витаминов. По результатам экспериментов, исследованные неподвижные фазы можно разделить на две группы. К первой группе относятся фазы Luna C18(2) Zorbax Eclipse XDB C18 и Gemini C18, а ко второй Synergi Hydro RP и Zorbax SB-C18.

Различие между этими группами хорошо заметно при рН 1.5-1.8. Ряды селективности для неподвижных фаз Luna C18(2) и Synergi Hydro RP приведены на рис. 2.

При разделении витаминов на неподвижных фазах Luna C18(2), Zorbax Eclipse XDB C18 и Gemini C18 при рН 1.5-1.8 (для Zorbax Eclipse XDB C18 при рН 2) никотиновая кислота элюируется перед аскорбиновой кислотой. Пики этих соединений хорошо разрешены между собой и с пиком никотинамида. Пики тиамина, никотинамида и других полярных соединений симметричны, разрешения достаточно для одновременного количественного определения тиамина, никотинамида, никотиновой кислоты и аскорбиновой кислоты. Времена удерживания для пар рибофлавин-рибофлавин-5-фосфата и тиамин-тиамин фосфат практически совпадают, что не позволяет разделить эти соединения. Кроме того, время удерживания цианокоболамина также очень близко к времени удерживания рибофлавин-5-фосфата. Следует отметить, что времена удерживания соединений на колонке Gemini C18 несколько меньше, чем на остальных колонках.

Рис. 2 Ряды селективности для неподвижных фаз Luna C18(2) и Synergi Hydro RP. рН подвижной фазы 1.7. Условные обозначения: 1-пиридоксамин, 2-тиамин фосфат, 3-тиамин, 4-никотинамид, 5-аскорбиновая кислота, 6-никотиновая кислота, 7-пиридоксаль, 8пиридоксин, 9-пантотеновая кислота, 10-фолиевая кислота, 11-цианокоболамин, 12рибофлавин-5-фосфат, 13-рибофлавин, 14-биотин При разделении с использованием колонок Synergi Hydro и Zorbax SB C18 при рН 1.5-1.8 аскорбиновая кислота элюируется перед никотиновой кислотой, при этом пики соединений не разделены до базовой линии. Пики никотинамида и тиамина несколько несимметричны, причем ни при одном из значений рН не удается добится одновременного полного разрешения пиков тиамина, никотинамида, аскорбиновой кислоты и никотиновой кислоты.

Различие в селективности и порядке элюирования витаминов на разных фазах связаны, скорее всего, с наличием у второй группы неподвижных фаз гидрофильного эндкеппинга, или каких-либо других полярных групп или вставок, обеспечивающих дополнительные взаимодействия с полярными соединениями, что и приводит к несколько лучшей селективности в парах рибофлавин-рибофлавин-5-фосфат и тиамин-тиамин фосфат, а так же к увеличению времени удерживания никотиновой кислоты и некоторой несимметричности пиков тиамина и никотинамида. Подтверждением этой гипотезы может служить тот факт, что порядок элюирования соединений на колонке Luna PFP(2), имеющей дополнительные полярные группы, аналогичен порядку элюирования на колонках Synergi Hydro и Zorbax SB C18.

К сожалению, полного разделения всех исследуемых витаминов и витамерных форм не удается достигнуть ни при одном из значений рН ни на одной из неподвижных фаз. Однако, в реальных медицинских препаратах, премиксах, БАДах и витаминизированных продуктах, как правило, витамины присутствуют только в одной из форм, поэтому в большинстве случаев можно подобрать подходящие условия для разделения присутствующих витаминов. Наилучшего разрешения удается добиться при значении рН 1.5–1.8.

Следует отметить, что гибридные фазы типа Gemeni C18 впервые применены для разделения водорастворимых витаминов. Как уже упоминалось выше, порядок элюирования водорастворимых витаминов при использовании Gemini С18 аналогичен порядку элюирования на фазах Luna C18(2) и Zorbax XDB C18, при этом емкость исследованной колонки несколько ниже, чем у традиционных фаз с тем же размером частиц, а эффективность немного выше. По видимому, это связано с тем, что глубина полимерного слоя и, как следствие, глубина пор фазы Gemini C18 меньше чем у фаз на традиционном силикагеле, что приводит с одной стороны к некоторому снижению эффективной площади сорбента и снижению емкости, а с другой стороны уменьшает пути диффузии в сорбенте, что снижает размывание пиков и увеличивает эффективность, При этом Gemini C18 позволяет варьировать рН в более широком диапазоне, что дает принципиальную возможность более широкого выбора условий разделения.

Одним из основополагающих условий для достижения наиболее эффективного разделения веществ является выбор оптимального градиентного режима. Используя различные градиентные профили, можно добиться хорошего разрешения хроматографических пиков веществ, имеющих близкие времена удерживания, а также существенно снизить общее время проведения анализа.

При варьировании условий градиентного элюирования изменяли начальную концентрацию ацетонитрила, продолжительность начального изократического участка, скорость увеличения концентрации ацетонитрила, конечную концентрацию ацетонитрила, продолжительность элюирования. В конце каждого хроматографического определения на короткое время увеличивали концентрацию ацетонитрила до 50% для того чтобы элюировать сильноудерживаемые примеси с колонки. После каждого градиентного элюирования хроматографическую систему уравновешивали при исходных условиях в течение 6 минут. При подборе оптимальных условий градиентного элюирования в качестве тестовой смеси использовали стандартную смесь витаминов.

Установлено, что наилучшего разделения слабоудерживаемых соединений удается достигнуть при нулевом содержании ацетонитрила в подвижной фазе на начальном этапе градиента. Оптимизированный профиль градиента приведен в табл. 1. Скорость потока подвижной фазы — 0,8 мл/мин.

Таблица 1. Программа градиентного элюирования Время, мин Концентрация MeCN, % 0 6 15 28 29 30 31 35 При исследовании влияния температуры провели серию экспериментов при температурах термостата колонки от 20 до 60оС включительно с шагом в 10оС. Верхний предел выбирался из соображений стабильности неподвижной фазы. Все эксперименты проводили в градиентном режиме №1.

Как и предполагалось, c увеличением температуры наблюдается уменьшение времен удерживания соединений. Однако, существенного снижения времен удерживании добиться не удалось, максимальное изменение при переходе от 20 к 60 оС составляло 1,52 минуты для всех витаминов. Уменьшение времен удерживания для различных витаминов происходит практически синхронно, поэтому добиться улучшения разделения варьированием только температуры хроматографической колонки не удалось. Кроме того, выяснилось, что повышение температуры приводит к увеличению флуктуации базовой линии, поэтому все дальнейшие эксперименты проводили при температуре 20 оС.

Хроматограмма модельной смеси витаминов, полученная в оптимизированных условиях разделения приведена на рис. 3.

Таким образом, оптимальными условиями разделения витаминов являются следующие: градиентный профиль №1, элюент А: фосфорная кислота 0.6%, рН 1.70 (для Zorbax XDB C18 pH2), элюент В: ацетонитрил, температура колонки 20 С. Для разделения никотиновой и аскорбиновой кислот, следует использовать колонки Luna C18(2) Zorbax XDB C18 или Gemini C18, а при необходимости разделять пары рибофлавин-рибофлавин-5-фосфат и тиамин-тиамин фосфат неподвижные фазы Synergi Hydro C18 или Zorbax SB-C18.

Рис. 3. Хроматограмма стандартного раствора витаминов. Колонка Luna C18 (2) 250x4.6 мм. Градиент №1 (см. в табл. 1). СФ детектирование: 0-3.2 мин 292 нм, 3.2-7 мин 254 нм, 7-13 мин 292 нм, 13-18 мин 200 нм, 18-20 мин 297 нм, 20-21 мин 360 нм, 21-22,5 мин 270 нм, 23-24 мин 200 нм. Витамины: 1пиридоксамин, 2-тиамин, 3-никотинамид, 4-никотиновая кислота, 5-аскорбиновая кислота, 6пиридоксаль, 7-пиридоксин, 8-пантотеновая кислота, 9-фолиевая кислота, 10-цианокоболамин, 11рибофлавин, 12-биотин.

Для количественного определения каждого из витамина проводили подбор длины волны спектрофотометрического детектирования, позволяющей добиться наилучших пределов обнаружения и достаточного разрешения между пиком определяемого витамина и соседними пиками. Для ряда реальных объектов оптимальные длины волн могут не совпадать с максимумами поглощения. Это связано с собственным поглощением компонентов матрицы анализируемого образца. При оптимизации условий определения идентификацию пиков витаминов на полученных хроматограммах проводили с помощью предварительно записанной библиотеки спектров.

Пределы обнаружения, диапазоны линейности и использованные длины волн детектирования приведены в табл. 2.

Для рибофлавина и пиридоксина также подобрали условия флуориметрического детектирования (см. табл. 3), обеспечивающие лучшие пределы обнаружения и селективность.

При анализе сложных объектов спектрофотометрическое детектирование не всегда может обеспечить необходимую селективность определения витаминов, а флуориметрическое детектирование недоступно для большинства витаминов. Поэтому, для определения витаминов на фоне сложных матриц использовали масс спектрометрическое детектирование. При переходе от спектрофотометрического к массселективному детектированию необходимо учитывать некоторые особенности последнего. Использование фосфатных (как и других нелетучих) буферных растворов в качестве элюентов с масс–спектрометрическим детектором невозможно. Необходимо подобрать легколетучий водно–органический буферный раствор, в котором можно максимально разделить все водорастворимые витамины. В качестве органической фазы В использовали ацетонитрил, применение которого является типичным для обращеннофазового варианта жидкостной хроматографии и имеет ряд преимуществ перед также широко используемым метанолом.

Таблица 2. Длины волн детектирования и метрологические характеристики определения витаминов Витамин Длина волны, нм Предел обнаружения, мг/л Диапазон линейности, мг/л Тиамин 244 0.01 0.03-1Тиамин фосфат 244 0.02 0.06-1Никотинамид 244 0.03 0.09-3Никотиновая к-та 244 0.05 0.2-2Аскорбиновая к-та 254 0.03 0.1-2Пиридоксин 292 0.02 0.06-1Пиридоксаль 292 0.1 0.3-1Пиридоксамин 292 0.3 0.9-1Пантотеновая к-та 200 0.2 0.6-2Фолиевая к-та 297 0.006 0.02-1Цианокоболамин 360 0.05 0.2-1Рибофлавин-- фосфат 270 0.02 0.06-Рибофлавин 270 0.005 0.02-Биотин 200 0.06 0.2-1Таблица 3. Условия флуориметрического детектирования и пределы обнаружения для рибофлавина и пиридоксина Витамин Диапазон линейности, Пределы обнаружения, возбуждения, нм испускания, нм мг/л мг,л Пиридоксин 292 400 0.01-20 0.0Рибофлавин 440 520 0.002-5 0.00Прямая замена фосфатного буферного раствора на летучий ацетатный (с поправкой на достижимые значения рН) при использовании неподвижной фазы Synergi Hydro–RP привела к ухудшению формы пиков большинства витаминов, а также увеличению количества самих пиков, например, для тиамина, фолиевой кислоты, рибофлавина.

Поскольку сочетания свойств подвижных и неподвижных фаз могут влиять на поведение витаминов, разработку способа определения водорастворимых витаминов с масс спектрометрическим детектированием проводили на нескольких неподвижных фазах: Synergi Hydro RP, Luna C18(2), Zorbax XDB C18, Gemini C18. Предварительный подбор условий проводили, используя колонки 250х4,6мм.

В качестве подвижной фазы А в режиме градиентного элюирования опробовали уксусную, муравьиную и трифторуксусную кислоты для диапазона рН 2-3.5 (1,5 для трифторуксусной) и 50 мМ ацетатно-аммонийные, формиатно-аммонийные и трифторацетатно-аммонийные буферы для значений рН от 3.5 до 7. Значение рН варьировали с шагом 0.5. Помимо выбора рН и состава подвижной фазы осуществляли подбор профиля градиентного элюирования. Параллельно с подбором хроматографических условий проводили выбор условий масс селективного детектирования и оценку пределов обнаружения витаминов.

Поскольку масс селективный детектор обладает исключительной селективностью, нет необходимости добиваться полного разделения всех витаминов. Достаточно добиться отделения пиков витаминов от неудерживаемых и слабоудерживаемых соединений, элюирующихся со временами удерживания, близкими к мертвому, разделить витамины, имеющие близкие массы и добиться элюирования витаминов несколькими группами.

Отсутствие необходимости полностью разделять все витамины позволяет, в дальнейшем, применить колонки меньшего размера, сократить время анализа и улучшить пределы обнаружения за счет возросшей эффективности. Использованный профиль градиентного элюирования приведен в табл. 1.

Наилучших результатов (по сравнению с неподвижными фазами Synergi Hydro–RP и Luna C18(2)) удалось добиться при использовании колонок Gemini C18 и Zorbax Eclipse XDB C18 в градиентном режиме на растворах кислот при низких pH (рис. 4).

Рис. 4 Хроматограмма модельной смеси водорастворимых витаминов.

Пики: (1) – пиридоксамин, (2) – тиамин, (3) – тиамин фосфат, (4) – пиридоксаль, (5) – пиридоксин, (6) – аскорбиновая ксилота, (7) – никотиновая кислота, (8) – никотинамид, (9) – фолиевая кислота, (10) – цианокобаламин, (11) – рибофлавин, (12) – рибофлавин фосфат.

Колонка: Gemini C18 250 4.6 мм, 5 мкм; элюент: А — уксусная кислота (pH 2.9), В — ацетонитрил;

скорость потока 0.8 мл/мин; градиентное элюирование (0–6 мин 0% В, 15–28 мин 18% В, 29–30 мин 60% В, 31–35 мин 0% В); спектрофотометрическое детектирование на длине волны 270 нм.

Хорошее разделение витаминов наблюдали также при увеличении pH ацетатно– аммонийных буферных растворов до 4–7, однако при этом пики некоторых витаминов раздваивались (пиридоксамин, тиамин, фолиевая кислота, никотинамид, рибофлавинфосфат). При дальнейшем увеличении pH наблюдали значительное снижение эффективности неподвижной фазы, пики витаминов становились несимметричными, иногда наблюдали раздвоение для пиков витаминов. Вероятно, причиной раздвоения хроматографических пиков некоторых витаминов является совокупность влияния подвижной и неподвижной фаз. Возможно, при определенных значениях pH ацетатных или формиатных буферных растворов происходит образование нескольких форм одного витамина. Колонка Gemini C18 обеспечивает несколько лучшую эффективность по сравнению с колонкой Zorbax XDB C18. Примеры разделения витаминов на колонке подобного типа в литературе не встречаются. Использование гибридной неподвижной фазы обеспечивает лучшую селективность за счет сокращения путей диффузии, больший рабочий диапазон рН, который обеспечивает в случае необходимости более гибкое варьирование хроматографических условий, и позволяет полностью избежать взаимодействий анализируемых соединений с активными группами силикагеля, которые в данном сорбенте полностью закрыты особым полимерным слоем. По-видимому, именно полное исключение взаимодействий витаминов с силанольными и силоксановыми группами приводит к тому, что искажения формы и возникновения дополнительных пиков при использовании Gemini C18 практически не происходит.

От использования трифторуксусной кислоты в качестве подвижной фазы дальнейшем решено было отказаться. Выяснилось, что при анализе реальных объектов использование трифторуксусной кислоты зачастую приводит к образованию дополнительных пиков и артефактов на хроматограмме. Кроме того, трифторуксусная кислота может приводить к сокращению срока службы и порче прибора.

Как уже упоминалось выше, при масс–селективном детектировании не обязательно добиваться полного разделения всех витаминов, достаточно просто добиться какого-то удерживания, чтобы отделить анализируемые соединения от слабоудерживаемых компонентов матрицы, и разделения хотя бы на несколько групп веществ, элюирующихся примерно в одно и то же время (чтобы не снизился выход по ионизации отдельных компонентов). В связи с этим, для снижения времени анализа и получения менее размытых пиков целесообразно использовать хроматографические колонки меньших размеров. К сожалению, в нашем распоряжении не было колонки Gemini C18 меньших размеров, поэтому дальнейшие исследования проводили с использованием колонки Zorbax Eclipse XDB C18 150x4,6мм. Для этой колонки осуществлялась дальнейшая оптимизация условий разделения и детектирования витаминов.

В ходе работы выяснилось, что наилучшие результаты разделения витаминов на колонке Zorbax Eclipse XDB C18 в градиентном режиме достигаются при использовании следующих подвижных фаз: Вариант 1: А — раствор уксусной кислоты c pH 2.9, B — ацетонитрил; Вариант 2: А — раствор муравьиной кислоты c pH 2.5, В — ацетонитрил.

В ходе оптимизации условий определения разработали модифицированный профиль градиента, приведенный в табл. 4. Времена удерживания витаминов для элюентов на основе уксусной и муравьиной кислот с добавками ацетонитрила приведены в табл. 5 и 6.

В ходе исследования оптимизировали условия масс–спектрометрического детектирования. Оценивали чувствительность определения при использовании различных режимов ионизации при атмосферном давлении (электрораспылительной и химической, в режиме регистрации положительных ионов), варьировали напряжение фрагментора.

В качестве критерия выбора наиболее подходящего источника ионизации, рассматривали отношение сигнал/шум, характеризующее пределы обнаружения. При использовании ацетатно- (формиатно-) аммонийного буферного раствора и ацетонитрила в качестве подвижной фазы в масс–спектрах исследуемых соединений, снятых в режиме регистрации положительных ионов, присутствовали протонированные молекулы, ионы, соответствующие аддуктам с аммонием, различные фрагментарные ионы определяемых соединений и многозарядные ионы (для ЭРИ). Преобладающим являлся аддукт состава [M+H]+. Наилучшего соотношения сигнал/шум для большинства водорастворимых витаминов удалось достигнуть в режиме электрораспылительной ионизации с регистрацией положительных ионов Дальнейшие определения проводили в этом режиме. С учетом зависимости чувствительности определения от напряжения фрагментора и на основании времен удерживания компонентов модельной смеси витаминов, мы разработали программный режим масс–спектрометрического детектирования для обоих растворов кислот (табл. 7 и 8).

Таблица 4. Программа градиентного элюирования для колонки Zorbax Eclipse XDB C18 150х4.6мм Время, мин Концентрация MeCN, % 0.0 4.6 8.2 13.4 13.8 14.2 14.6 16.6 Таблица 5. Времена удерживания витаминов Таблица 6. Времена удерживания витаминов (tR) и селективности ( ). Элюент: уксусная (tR) и селективности ( ). Элюент: муравьиная кислота (pH 2.9) и ацетонитрил кислота (pH 2.5) и ацетонитрил Витамин tR, мин Витамин tR, мин Пиридоксамин 1.9 Пиридоксамин 1.Тиамин 2.1 1.08 Тиамин 2.3 1.Тиаминфосфат 2.2 1.06 Тиаминфосфат 2.3 1.Аскорбиновая кислота 2.5 1.13 Аскорбиновая кислота 2.8 1.Пиридоксаль 3.1 1.23 Никотинамид 3.1 1.Никотиновая кислота 3.1 1.02 Никотиновая кислота 3.3 1.Никотинамид 3.6 1.15 Пиридоксаль 3.7 1.Пиридоксин 3.7 1.04 Пиридоксин 5.1 1.Пантотеновая кислота 10.5 2.84 Пантотеновая кислота 10.8 2.Фолиевая кислота 12.7 1.21 Фолиевая кислота 12.5 1.Цианокобаламин 13.5 1.06 Цианокобаламин 13.5 1.Рибофлавин 13.7 1.02 Рибофлавин-5'-фосфат 13.7 1.Биотин 13.9 1.02 Рибофлавин 13.8 1.Рибофлавин-5'-фосфат 15.2 1.10 Биотин 14.0 1.Таблица 7 Параметры программного режима Таблица 8 Параметры программного режима масс–спектрометрического определения масс–спектрометрического определения (элюент: уксусная кислота (pH 2.9) и (элюент: муравьиная кислота (pH 2.5) и ацетонитрил) ацетонитрил) Время, Опр. Напр. Время, Опр. ион, Напр.

Витамин Витамин мин ион, m/z фраг., В мин m/z фраг., В Тиамин 265 Тиамин 2Тиаминфосфат 345 Тиаминфосфат 3Никотиновая кислота 124 Никотиновая кислота 1Никотинамид 123 0.0–4.5 Никотинамид 123 10.0–9.0 1Пиридоксин 170 Пиридоксаль 1Пиридоксаль 168 Пиридоксамин 1Пиридоксамин 169 Аскорбиновая кислота 1Аскорбиновая кислота 194 4.5–8.0 Пиридоксин 170 19.0–11.5 Пантотеновая кислота 220 150 8.0–11.5 Пантотеновая кислота 220 111.5–12.5 Фолиевая кислота 295 250 11.5–12.9 Фолиевая кислота 295 2Рибофлавин 377 Рибофлавин 312.5–14.2 Биотин 489 100 Рибофлавинфосфат 412.9–22.0 1Цианокобаламин 1355 Биотин 414.2–22.0 Рибофлавинфосфат 457 200 Цианокобаламин 13Хроматограмма модельной смеси четырнадцати витаминов в условиях №1 с использованием программного режима при масс–спектрометрическом детектировании представлена на рис. 5.

Количественные характеристики хроматографического определения витаминов в условиях №1 с использованием масс–селективного детектирования представлены в табл. 9, 21m/z 1m/z 13m/z 4m/z 41m/z 1m/z 1m/z 1m/z 2m/z 1m/z 1m/z 4m/z 3m/z 3m/z 20 10 20 30 40 50 min Рис. 5. Реконструкция хроматограммы модельной смеси водорастворимых витаминов по выделенным ионам.

Пики: (1) – тиамин, (2) – тиаминфосфат, (3) – рибофлавин, (4) – рибофлавинфосфат, (5) – никотиновая кислота, (6) – никотинамид, (7) – пантотеновая кислота, (8) – пиридоксин, (9) – пиридоксаль, (10) – пиридоксамин, (11) – биотин, (12) – фолиевая кислота, (13) – цианокобаламин, (14) – аскорбиновая кислота.

Условия. Колонка: Zorbax Eclipse XDB C18 150 4.6 мм, 5 мкм; элюент: А — уксусная кислота (pH 2.9), В — ацетонитрил; скорость потока 0.8 мл/мин; градиентное элюирование (0–4.6 мин 0% В, 10–17.8 мин 18% В, 18.4–19.0 мин 60% В, 19.6–22 мин 0% В); электрораспылительная ионизация, режим регистрации положительно заряженных ионов, масс–селективное детектирование по заданным ионам (m/z 123, 124, 168, 169, 170, 194, 220, 265, 345, 377, 442, 457, 489, 1355).

Таблица 9. Количественные характеристики хроматографического определения водорастворимых витаминов с масс–селективным детектированием в условиях № Уравнение Диапазон Предел Калибр. Коэфф. коррел., Витамин линейной линейност обнаружения уровень1 Rзависимости2 и, мг/л мкг/л нг Тиамин 8 S = 47668 c 0.999 0.150–50 50 Тиаминфосфат 8 S = 73251 c 0.999 0.1–50 30 0.Рибофлавин 8 S = 618779 c 0.999 0.01–5 3 0.Рибофлавинфосфат 8 S = 147493 c 0.996 0.06–50 20 0.Никотиновая кислота 8 S = 123092 c 0.998 0.05–50 15 0.Никотинамид 8 S = 181312 c 0.999 0.04–50 12 0.Пантотеновая кислота 8 S = 253351 c 0.999 0.06–50 20 0.Пиридоксин 8 S = 337231 c 0.998 0.01–50 3 0.Пиридоксаль 8 S = 221227 c 0.999 0.03–50 10 0.Пиридоксамин 8 S = 47565 c 0.997 0.09–50 30 0.Биотин 8 S = 83543 c 0.999 0.05–50 16 0.Фолиевая кислота 8 S = 16186 c 0.998 0.06–50 20 0.Цианокобаламин 8 S = 23915 c 0.999 0.150–50 50 Аскорбиновая кислота 7 S = 200293 C 0.999 0.8–150 250 Характеристики хроматографического определения в условиях №2 в целом аналогичны приведенным. Пределы обнаружения в условиях №2 430 мкг/л для аскорбиновой кислоты, 5–50 мкг/л для остальных витаминов. Следует отметить, что пределы обнаружения, достигаемые в режиме электрораспылительной ионизации, достаточно низки практически для всех витаминов, что позволяет работать с реальными объектами без предварительного концентрирования. К сожалению, для качественного и количественного определения цианокобаламина необходимо проводить предварительное концентрирование, поскольку даже в обогащенных продуктах питания витамин Всодержится в количествах, на 1–3 порядка меньших, чем полученные значения пределов обнаружения.

За счет оптимизации условий градиентного элюирования время анализа уменьшилось с 35 до 16.6 мин, время элюирования последнего витамина — с 14.0 до 9.9 мин.

Предложенные подходы использовали при анализе реальных объектов. Во время пробоподготовки твердых образцов экстракцию витаминов проводили 1% раствором фосфорной кислоты, а для осаждения белков в молочных продуктах использовали смесь фосфорной и трихлоруксусной кислот. Предложенный осадитель позволяет более эффективно (по сравнению с традиционными) коагулировать белки не прибегая к нагреванию. Как правило, в сочетании с масс-спектрометрическим детектором используют только летучие экстрагент. Однако, объем пробы, вводимый в хроматограф, составляет всего 20 мкл, а содержание фосфорной кислоты в вытяжке сопоставимо с содержанием в ней экстрагируемых из образцов нелетучих соединений. Эксплуатация хромато-массспектрометра в течении нескольких месяцев не выявила никаких проблем, возникающих вследствие использования фосфорной кислоты.

Результаты определения витаминов в некоторых объектах приведены ниже, в табл.

10 и 11. Полученные результаты хорошо согласуются с паспортными данными.

Таблица 10. Результаты определения витаминов в соке, сухих хавтраках и печенье (n = 3, P = 0,95) Сок Тонус Сух. Завтрак «СНОСА» Печенье «Расти Большой» Витамин Найдено, Паспорт, Найдено, Паспорт, Найдено, Паспорт, мг/л мг/л мг/100г мг/100г мг/100г мг/100г Витамин В1 1.03 0.07 1.1 0.76 0.05 0.7 2.2 0.2 2.2 0.Витамин В2 1.23 0.04 1.2 0.82 0.05 0.8 2.36 0.06 2.3 0.Витамин В3 13.8 0.8 13.5 9.1±0.3 9.0 21±1 21.0 1.Пантотеновая кислота 4.6 0.3 4.5 3.0±0.2 3 1.7±0.3 – Витамин В6 1.5 0.1 1.5 1.06±0.06 1.0 3.1±0.1 3.1 0.Биотин 0.12 0.01 0.11 0.07±0.01 0.075 н.о. - Фолиевая кислота 0.16 0.01 0.15 0.11±0.01 0.1 0.45±0.03 - Цианокобаламин н.о. 0.0008 н.о. 0.00075 н.о. - Аскорбиновая кислота 34 4 45 29±2 30 32.8±0.5 34 6.Таблица 11. Результаты определения витаминов в молочной смеси «Агуша», витаминном препарате «Ундевит» и кормовой добавке «Финишер» (n = 3, P = 0,95) «Агуша» «Ундевит» Корм «Финишер» Витамин Найдено, Паспорт, Найдено, Паспорт, Найдено, Паспорт, мг/1000 г мг/1000 г мг/драже мг/драже мг/100г мг/100г Витамин В1 0.40 0.04 0,4 1.9 0.1 2 1.04 0.08 Витамин В2 0,62 0.03 0,6 2.0 0.1 2 1.3 0.3 Витамин В3 4,1 0,1 4 19 1 20 26 2 Пантотеновая кислота 3.0 0.2 3 3.0 0.1 3 5.11 0.08 Витамин В6 0.42 0.03 0,4 3.1 0.1 3 5.2 0.5 Фолиевая кислота 0.06 0.01 0,06 0.071 0.003 0.07 0.04 0.01 0,Аскорбиновая кислота 62 3 60 73 3 75 44 3 Биотин - - - - 0.05 0.01 0.Цианокоболамин - - 0.002 0.0006 0.002 - - Следует отметить, что результаты определения витаминов в тех же объектах, полученные с использованием спектрофотометрического детектирования, совпадали с полученными при масс спектрометрическом детектировании в случае объектов с простой матрицей (фармпрепараты, кормовая добавка и т.п.), однако были завышены для целого ряда витаминов в случае анализа объектов с более сложной матрицей.

Шестая глава диссертации посвящена разработке метода определения жирорастворимых витаминов. На начальном этапе подобрали условия разделения ретинола, ретинола ацетата, холькальциферола, эргокальциферола, токоферола и токоферол ацетата.

В большинстве работ для разделения жирорастворимых витаминов используются подвижные фазы на основе ацетонитрила или метанола. Однако, метанол довольно токсичен, в связи с чем его использование желательно ограничить, а ацетонитрил довольно дорог. Исходя из соображений меньшей стоимости и токсичности, как альтернатива и дополнение к ацетонитрилу и метанолу, в качестве органического компонента подвижной фазы опробовали этанол. Этанол обладает несколько большей элюирующей силой, по сравнению с ацетонитрилом и метанолом, что позволяет варьировать условия разделения в более широких пределах. Подбор условий осуществляли на неподвижных фазах Диасфер С18, Диасфер С16, Luna C18(2), Synergy Hydro RP, Gemini C18, Onyx. Помимо изократического варианта элюирования опробовали и градиентный.

Установлено, что ни одна из предложенных бинарных подвижных фаз на основе этанола и метанола не обеспечивает полного разделения эргокальциферола и холькальциферола за приемлемое время, причем простое снижение элюирующей силы не приводит к желаемым результатам. Наилучший результат достигается при использовании неподвижных фаз, которые помимо гидрофобных взаимодействий с разделяемыми соединениями обеспечивают еще и полярные взаимодействия (фазы с полярным эндкэппингом, например Synergi Hydro RP, или фазы с неплотным или отсутствующим эндкэпингом). Установлено, что использование ацетонитрила в тех же концентрация, что и метанола приводит к существенному увеличению времени удерживания токоферола и токоферола ацетата. По-видимому это связано с природой самого растворителя, который до некоторой степени может проявлять свойства основания, в отличии от метанола, который обладает слабыми кислотными свойствами. Этанол обладает несколько более сильной элюирующей способностью по сравнению с метанолом, а закономерности удерживания витаминов при использовании этанола аналогичны. При использовании изократического режима элюирования, в отсутствии необходимости разделять эргокальциферол и холькальциферол целесообразно использовать элюент состоящий из этанола и воды, рис. 6.

Рис. 6 Хроматограмма раствора модельной смеси шести витаминов. Колонка Диасфер 110-С18, 1504,6 мм. Элюент: этанол - вода 95:5, скорость потока 0,8 мл/мин. Концентрация витаминов в смеси, мг/л: А – 18,0; А (ацетат) – 22,7; D2 – 10,0; D3 – 40,0; Е – 105,0; Е (ацетат) – 150,0. Детектирование спектрофотометрическое при 285 нм Как видно из хроматограммы и данных таблицы, добиться разрешения витаминов D2 и D3 за желаемое время не удалось. Для улучшения разрешения между пиками витаминов D2 и D3 можно использовать более длинную колонку и подвижную фазу с меньшей элюирующей способностью. Однако, эксперименты показали, что за приемлемое время анализа достигнуть полного разделения не удается, поскольку время удерживания токоферола и токоферола ацетата значительно возрастает. Для того, чтобы достигнуть разделения всех шести витаминов за приемлемое время и при этом добиться полного разделения эргокальциферола и холькальциферола можно использовать подвижную фазу более сложного состава. Для возможности более широкого варьирования параметров элюирования в качестве мобильной фазы выбрана трхкомпонентная система: этанолвода-ацетонитрил. В качестве неподвижной фазы использовали колонку Synergi Hydro RP, поскольку она обладает гидрофильным эндкэпингом, позволяющим эффективнее разделять эргокальциферол и холькальциферол. Хроматограмма, полученная в подобранных, условиях приведена на рис. 7.

Рис. 7 Хроматограмма модельной смеси жирорастворимых витаминов в оптимальных условиях.

Колонка Synergi 4u Hydro-RP 250*4.6 мм; скорость потока 2,0 мл/мин, температура 350С. Элюент:

этанол – вода - ацетонитрил 5:5:90. Детектирование при 285 нм.

Подбор условий разделения жирорастворимых витаминов в режиме градиентного элюирования также проводили с использованием колонки Synergi Hydro-RP. Основной задачей при подборе условий градиентного элюирования было «растянуть» начальный участок хроматограммы. Элюирование начинали с большей концентрацией воды в подвижной фазе, затем содержание воды уменьшали. Опробовали серию градиентных профилей элюирования. Наилучший профиль приведен в табл. 12. Хроматограмма, полученная в предложенных условиях, приведена на рис. 8.

Таблица 12. Профиль градиентного элюирования для определения жирорастворимых витаминов.

Скорость потока 1,5 мл/мин, температура 35 С. (остальную долю в элюенте составляет ацетонитрил).

Время Содержание воды, % Содержание этанол, % 0 13 6 13 7 3 17 3 29 13 Рис. 8. Хроматограмма модельной смеси жирорастворимых витаминов в градиентном режиме табл.

12. Колонка Synergi 4u Hydro-RP 250*4.6 мм; скорость потока 1,5 мл/мин, температура 350С.

Детектирование 285 нм.

В ходе исследований опробовали 4 варианта детектирования жирорастворимых витаминов: спектрофотометрическое, флуориметрическое, электрохимическое и масс спектрометрическое. Достигнутые пределы обнаружения и подобранные условия детектирования приведены в табл. 13.

Таблица 13. Характеристики разных вариантов детектирования жирорастворимых витаминов.

Спектрофотометрич Флуориметрическое Электрохимическое Масс спектрометр.

m/z, Вещество Предел, Предел, /, Предел, Потенц, Предел, возб. исп.

, нм режим.

мг/л мг/л нм мг/л мВ мг/л APCI+ А 0,01 325 0.001 325/470 0,0007 +1400 0.01 2А (ацетат) 0,003 325 0.003 325/470 0,008 +1400 0,01 2D2 0,03 265 - - 0.002 +1400 0,0002 385 (367) D3 0,03 265 - - 0.002 +1400 0,0002 397 (379) Е 0,2 295 0.06 290/340 0.01 +1400 0.2 4Е (ацетат) 0,3 295 20 290/340 0,03 +1400 0,3 4Следует отметить, что целесообразность использования того или иного варианта детектирования зависит от природы анализируемого объекта и используемого способа пробоподготовки. Наилучшую селективность обеспечивает масс спектрометрический вариант детектирования. Это практически единственный вариант детектирования, который позволяет определять витамин D в сложных образцах без предварительного концентрирования. Использование электрохимического варианта детектирования обеспечивает низкие пределы обнаружения, однако, в ряде случаев, при анализе реальных объектов возникает большое мешающее влияние матрицы. Флуориметрическое детектирование не позволяет проводить определение витамина D и токоферол ацетата, однако обеспечивает снижение пределов обнаружения ретинола, токоферола и ретинола ацетата. Спектрофотометрическое детектирование является широко распространенным, универсальным, достаточно чувствительным, но наименее селективным.

Спектрофотометрическое детектирование подходит для определения жирорастворимых витаминов в объектах с относительно простым составом.

При исследовании возможных путей оптимизации пробоподготовки исследовали несколько типов реальных объектов. Для каждого из них необходимо использовать свою стратегию пробоподготовки. Разумеется, рассмотренные типы реальных объектов не охватывают всего многообразия существующих в природе и на производстве матриц.

Однако, изученные образцы являются одними из наиболее часто встречающихся в практике витаминного анализа.

Для зерновых премиксов, блендов, сухих фармпрепаратов, БАДов целесообразно использовать простую экстракцию без сапонификации, поскольку образцы довольно просты по составу матрицы и формам жирорастворимых витаминов и не содержат больших количеств жиров. На полноту извлечения жирорастворимых витаминов влияет, прежде всего, природа растворителя, используемого в качестве экстрагента. При выборе оптимальных условий проведения экстракции тестировали несколько наиболее распространенных растворителей: метанол, этанол, гексан, диэтиловый эфир, дихлорметан, бутанол, ацетонитрил. Экстракцию проводили в ультразвуковой ванне. Для предотвращения окисления витаминов в экстрагент добавляли BHT. Для оценки эффективности растворителей и процедуры однократной экстракции в целом, провели повторные экстракции теми же растворителями из образцов, уже подвергавшихся экстракции. Наилучшим экстрагентом оказался метанол. Использование метанола позволяет извлечь 90 и более % витаминов однократной экстракцией и добиться почти 100% извлечения при повторном экстрагировании. При использовании в качестве экстрагентов других растворителей степени извлечения витаминов были значительно ниже.

Из полученных данных можно сделать вывод, что гексан плохо подходит для экстракции витаминов из зерновых премиксов, поскольку степени извлечения в любом из опробованных способов экстракции не превышают 70% для токоферола ацетата и еще ниже для остальных витаминов. Поскольку растворимость жирорастворимых витаминов в гексане высокая, то низкие степени извлечения, особенно при использовании экстракции в аппарате Сокслета, должны иметь какую-то другую причину. Витамины вносятся в зерновые премиксы в виде сухих порошкообразных смесей, жирорастворимые компоненты которых (прежде всего витамины А и Е), как правило, предварительно наносят на инертный носитель. В качестве инертного носителя используют каолин, мел, силикагель или другие аналогичные вещества. Нанесение жирорастворимых витаминов на инертный носитель, во-первых, позволяет более гомогенно распределить жирорастворимые витамины по объему смеси, не смачивая ее какими либо растворителями, а во-вторых, улучшает стабильность витаминов при хранении.

Поверхность веществ, используемых в качестве носителей довольно полярная. Наиболее вероятно, что неполярный н-гексан плохо смачивает полярную поверхность носителя и не может проникнуть в его поры. Не имея доступа ко всей поверхности и к порам, н-гексан не способен количественно экстрагировать жирорастворимые витамины из образца. Для проверки этой гипотезы провели экстрагирование н-гексаном жирорастворимых витаминов из коммерческих препаратов витаминов А, D и Е, в которых в качестве инертного носителя используется каолин. Данные препараты и их аналоги используются при производстве зерновых премиксов при внесении витаминов в рецептуру. Достигнутые в ходе эксперимента степени извлечения витаминов н-гексаном не превышали 15-20%.

Данный факт подтверждает предположение о том, что использование каолина, мела и аналогичных полярных неорганических веществ в пробе в качестве инертных носителей витаминов затрудняет экстракцию неполярными растворителями.

Для определения жирорастворимых витаминов в молочных продуктах предложены две методики пробоподготовки. Первая методика включает в себя осаждение белков метанолом (разведение 4:1) и центрифугирование. Поскольку большинство потерь витаминов связаны с их окислением, во время пробоподготовки к пробе добавляется небольшое количество антиоксиданта, бутилгидрокситолуола. В большинстве случаев, вводимый в хроматографическую систему раствор был абсолютно прозрачен и гомогенен.

В некоторых случаях наблюдали небольшую опалесценцию раствора. Тем не менее, такой раствор вс равно использовали для анализа. Поскольку используемая хроматографическая колонка оснащена предколонкой С18, никаких осложнений не наблюдали даже в этом случае. Предложенный подход опробован на широком спектре молочных и молочнокислых продуктов и проверен методом добавок табл. 14. В целом, метод показал хорошие результаты, оказался экспрессным (время пробоподготовки и время анализа занимают в совокупности 40 минут) и простым. Главными недостатками предложенного подхода является привязка метода к искусственно обогащнным витаминами образцам, то есть метод не позволяет определить природные формы витаминов и не дает возможности определять витамины в случае нахождения их в нескольких витамерных формах.

Второй вариант пробоподготовки представляет собой модификацию методики сапонификации. К 1 мл образца прибавляли 0,2 мл 50% КОН. Оптимальное время реакции составляло 20 минут. При этом температуру реакционной смеси поднимали до 80С.

Затем, после протекания сапонификации, добавляли 4 мл метанола. После добавления метанола смесь тщательно встряхивали и центрифугировали. Надосадочную жидкость вводили в хроматограф. По сравнению с существующими методиками предложенный способ анализа молочных продуктов является более простым и экспрессным.

Предложенный подход может быть использован как для анализа образцов обогащенных витаминами, так и для образцов, содержащих только природные витамины.

Результаты определения витаминов в реальных объектах с использованием разных вариантов пробоподготовки и детектирования приведены в табл. 14 и 15. Как видно из приведенных значений, полученные результаты определения хорошо согласуются с паспортными данными. Результаты, полученные с использованием метода добавок, аналогичны приведенным ниже.

Таблица 14. Результаты определение витаминов A, D, E в молочных продуктах (n = 3, P = 0,95) «Агуша» розовая (МС «Агуша» синяя (МС детект., «Агуша» оранж. (СФ детект., сапонификация) сапонификац) детектиров. осаж. белков) Витамин Найдено Паспорт Найдено Паспорт Найдено Паспорт мг/1000г мг/1000г мг/1000г мг/1000г мг/1000г мг/1000г 0,5±0,А 0,63±0,05 0,55-0,65 0,42±0,05 0,45-0,55 0,45±0,D3 10±1 10 9±1 10 н.о. 7,9±0,Е 10,0±0,6 10±1 7,6±0,5 8 Таблица 15. Результаты определение витаминов A, D, E в витаминных премиксах и фармпрепаратах (n = 3, P = 0,95) Премикс GS_vit-12 Фармпрепарат «Витрум» БАД «Алфавит» (Экстракция МеОН. СФ) Витамин Найдено Паспорт Найдено Паспорт Найдено Паспорт г/100г г/100г мг/драже мг/драже мг/табл. мг/табл.

3333МЕ 0,65±0,01 3260±90МЕ А 0,6±0,06 1.50±0.07 1.5100±5МЕ. 100МЕ D3 0,0098±0,0008 0,01±0,001 0,0097±0.0006 0,0Е 10,6±0,5 10,0±0,6 32±2 30 10,1±0,1 Седьмая глава посвящена разработке методики определения коэнзимов Q9 и Q10. Сначала осуществили подбор условий разделения окисленной и восстановленной форм коэнзимов. В рамках исследований для разделения исследуемых соединений – Q9H2, Q9, Q10H2 и Q10 – опробовали более десяти неподвижных фаз и три варианта элюентов: метиловый спирт-ацетонитрил, этиловый спиртацетонитрил и изопропиловый спирт-ацетонитрил. В итоге наилучшей неподвижной фазой оказалась обращено-фазовая колонка с гидрофильным эндкеппингом Synergi HydroRP 4,60250 мм. Для проведения дальнейших экспериментов выбрана подвижная фаза, в состав которой входило 60% изопропилового спирта и 40% ацетонитрила. В данных условиях время анализа при скорости потока элюента 1 мл/мин не превышало 15 минут.

При этом разделение окисленной формы Q9 и восстановленной формы Q10H2 не достигается, однако, поскольку масс спектры этих соединений различаются, а в дальнейшем планировалось использовать масс селективное детектирование, в этом нет необходимости.

На следующем этапе подобрали условия масс спектрометрического детектирования.

Опробовали варианты электрораспылительной ионизации (при добавлении модификаторов в подвижную фазу) и химической ионизации при атмосферном давлении.

Оба варианта ионизации позволяют проводить определение коэнзимов (электрораспылительная ионизация при добавлении в подвижную фазу метиламина и регистрацией положительных ионов, в основном аддуктов), однако, при использовании электрораспылительной ионизации масс спектры определяемых соединений зависят от масс спектрометрического оборудования. При использовании режима химической ионизации при атмосферном давлении масс спектры соединений, полученные на разных приборах, идентичны, поэтому в дальнейшем использовали именно этот режим ионизации с регистрацией отрицательных ионов (напряжение коронного разряда 3кВ, скорость подачи газа 2,5 л/мин, температура источника 275°С).

Параметры масс спектрометрического детектирования приведены в табл. 16.

Градуировочные зависимости для Q10 и Q10H2 линейны в диапазоне концентраций 100 – 25000 мкг/л, для Q9 и Q9H2 100 – 20000 мкг/л соответственно.

Таблица 16. Характеристики масс спектрометрического детектирования коэнзимов Соединение m/z Предел обнаружения, мкг/л Q9H2 795 Q9 795 Q10H2 864 Q10 864 Важным этапом при проведении анализа является процедура пробоподготовки.

Наиболее сложным объектом в данном случае являются биологические ткани. При пробоподготовке необходимо сохранить соотношение окисленной и восстановленной форм коэнзимов. В ходе исследований опробовали несколько вариантов пробоподготовки для биологических тканей и для плазмы крови. В конце концов остановились на следующих вариантах. Для тканей: к навеске замороженного образца прибавляли г BHT, смесь гомогенизировали с охлажденным изопропиловым спиртом и помещали на 5 минут на ультразвуковую баню. При этом следили, чтобы температура бани не превышала 40°С.

Далее образец центрифугировали, отбирали надосадочную, жидкость и вводили в прибор.

Для плазмы крови пробоподготовка сводилась к осаждению белков охлажденным изопропиловым спиртом (1:4) и центрифугированию образца. Предложенные варианты обеспечивают стабильность извлечения коэнзимов и сохранность соотношения окисленной и восстановленной форм.

Разработанные схемы пробоподготовки и хроматографического определения использованы при анализе реальных образцов. Результаты приведены в табл. 17 и 18.

Таблица 17. Содержание Q10 и Q10H2 в плазме крови до и после курса приема препарата, содержащего коэнзим Q10 (женщина, 24 года) (n = 3, P = 0,95) До приема Через две недели регулярного препарата употребления Содержание Q10, мг/л 0,12±0,01 0,28±0,Содержание Q10H2, мг/л 1,6±0,1 3,6±0,Суммарное содержание коэнзимов, мг/л 1,7±0,1 3,9±0,Соотношение сQ10H2/cQ10 13,3±0,9 12,8±0,Таблица 18. Влияние стресса на соотношение форм коэнзимов в организме крыс (n = 3, P = 0,95) Q9H2/Q9 Q10H2/QКонтрольная группа 127±25 1,4±0,Животные, подвергшиеся стрессу 0,19±0,05 0,8±0,На основании полученных данных можно сделать предположение, что соотношение восстановленной и окисленной формы коэнзимов может являться маркером стресса либо показателем общего состояния организма. Однако, для окончательных выводов требуется проведение дополнительных исследований.

Выводы 1. Разработаны способы одновременного определения водорастворимых витаминов в объектах со сложной матрицей методом высокоэффективной жидкостной хроматографии со спектрофотометрическим (13 витаминов) и масс–селективным (витаминов) детектированием в режиме электрораспылительной ионизации с регистрацией положительных ионов. Полные времена анализа составляют 35 и 14 мин соответственно. Пределы обнаружения: спектрофотометрическое детектирование:

0,006-0,2 мг/л, масс спектрометрическое детектирование: аскорбиновая кислота 2мкг/л, остальные витамины 3–50 мкг/л. Для извлечения водорастворимые витамины с последующим хромато-масс-спектрометрическим определением предложено использовать 0,5% фосфорную кислоту. Разработан вариант пробоподготовки, позволяющий определять водорастворимые витамины в алкогольсодержащих пробах.

Пробоподготовка включает в себя подкисление пробы и отгонку этанола под вакуумом.

2. Установлено, что наличие дополнительных полярных взаимодействий с сорбентом влияет на селективность разделения и порядок удерживания водорастворимых витаминов. При рН подвижной фазы 1.7 (фосфорная кислота) порядок элюирования:

аскорбиновая кислота, никотиновая кислота на неподвижных фазах с дополнительными полярными взаимодействиями, а на неподвижных фазах, полярные взаимодействия с которыми минимизированы - никотиновая кислота, аскорбиновая кислота. При этом полное разделение пары никотиновая–аскорбиновая кислоты при низких значениях рН достигается только на фазах без полярных взаимодействий.

Температура практически не оказывает влияния на разделение витаминов.

3. Впервые для разделения водорастворимых витаминов использована гибридная неподвижная фаза (Gemini С18). Использование гибридной фазы Gemini приводит к улучшению асимметрии пиков и увеличению эффективности разделения. Порядок элюирования витаминов и времена удерживания аналогичны порядку и временам удерживания на С18 колонках с минимизированными полярными взаимодействиями.

4. Предложен способ определения жирорастворимых витаминов методом ОФ-ВЭЖХ с различными вариантами пробоподготовки в изократическом и градиентном вариантах элюирования. Полностью разделено шесть витаминов и витамерных форм при времени анализа 20 мин, пределы обнаружения при различных вариантах детектирования 0,0003-0,3 мг/л.

5. Установлено, что наличие полярного эндкэппинга улучшает разделение эргокальциферола и холькальциферола. В качестве подвижной фазы предложено использовать водно–этанольные и водно–этанольно–ацетонитрильные смеси.

Использование этанола позволяет снизить себестоимость анализа. При увеличении доли этанола в трехкомпонентном ацетонитрильно–этанольно–водном элюенте падает разрешение витаминов D2 и D3, а при увеличении доли ацетонитрила – разрешение витаминов D3 и Е.

6. Разработано несколько вариантов пробоподготовки молочных продуктов, для определения жирорастворимых витаминов, как включающих в себя стадию сапонификации, так и без нее. Установлено, что для витаминизированных объектов во многих случаях можно пренебречь стадиями реэкстракции, очистки экстракта и отгонки растворителя, а в ряде случаев и стадией сапонификации. Время пробоподготовки, по сравнению с методикой ГОСТ снижено с 60 до 30 мин., количество стадий уменьшено с 4 до 2-х.

7. Предложен вариант экстракционной пробоподготовки для определения жирорастворимых витаминов в фармпрепаратах, БАДах сухих кормах, премиксах, сухих пищевых продуктах Показана неэффективность неполярных растворителей (нгексана, эфира, хлористого метилена и бутанола) для извлечения жирорастворимых витаминов из объектов, содержащих большое количество неорганической матрицы, например, каолина, мела и др. (степени извлечения для отдельных витаминов не превышали 5-80%). Наиболее эффективным экстрагентом для объектов с полярными матрицами является метанол (степени извлечения 85–95%). Введение на начальной стадии небольшого (5–10%) количества воды увеличивает степени извлечения и сокращает время пробоподготовки, а введение антиоксиданта (бутилгидрокситолуола) минимизирует потери определяемых соединений.

8. Разработан способ одновременного определения окисленной и восстановленной форм коэнзимов Q9 и Q10 в биологических объектах методом ОФ-ВЭЖХ с масс– селективным детектированием в режиме электрораспылительной ионизации с регистрацией положительных ионов и химической ионизации с регистрацией отрицательных ионов. Разделение всех компонентов достигается за 15 мин. в изократическом режиме элюирования. Достигнуты пределы обнаружения коэнзимов Q9H2, Q9, Q10H2 и Q10 составили 27, 4, 30 и 5 мкг/л, соответственно.

Продемонстрированы преимущества использования источника химической ионизации при атмосферном давлении при определении коэнзимов.

9. Предложена схема экспрессной пробоподготовки для количественного извлечения коэнзимов из объектов со сложной матрицей. Применение данного варианта позволяет за короткое время (процедура пробоподготовки занимает 10 мин) получить пробу, в которой сохраняется исходное соотношение окисленной и восстановленной форм коэнзимов. Изучено распределение форм коэнзимов Q9 и Q10 в организме крыс и показано влияние стресса на соотношение форм.

Основные результаты диссертации изложены в следующих работах:

По теме диссертации опубликовано 6 печатных работ в виде статей и тезисов докладов.

Статьи:

1. Бендрышев А.А. Определение жирорастворимых витаминов в зерновых блендах, таблетированных биологически активных добавках и медпрепаратах методом ВЭЖХ./ А.В. Пирогов, А.А. Бендрышев, Е.П. Свидрицкий, О.А. Шпигун // Заводск.

Лаборатория. Диагностика материалов – 2008. – Т. 74, № 8. – С. 3–9.

2. Бендрышев А.А. Определение водорастворимых витаминов в витаминных премиксах, биологически активных добавках и фармацевтических препаратах методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с градиентным элюированием/ А.А. Бендрышев, А.В. Пирогов, Е.Б. Пашкова, О.А.

Шпигун // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 2. Химия. – 2010. – Т. 51, № 4. – С. 315–324.

3. Бендрышев А.А. Определение водорастворимых витаминов в пищевых продуктах методом ВЭЖХ с масс-селективным детектированием./ А.В. Пирогов, А.А. Бендрышев, В.А. Колесов, Е.Б. Пашкова, А.В. Пирогов, О.А.

Шпигун // Заводск. Лаборатория. Диагностика материалов – 2010. – Т. 76, № 8. – С. 15–20.

Тезисы докладов:

1. Bendryshev A., Pirogov A., Bebina A., Kurilova S., Shpigun O. Determination of ascorbic acid in dairy products by HPLC. / Book of abstracts International conference on Instrumental methods of analysis. Modern trends and application. October 2-6, 2005, Iraclion, Crete, Greece, P.42. Bendryshev A., Pirogov A., Svidritskiy E., Shpigun O. Determination of fat soluble vitamins in polyvitamin pills, premixes, fodders and dairy products by HPLC. / Book of abstracts International conference on Instrumental methods of analysis. Modern trends and application. October 2-6, 2005, Iraclion, Crete, Greece, P.486.

3. Pirogov A., Bendryshev A., Svidritskiy E., Shpigun O. Determination of fat soluble vitamins in polyvitamin pills, premixes, fodders and dairy products by HPLC. / Book of abstracts International congress on analytical science. June 25-30, 2006, Moscow, Russia, P.207.






© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.