WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

На правах рукописи

Хабибулина Наталья Викторовна

Использование соевого шрота для получения биологически активных веществ и оценка их функциональной активности

Специальность: 03.01.06 – Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата технических наук

Москва - 2012

Работа выполнена на кафедре биотехнологии Российского химико-технологического университета имени Д.И. Менделеева

Научный консультант: Доктор химических наук, доцент Красноштанова Алла Альбертовна

Официальные оппоненты: Доктор технических наук, доцент кафедры «Аналитическая химия» Московского государственного университета пищевых производств Милорадова Елена Васильевна Кандидат технических наук, доцент отдела биосинтетических и биокаталитических нанотехнологий ферментов, дрожжей, органических кислот и БАД Всероссийского научно-исследовательского института пищевой биотехнологии РАСХН Курбатова Елена Ивановна

Ведущая организация: Всероссийский научно-исследовательский институт лекарственных и ароматических растений (ВИЛАР)

Защита состоится «22» мая 2012 г. в 15 ч. 00 мин. на заседании объединенного диссертационного совета ДМ 212.204.13 в Российском химико-технологическом университете им. Д. И. Менделеева по адресу: 125047, г. Москва, Миусская пл., д. 9, в аудитории 433 (конференц-зал).

С диссертацией можно ознакомиться в Информационно-библиотечном центре РХТУ им. Д.И. Менделеева.

Автореферат диссертации разослан «19» апреля 2012 г.

Ученый секретарь диссертационного совета ДМ 212.204.13 Шакир И.В.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность работы. Одним из наиболее перспективных видов растительного сырья, характеризующегося высоким содержанием биологически активных веществ, является соя. Площади посевов сои в мире постоянно растут, в 2010 году они составили 70 млн. га, а объем продукции, произведенной из соевых бобов, превысил 200 млн. т [Толоконников В.В., 2010].

Технологии переработки соевых бобов основаны на извлечении из них различных компонентов: масел, белков, различных биологически активных соединений.

Традиционно, соя представлена на рынке такими продуктами, как соевое масло, соевые молоко и молочные продукты, концентраты, изоляты и гидролизаты белка, при этом ассортимент продуктов на основе сои постоянно расширяется. В последние годы сою стали использовать не только в пищевой промышленности (при производстве мясных и кондитерских продуктов, в хлебопечении), но и в лечебно-профилактическом питании;

при создании БАД; медицине и фармацевтике для производства препаратов, подавляющих активность протеаз, антиканцерогенных препаратов, при осуществлении гормонозаместительной терапии и др. [Храмцов А.Г., 2003]. Расширение спектра отраслей, в которых используются соевые продукты, обуславливает актуальность исследовательских работ, направленных на ее глубокую переработку.

Особое внимание уделяют таким продуктам, как изолят белка, изофлавоноиды и ингибиторы протеаз. Общим недостатком существующих технологий их выделения из сои является узкая направленность на получение одного целевого продукта с образованием большого количества трудноутилизируемых отходов, характеризующихся наличием ценных соединений.

Разработка технологии переработки соевого шрота, предусматривающей получение в рамках одной технологической схемы ряда биологически активных веществ, обладающих высокой функциональной активностью (изолята белка, изофлавоноидов и ингибиторов протеаз) является актуальной с позиции снижения себестоимости отдельных продуктов (полупродуктов) и повышения рентабельности и экологичности производства.

Цель и задачи исследований. Целью настоящей работы является разработка основ технологии переработки соевого шрота с получением изолята белка сои, изофлавоноидов, ингибиторов протеаз и оценка их функциональной активности.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

- подобрать последовательность стадий переработки соевого шрота, позволяющую получить отдельные фракции, содержащие высокомолекулярную фракцию белковых веществ, изофлавоноиды и ингибиторы протеаз, в рамках технологии получения изолята белка сои;

- провести исследование и сравнительный анализ различных методов очистки фракции изофлавоноидов;

- подобрать условия фракционирования, выделения и очистки препаратов соевых ингибиторов протеаз из обогащенной ими фракции;

- разработать основы технологии получения ингибиторов протеаз и изофлавоноидов на основе полупродуктов, образующихся при выделении изолята белка, и провести технико-экономические расчеты эффективности разработанной технологии;

- оценить функциональную активность ингибиторов протеаз и изофлавоноидов с позиции повышения выживаемости микробных клеток при воздействии на них жестким ультрафиолетом и пероксидом водорода на примере дрожжей Saccharomyces cerevisiae;

- оценить функциональную активность изофлавоноидов с точки зрения их влияния на каталитическую активность ферментов.

Научная новизна.

Разработан способ получения биологически активных веществ сои (изофлавоноидов и ингибиторов протеаз) на основе полупродуктов, образующихся в технологии производства изолята белка. Подтверждена экономическая целесообразность применения жидкость-жидкостной экстракции для достижения требуемой степени очистки концентрата изофлавоноидов.

Показано, что введение соевых ингибиторов протеаз и изофлавоноидов в культуру дрожжей Saccharomyces cerevisiae повышает выживаемость клеток при воздействии на них жестким ультрафиолетом и пероксидом водорода.

Установлено влияние соевых изофлавоноидов на каталитическую активность промышленных ферментных препаратов за счет образования водородных связей и гидрофобных взаимодействий.

Практическая значимость.

Разработан способ выделения биологически активных веществ сои (ингибиторов протеаз, изофлавоноидов), предусматривающий введение в технологию переработки соевого шрота в изолят белка дополнительных технологических стадий, позволяющих получить фракцию изофлавоноидов с содержанием основного вещества не менее 70 %, ингибиторов Кунитца и Баумана-Бирк с содержанием сырого протеина 95 и 89 %, соответственно.

На основании полученных экспериментальных данных разработан лабораторный регламент и исходные данные для проектирования опытной установки переработки соевого шрота в рамках комплексной технологии. Проведена ориентировочная технико-экономическая оценка эффективности реализации предлагаемой технологии при расчетной мощности производства 5 000 тонн/год по соевому шроту.

Апробация работы. Основные положения и результаты работы доложены на Международной конференции молодых ученых «Успехи в химии и химической технологии» (Москва, 2008, 2010); 6-ой Международной конференции «Сотрудничество для решения проблемы отходов» (Харьков, 2009); V и VI Московском Международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2009, 2011); 3-ей конференции молодых ученых и специалистов «Обеспечение качества и безопасности продукции агропромышленного комплекса в современных социальноэкономических условиях (Москва, 2009); конкурсе проектов молодых ученых в Рамках 15-ой Международной выставки химической промышленности и науки «Химия2009» (Москва, 2009); I-ой Международной конференции Российского Химического Общества им. Д.И.Менделеева «Ресурсо- и энергосберегающие технологии в химической и нефтехимической промышленности» (Москва, 2009); Международной конференции молодых ученых, студентов и аспирантов «Синтез, исследование свойств, модификация и переработка высокомолекулярных соединений – V Кирпичниковские чтения» (Казань, 2009); VIII Международной конференции «Биоантиоксидант» (Москва, 2009); Московской международной научно-практической конференции «Биотехнология: экология крупных городов» (Москва, 2010).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 2 статьи в журналах, рекомендованных ВАК, и 11 тезисов докладов, подана заявка на патент.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, включающей описание объектов и методов исследования, изложения результатов и их обсуждения, выводов, списка цитируемой литературы, включающего 221 наименование, в том числе 133 иностранных авторов, 4 приложения. Основной текст работы изложен на 152 страницах машинописного текста, включает 27 таблиц, 53 рисунка.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ В обзоре литературы охарактеризована практическая значимость сои для народного хозяйства; рассмотрена общая характеристика и биохимический состав соевых бобов; описаны технологии переработки соевого сырья и получения основных соевых белковых продуктов. Описаны свойства и роль биологически активных компонентов сои – ингибиторов протеаз и изофлавоноидов, рассмотрены современные способы их выделения и области применения. На основе проведенного анализа научно-технической и патентной литературы сделан вывод о целесообразности проведения исследований по разработке способа получения биологически активных соевых компонентов – изофлавоноидов и ингибиторов протеаз – совместно с изолятом белка.

ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Основным объектом исследования являлся соевый шрот с содержанием сырого протеина 52 %, индексом растворимости азота 43,2 % (от сухих веществ) и содержанием общих углеводов 29,7 %. Микробные объекты исследования: дрожжи Candida tropicalis и Endomycopsis fibuligera из коллекции кафедры биотехнологии РХТУ им.

Д.И. Менделеева.

Содержание белковых веществ в растворах определяли методом Лоури, общее содержание углеводов – методом Дюбуа, общее содержание азотсодержащих веществ – методом Къельдаля, содержание нуклеиновых кислот – методом Спирина, определение индекса растворимости азота – методом водной экстракции [Шакир И.В. и др., 2008]. Качественное и количественное определение изофлавоноидов проводили методами, основанными на образовании комплексов изофлавоноидов с хлоридами железа (III) и алюминия [Лобанова А.А. и др., 2004]. Активность протеолитических ферментов и рибонуклеазы определяли в соответствии с [Worthington Enzyme Manual, 1965].

Липолитическую активность оценивали титриметрическим методом [Tietz N.W., 1989]. Ферментативный гидролиз субстратов осуществляли в аппарате с мешалкой и рубашкой при рН-статировании и заданной температуре. Эффективность гидролиза казеината натрия и дрожжевой РНК оценивали по увеличению содержания низкомолекулярной фракции (молекулярная масса <2 кДа), не осаждаемой 50 %-ной трихлоруксусной кислотой. Молокосвертывающую активность определяли согласно ГОСТ Р 52688-2006, антиоксидантную активность – пат. РФ 2144674 C1.

Молекулярно-массовое распределение белковых веществ определяли методом гель-хроматографии с использованием колонки диаметром 1 см и высотой 20 см, заполненной полимерным гелем марки Сефадекс. Электрофоретическое определение белков проводили по методу Лэммли [Остерман Л.А., 1985].

Фракционирование белоксодержащих растворов проводили в лабораторной ячейке при рабочем давлении 0,2 МПа с использованием плоских (УПМ-100, УПМ20) и половолоконных мембранных элементов (ВПУ-100ПА, ВПУ-20ПА).

Ионообменную хроматографию проводили в статических и динамических условиях, в качестве элюента использовали водные растворы хлорида натрия, соляной кислоты, гидроксида натрия и этилового спирта.

Культивирование микроорганизмов проводили в глубинных условиях в колбах Эрленмейера объемом 250 мл (объем питательной среды 100 мл) при постоянном встряхивании и температуре 28-30 C. Накопление микробной биомассы определяли прямым подсчетом клеток в камере Горяева и гравиметрическим методом. Определение острой токсичности препаратов проводили с тест-культурой Tetrahymena pyriformis.

Статистическую обработку экспериментальных данных проводили с использованием методов математической статистики, включенных в пакет программ «Excel» и «Statistica 6.0».

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ I. Разработка основ технологии совместного получения изолята белка, ингибиторов протеаз и изофлавоноидов сои Выбор последовательности стадий извлечения белковой фракции и фракции изофлавоноидов из соевого шрота Распространенной и успешно внедренной технологией глубокой переработки сои является получение изолята из соевых бобов, поэтому именно она была взята за основу разрабатываемой технологии совместного получения биологически активных веществ сои (изолята белка, изофлавоноидов и ингибиторов протеаз). Принципиальная схема получения изолята белка сои включает стадии обезжиривания соевых бобов органическими растворителями с получением соевого шрота, экстракции белковых веществ, ультрафильтрацию экстракта, осаждение высокомолекулярной фракции белка из концентрата и последующую очистку целевого продукта.

При разработке технологии получения ингибиторов протеаз и изофлавоноидов совместно с изолятом белка следует принимать во внимание специфические свойства ингибиторов протеаз (невысокую молекулярную массу) и изофлавоноидов (хорошую растворимость в этиловом спирте). В связи с этим, были предложены два варианта принципиальных схем совместного получения биологически активных веществ сои (рис.1), отличающиеся последовательностью стадий извлечения изофлавоноидов и белковых веществ. Согласно первой схеме, на первом этапе предусматривается экстракция белковых веществ из соевого шрота, затем этиловым спиртом из твердого остатка экстрагируются изофлавоноиды, согласно второй последовательность стадий обратная. Далее белковые экстракты, полученные по обеим схемам, обрабатываются согласно принципиальной схеме получения изолята белка.

Полученные результаты (табл. 1) свидетельствуют о том, что содержание белковых веществ в белковых экстрактах сопоставимо, при этом в случае второй схемы содержание сырого протеина в осадке белка, получаемом осаждением из концентрата, выше (62 и 72 % для схем 1 и 2, соответственно), что упрощает его очистку при получении изолята белка. Кроме того, при обработке согласно второй схеме содержание изофлавоноидов в спиртовом экстракте в 2,4 раза выше. Это позволяет рассматривать последовательность стадий получения фракций, обогащенных биологически активными веществами, согласно блок-схеме 2 более перспективной.

Поскольку ингибиторы типа Баумана-Бирк является спирторастворимыми, при осуществлении технологических стадий согласно блок-схеме 2 они частично переходят в экстракт изофлавоноидов, что подтверждается результатами гельхроматографии. При этом основная масса ингибиторов протеаз содержится в пермеате, образующемся после ультраконцентрирования белкового экстракта.

Блок-схема Блок-схема Соевый Экстракция Соевый Твердый шрот изофлавоноидов шрот остаток Экстракция Экстракция Твердый Экстракция белковых Спиртовой изофлавоноидов остаток белковых веществ экстракт веществ Спиртовой На получение Белковый Белковый экстракт изофлавоноидов экстракт экстракт На получение Ультра- УльтраПермеат Пермеат изофлавоноидов фильтрация фильтрация На получение На получение ингибиторов Концентрат Концентрат ингибиторов протеаз протеаз На получение На получение изолята белка изолята белка Рис.1. Подбор последовательности стадий переработки соевого шрота, позволяющих получить фракции высокомолекулярных белковых веществ, изофлавоноидов и ингибиторов протеаз Таблица 1.

Состав полупродуктов, получаемых при подборе последовательности стадий переработки соевого шрота Белковые Снижение Снижение Изофла- Общие Показатели вещества, активности активности воноиды, углеводы, г/л трипсина, химотрипсина, г/л г/л Анализируемые % % полупродукты Блок- белковый экстракт 16,3±0,74 51,3 36,1 0,13±0,01 18,0±0,схема концентрат 35,4±0,81 43,8 25,7 0,09±0,01 22,1±0,пермеат 3,5±0,09 64,8 43,8 0,15±0,01 15,3±0,экстракт 1,2±0,07 7,1 6,9 0,11±0,02 6,8±0,изофлавоноидов Блок- белковый экстракт 13,4±0,63 38,3 21,9 0,02±0,01 10,9±0,схема концентрат 29,7±0,76 38,5 20,8 0,02±0,01 13,0±0,пермеат 2,9±0,10 56,4 37,2 0,01±0,01 9,1±0,экстракт 1,8±0,08 20,5 14,8 0,26±0,02 13,4±0,изофлавоноидов Получение очищенной фракции изофлавоноидов Спиртовой экстракт изофлавоноидов, полученный в соответствии с выбранной последовательностью стадий, помимо целевого продукта содержит примеси ингибиторов Баумана-Бирк, низкомолекулярных пептидов и углеводов, для очистки от которых была предложена последовательность стадий (рис.3), предусматривающая регенерацию экстрагента (методом вакуум-выпаривания во избежание инактивации биологически активных веществ), отделение примеси ингибиторов Баумана-Бирк осаждением в изоэлектрической точке, последующую очистку осветленного концентрата изофлавоноидов от балластных веществ.

Проведение стадии вакуум-выпаривания и осаждения позволяет получить осадок ингибито-ров Баумана-Бирк с содержанием сырого протеина 35 %, который далее направляют на стадию выделения ингибиторов.

Спиртовой Концентрат Осаждение ингибиторов Вакуумэкстракт изофлавоноидов Баумана-Бирк выпаривание изофлавоноидов Очищенный Осветленный Очистка концентрат концентрат изофлавоноидов изофлавоноидов Рис.2. Блок-схема получения очищенного концентрата изофлавоноидов из экстракта изофлавоноидов Таблица 2.

Полученный осветСостав полупродуктов, образующихся при получении ленный концентрат изоочищенной фракции изофлавоноидов флавоноидов содержит 1,Фракция Содержание, г/л г/л основного вещества, Белковые вещества Углеводы Изофлавоноиды что в 4 раза выше, чем в (из них исходном спиртовом низкомолекулярной фракции, % от экстракте, однако характеобщего) ризуется значительным Спиртовой количеством сопутствуюэкстракт 1,8±0,06 (38,9) 13,5±0,35 0,3±0,изофлавоноидов щих углеводов и белковых Концентрат веществ (табл. 2), поэтому 9,1±0,43 (38,9) 67,4±1,84 1,3±0,изофлавоноидов требуется его очистка от Осветленный указанных соединений.

концентрат 2,7±0,09 (78,8) 49,4±1,48 1,2±0,0,изофлавоноидов Для получения очищенного концентрата изофлавоноидов в настоящей работе были опробованы методы ионного обмена и жидкость-жидкостной экстракции.

Очистка осветленного концентрата изофлавоноидов методом ионного обмена Для очистки осветленного концентрата изофлавоноидов методом ионного обмена были выбраны сорбенты полистирольной природы (катиониты: С-106, С-145, С-150, КУ-2х8; аниониты: А847С, A100S, АВ-17х8) и карбоксиметилцеллюлоза (волокнистая, Н+-форма, «РЕАХИМ»). При подборе оптимальных условий проведения ионного обмена для каждого сорбента варьировали такие параметры, как: режим (статический, динамический), соотношение сорбента и сорбируемой фракции, содержание компонентов в исходной фракции, рН исходного раствора, продолжительность процесса, природу элюентов и последовательность обработки ими.

Проведенные исследования показали, что для всех сорбентов степень сорбции изофлавоноидов в подобранных условиях составляет не менее 70 %. Десорбцию следует проводить ступенчато: на первом этапе десорбируют белковые вещества и углеводы (элюенты 1М HCl для катионитов и 1M NaCl для анионитов и карбоксиметилцеллюлозы), на втором – изофлавоноидов (элюент – 80 %-ый этиловый спирт). Наилучшие результаты были достигнуты в случае катионитов при использовании ионообменной смолы С-150, анионитов – А847С, однако наиболее перспективным является использование карбоксиметилцеллюлозы, с помошью которой удается достичь практически полной очистки концентрата изофлавоноидов от примесных веществ (табл. 3).

Таблица 3.

Очистка осветленного концентрата изофлавоноидов от белковых веществ и углеводов в динамических условиях методом ионного обмена Фракция Сорбент С-150 А847С Карбоксиметилцеллюлоза Содержание, % от исходного Белко- Белко- БелкоУгле- Изофла- Угле- Изофла- Угле- Изофлавые вые вые воды воноиды воды воноиды воды воноиды вещества вещества вещества Несорбированная 38,6 68,4 4,6 22,3 64,8 9,1 76,2 91,2 28,фракция Промывная 18,0 15,0 10,0 4,1 14,3 8,2 6,8 2,4 3,вода 1ый элюат 36,2 16,6 1,2 36,2 20,9 7,5 17,0 6,4 6,2ой элюат 7,2 - 84,2 37,4 - 75,2 - - 60, Очистка осветленного концентрата изофлавоноидов методом жидкостьжидкостной экстракции Альтернативным способом очистки осветленного концентрата изофлавоноидов является жидкость-жидкостная экстракция, основанная на различной растворимости белков, углеводов и изофлавоноидов в воде и органических растворителях. При исследовании очистки осветленного концентрата изофлавоноидов варьировали такие параметры, как: соотношение органическая фаза (этилацетат) – водная фаза (осветленный концентрат изофлавоноидов), температура, продолжительность процесса, рН исходного концентрата и введение модифицирующих добавок к этилацетату (ко-растворители – н-бутанол и изоамиловый спирт).

Таблица 4.

Очистка концентрата изофлавоноидов методом жидкость-жидкостной экстракции Объемное Содержание в органической фазе, Объемное Содержание в органической фазе, % соотношение % от исходного соотношение от исходного этилацетат/ Белковые Углеводы Изофла- этилацетат/ Белковые Углеводы Изофлан-бутанол вещества воноиды изоамиловый вещества воноиды спирт 10/0 39,9 17,8 89,4 10/0 39,9 17,8 89,8/2 25,7 3,4 95,8 9/1 22,7 7,4 89,6/4 17,2 0 97,9 7/3 19,1 0 96,5/5 21,2 0 96,8 5/5 23,9 0 91,4/6 20,4 1,3 97,1 3/7 28,8 2,5 91,2/8 27,4 2,5 97,5 1/9 42,5 3,7 88,0/10 49,8 1,4 93,0 0/10 45,3 1,6 90,Показано, что при проведении процесса в наилучших условиях (соотношение органической и водной фаз 3:1, экстракция смесью этилацетат/н-бутанол в соотношении 6:4 при комнатной температуре и рН исходного раствора 2,0) можно получить очищенный концентрат изофлавоноидов с содержанием основного вещества не менее 70 % (табл. 4).

Сравнение методов очистки осветленного концентрата изофлавоноидов Сравнение методов очистки осветленного концентрата изофлавоноидов показал, что оба метода позволяют получить фракцию изофлавоноидов с содержанием основного вещества не менее 70 %, однако более высокой степени очистки можно достичь методом ионного обмена при использовании в качестве сорбента карбоксиметилцеллюзозы. Тем не менее, с экономической точки зрения (затраты на сырье при проведении ионного обмена в 15 раз выше, а потери целевого продукта достигают 39 %) для промышленной реализации в данном случае более целесообразным является метод жидкость-жидкостной экстракции (табл. 5).

Таблица 5.

Очистка осветленного концентрата изофлавоноидов методами ионного обмена и жидкостьжидкостной экстракции Способ Подобранные условия Содержание Выход, % Затраты на очистки основного от сырье, руб./г вещества в исходного изофлавонодов очищенном концентрате, % Ионный Разбавление исходного концентрата в 5 раз, обмен динамический режим, 40 % карбоксиметилцеллюлозы по массе, рН 2,0, продолжительность сорбции – 1 час, первый 98 61 28элюент 1М NaCl (2 объема колонки), второй элюент 80 % этиловый спирт (2 объема колонки) Жидкость- Органическая фаза:водная фаза=3:1, жидкостная комнатная температура, рН 2,0, экстракция продолжительность экстракции 30 мин, состав 73 98 1органической фазы – этилацетат/н-бутанол 6:4.

Выделение и очистка соевых ингибиторов протеаз В соответствии с выбранной схемой обработки соевого шрота, ингибиторы протеаз вследствие невысоких молекулярных масс накапливаются главным образом в пермеате, образующемся на стадии ультрафильтрации белкового экстракта. Поскольку содержание ингибиторов в этом полупродукте невелико, что усложняет процедуру их выделения и очистки, необходимым этапом является повышение их содержания, что может быть достигнуто проведением рецикла по пермеату. Однако при осуществлении рециклов возможно накопление токсичных веществ в белковых экстрактах, и, как следствие, в изоляте, поэтому необходим подбор числа стадий возврата пермеата на стадию экстракции белковых веществ. В результате экспериментов было установлено, что максимально возможное количество рециклов без образования токсичных продуктов равно трем, при этом увеличение содержания ингибиторов в пермеатах подтверждается результатами гель-хроматографии (табл. 6).

Фракционирование ингибиторов протеаз ультрафильтрацией Фракция, обогащенная ингибиторами протеаз, после стадии ультрафильтрации белкового экстракта, содержит смесь ингибиторов Кунитца и Баумана-Бирк (табл. 5).

Основываясь на различии в молекулярных массах (для ингибиторов Кунитца 20-кДа, для ингибиторов Баумана-Бирк – 8-13 кДа) и различной растворимости ингибиторов в органических растворителях, для их фракционирования и очистки была предложена схема, предусматривающая: разделение ингибиторов ультрафильтрацией, очистку получаемых фракций диафильтрацией, осаждение ингибиторов органическими растворителями с их последующим переосаждением (рис. 3).

Ультрафильтрация при использовании мембраны с отсекаемой молекулярной массой 20 кДа не позволяет разделить ингибиторы полностью. Для достижения необходимой полноты разделения необходимо проведение двукратной диафильтрации, при этом содержание ингибитора Баумана-Бирк в концентрате снижается до незначительного количества (табл. 7).

Таблица 6.

Состав полупродуктов, получаемых при рециркуляции пермеата Анализируемые Белковые Низкомолекулярная Общие Снижение Снижение Острая полупродукты вещества, фракция, % от углеводы, активности активности токсичность г/л общего содержания г/л трипсина, % химотрип- изолята белковых веществ сина, % Исходная экстракция Экстракт 14,0±0,43 8,91 10,6±0,36 27,0 34,9 не токсичен Концентрат 30,1±0,91 8,63 13,0±0,42 17,3 24,Пермеат 2,9±0,09 12,27 9,2±0,31 41,8 49,Первый рецикл Экстракт 17,2±0,52 14,90 18,5±0,49 32,6 43,2 не токсичен Концентрат 33,8±0,98 8,73 20,5±0,64 21,9 30,Пермеат 4,1±0,10 16,09 15,5±0,46 52,8 59,Второй рецикл Экстракт 21,1±0,62 19,56 29,8±0,78 39,8 52,3 не токсичен Концентрат 37,3±1,20 9,07 28,4±0,77 25,5 36,Пермеат 5,9±0,15 18,21 22,7±0,71 70,3 67,Третий рецикл Экстракт 24,6±0,71 26,24 38,5±1,31 46,0 61,0 не токсичен Концентрат 40,6±1,42 11,01 36,4±1,28 30,4 42,Пермеат 7,0±0,19 20,70 28,2±0,81 78,6 74,Четвертый рецикл Экстракт 28,2±0,82 34,62 48,7±1,42 52,4 69,8 токсичен Концентрат 44,3±1,53 13,11 45,1±1,21 36,0 48,Пермеат 8,4±0,23 23,04 35,7±1,11 85,1 81,Фракция, обогащенная Концентрат и Диафильтрация Ультрафильтрация ингибиторами протеаз пермеат Осаждение Очищенные Очищенные фракции Переосаждение органическими концентрат ингибиторов протеаз растворителями и пермеат Рис.3. Блок-схема получения ингибиторов протеаз из обогащенной ими фракции Получение очищенных препаратов ингибиторов протеаз Выделение ингибиторов протеаз из соответствующих фракций может быть осуществлено осаждением органическими растворителями, причем в случае ингибитора Кунитца исследует использовать этиловый спирт, а ингибитора БауманаБирк – ацетон. Поскольку при очистке концентрата изофлавоноидов также получается фракция ингибиторов Баумана-Бирк, перед осаждением соответствующие фракции следует объединить.

При подборе оптимальных условий осаждения ингибиторов протеаз варьировали гидромодуль этанола и ацетона, а также изучали динамику осаждения.

Удовлетворительная степень осаждения (85 %) достигается при продолжительности процесса 5 часов.

Полученные субстанции содержали примеси (доля сырого протеина не превышала 80 и 35 % в случае ингибиторов Кунитца и Баумана-Бирк, соответственно), для удаления которых были предложены дополнительные стадии диафильтрации и переосаждения.

Таблица 7.

Состав полупродуктов, получаемых при ультрафильтрации и диафильтрации (УПМ-20) Анализируемые Общий белок по Низкомолекулярная Общие Снижение Снижение полупродукты Лоури, г/л фракция, % от углеводы, активности активности общего содержания г/л трипсина, химотрипсина, белковых веществ % % Исходный пермеат 7,04 20,70 28,23 75,6 88,Ультрафильтрация Концентрат 17,4±0,51 13,8±0,41 36,1±0,71 42,5 57,Пермеат 3,4±0,12 50,2±0,43 25,4±0,46 30,0 70,Диафильтрация - Концентрат 14,6±0,46 9,3±0,23 23,1±0,62 37,1 22,Диафильтрат 2,8±0,11 83,9±0,45 12,8±0,72 2,0 33,Диафильтрация - Концентрат 12,8±0,32 7,9±0,21 11,6±0,53 32,9 13,Диафильтрат 2,0±0,07 86,2±0,52 11,7±0,61 4,7 11,Диафильтрация - Концентрат 11,1±0,29 5,5±0,17 6,4±0,41 29,0 9,Диафильтрат 1,2±0,06 89,9±0,57 5,1±0,32 2,5 3,В результате провеТаблица 8.

Осаждение и очистка ингибиторов протеаз денных исследований устаУсловия Фракция Содержание, % от новлено, что для очистки стадии исходного ингибиторов Кунитца Ингибиторы Ингибиторы достаточно переосаждения, Кунитца Бауманав то время как для Бирк Осаждение ингибиторов Кунитца ингибиторов Баумана-Бирк Этанол Осадок 88 необходимы предвари2:1, 5 Надосадочная 12 тельная диафильтрация часов жидкость объединенной фракции Переосаждение ингибиторов Кунитца Этанол Осадок 76 ингибиторов и последующее 2:1, 5 Надосадочная 12 переосаждение (табл. 8).

часов жидкость Полученные очищенные Диафильтрация объединенной фракции ингибиторов Баумана-Бирк фракции с содержанием Вода 1:1, Очищенная фракция - 1мембрана Диафильтрат - сырого протеина не менее УПМ-89 % для ингибиторов Осаждение ингибиторов Баумана-Бирк Баумана-Бирк и 95 % для Ацетон Осадок - 1:1, 5 Надосадочная - 10 ингибиторов Кунитца, не часов жидкость обладают острой токсичПереосаждение ингибиторов Баумана-Бирк ностью, а их ингибирующая Ацетон Осадок - активность соответствует 1:1, 5 Надосадочная - часов жидкость известным аналогам.

Технико-экономическая оценка разработанной технологии получения биологически активных веществ из соевого шрота На основании проведенных исследований разработана принципиальная схема комплексной переработки соевого шрота, включающая следующие основные стадии:

• экстракцию изофлавоноидов из соевого шрота этиловым спиртом;

• регенерацию этанола и последующую очистку концентрата изофлавоноидов жидкость-жидкостной экстракцией;

• экстракцию белковых веществ из твердого остатка, образовавшегося на стадии спиртовой экстракции;

• получение очищенных фракций высокомолекулярных соевых белков, ингибиторов Кунитца и Баумана-Бирк ультрафильтрацией и диафильтрацией;

• выделение изолята белка и ингибиторов протеаз осаждением из соответствующих фракций (рис. 4).

Соевый шрот Регенерация экстрагента, осаждение Очищенный Экстракт Экстракция этиловым ингибитора Баумана- концентрат изофлавоноидов спиртом, сепарация Бирк, жидкостьизофлавоноидов жидкостная экстракция Твердый остаток Кислотная экстракция, Ультрафильтрация, Фракция Ингибиторы ультрафильтрация, диафильтрация, ингибиторов Кунитца диафильтрация, осаждение, протеаз осаждение переосаждение Ингибиторы Баумана-Бирк Изолят белка Рис. 4. Принципиальная блок-схема переработки соевого шрота с получением изолята белка, соевых изофлавоноидов и ингибиторов протеаз Таблица 9.

В рамках разраТехнико-экономические показатели комплексной переработки батываемой технолосоевого шрота (5 000 тонн/год) с получением биологически активных гии образуются жидкие веществ (изолята белка, концентрата изофлавоноидов и ингибиторов отходы, представляюпротеаз) № Единица Значение по- щие собой диафильтрап/п Наименование показателя измерения казателей ты со стадий очистки 1 Капитальные затраты тыс руб 150 1целевых продуктов, а Полная себестоимость также кубовые остатки 2 тыс руб 851 9годового выпуска после отгонки этанола Себестоимость единицы продукции и ацетона. Для снитыс. руб/м- концентрат изофлавоноидов 538,тыс. руб/т жения нагрузки на 3 - изолят белка 43,тыс. руб/т - ингибиторы Кунитца 318,очистные сооружения тыс. руб/т - ингибиторы Баумана-Бирк 574,была исследована Стоимость годового выпуска пропринципиальная воз4 тыс. руб/т 1 335 1дукции можность биодеграда5 Прибыль годовая тыс руб 483 9Рентабельность ции данных стоков 6 а) производственных фондов % 49,культурами микроорб) продукции % 36,ганизмов на примере Срок окупаемости 7 год 1,Candida tropicalis и капитальных вложений Endomycopsis fibuligera.

Полученные результаты (степень усвоения субстрата не менее 50 %, содержание сырого протеина в биомассе до 32 %) свидетельствуют о возможности переработки стоков микробиологическим путем, в том числе и в биомассу кормового назначения.

Технико-экономическая оценка разработанной технологии комплексной переработки соевого шрота мощностью 5 000 тонн/год по сырью (табл. 9) показала, что внедрение разработанной технологии позволит получить до 480 млн. руб./год прибыли при сроке окупаемости, не превышающем 2 года.

II. Исследование функциональной активности соевых изофлавоноидов и ингибиторов протеаз Анализ литературы показывает, что соевые изофлавоноиды и ингибиторы протеаз обладают антиканцерогенным, антиоксидантным, противовоспалительным, радиопротекторным и др. действием [Dittmann, K.H., 1998; Messina, M., 2002]. Также анализ их строения позволяет предположить, что их функциональная активность может проявляться в повышении выживаемости клеток при действии на них жестким ультрафиолетом или пероксидом водорода, кроме того, изофлавоноиды могут выступать в роли модификаторов ферментов.

Влияние ингибиторов протеаз и изофлавоноидов на выживаемость клеток микроорганизмов Исследование влияния соевых ингибиторов протеаз и изофлавоноидов на выживаемость дрожжей осуществляли на примере культуры Saccharomyces cerevisiae при воздействии на нее жестким ультрафиолетовым излучением ( = 250 нм) и пероксидом водорода.

Таблица 10.

Влияние соевых изофлавоноидов и ингибиторов протеаз на выживаемость клеток дрожжей Условия эксперимента Выживаемость, Условия эксперимента Выживаемость, % % Концентрация Продолжительность Концентрация Концентрация защитного облучения, с защитного пероксида агента, мг/л агента, мг/л водорода, % Контроль 0 0 100 0 0 10 1,0 63,7±2,11 0 0,5 43,5±1,0 2,5 27,0±1,08 0 1,5 12,0±1,Изофлавоноиды 10 15 57,1±1,86 10 0,5 76,5±2,10 30 20,6±1,45 10 1,5 54,3±2,50 15 73,6±1,84 50 0,5 85,9±2,50 30 30,4±1,41 50 1,5 65,3±1,Ингибиторы Кунитца 100 15 71,5±2,04 100 0,5 77,6±1,100 30 22,3±1,03 100 1,5 55,0±1,1000 15 80,1±1,63 1000 0,5 89,5±1,1000 30 34,6±1,14 1000 1,5 79,1±1,Ингибиторы Баумана-Бирк 100 15 78,1±2,87 100 0,5 79,4±1,100 30 42,1±2,13 100 1,5 51,8±1,1000 15 85,6±1,69 1000 0,5 87,1±1,1000 30 57,2±1,74 1000 1,5 66,2±1,Эксперимент выполняли следующим образом: проводили предынкубацию ингибиторов протеаз или изофлавоноидов (в концентрациях 0,01-1 г/л и 5-50 мг/л, соответственно) с суточной культурой дрожжей (плотность популяции 107-1млн.кл./мл), затем воздействовали или ультрафиолетовым излучением в течение 0-с, или пероксидом водорода в концентрации 0,1-2,5 %.

Результаты исследования (табл. 10) показали, что введение в культуру ингибиторов протеаз и изофлавоноидов во всем диапазоне параметров (концентрация ингибиторов протеаз 0,01-1,00 г/л, изофлавоноидов - 5-50 мг/л, пероксида водорода – 0,1-2,5 %, время облучения 0-30 с) повышает выживаемость дрожжей в 1,2-4,7 раз.

Полученные результаты могут быть обусловлены антиоксидантным действием изофлавоноидов и ингибиторов протеаз (полученные соединения замедляют скорость аутоокисления адреналина на 10-25 %).

Влияние изофлавоноидов на каталитическую активность промышленных гидролитических ферментных препаратов Таблица 11. Анализ литературы и Влияние концентрации изофлавоноидов и продолжительности химической структуры изопредынкубации на степень гидролиза субстратов флавоноидов показывает, что Фермент/ Концентра- Предынкубация Предынкубация они могут выступать в роли субстрат ция с ферментным с субстратом модификаторов ферментов.

изофлаво- препаратом ноидов, мин. Степень мин. Степень Влияние изофлавоноидов на моль/л*105 гидролиза, гидролиза, каталитическую активность % % ферментов оценивали на Трипсин/ 0 0 24,8±1,14 0 24,8±1,казеинат примере таких промышлен2,4 0 19,8±1,23 0 19,8±1,натрия 23,6 0 15,7±1,04 0 15,7±1,ных гидролитических фер23,6 10 8,1±0,45 10 16,4±0,ментных препаратов, как:

23,6 20 4,5±0,23 20 23,0±0,трипсин, рибонуклеаза, пеп23,6 30 2,6±0,25 30 23,9±1,син, сычужный фермент, РНК-аза/ 0 0 28,9±1,35 0 28,9±1,дрожжевая 2,4 0 38,8±1,47 0 38,8±1,панкреатин (рассматривался РНК 23,6 0 51,7±1,63 0 51,7±1,в качестве источника липа23,6 10 24,0±1,23 10 32,8±1,зы). Критерием эффектив23,6 20 11,4±1,01 20 60,0±1,ности процесса для трипсина, 23,6 30 8,3±0,69 30 61,0±1,Панкреатин/ 0 0 10,6±0,86 0 10,6±0,РНКазы и панкреатина являяоливковое 2,4 0 14,1±0,78 0 14,1±0,лась степень гидролиза субмасло 23,6 0 25,9±0,74 0 25,9±0,стратов (казеината натия, 23,6 10 23,5±1,51 10 28,4±1,дрожжевой РНК, оливкового 23,6 20 24,7±1,78 20 42,4±2,23,6 30 23,5±1,64 30 42,4±2,масла), для пепсина и сычужного фермента – скорость створаживания молока.

В ходе эксперимента варьировали такие параметры, как: концентрация изофлавоноидов, продолжительность предынкубации изофлавоноидов с ферментным препаратом или субстратом, а также оценивали влияние изофлавоноидов на температурный и рН-оптимумы каталитической активности ферментных препаратов.

Влияние изофлавоноидов на каталитическую активность ферментных препаратов В ходе проведенных экспериментов установлено, при добавлении в реакционную среду изофлавоноидов каталитическая активность РНК-азы, панкретина, сычужного фермента и пепсина повышается, в то время как трипсина – снижается (табл. 11, 12).

Также показано, что предынкубация оказывает заметный эффект на степень гидролиза (скорость створаживания) соответствующих субстратов, причем максимальный эффект достигается для одних систем в случае предынкубации изофлавоноидов с субстратом (дрожжевая РНК, оливковое масло), для других – изофлавоноидов с ферментом (трипсин, пепсин, сычужный фермент).

Влияние изофлавоноидов на температурные и рН-зависимости каталитической активности ферментных препаратов Помимо влияния на каталитическую активность, изофлавоноиды также оказывают действие на температурные и рН-зависимости каталитической активности промышленных ферментных препаратов. При этом установлено, что для РНК-азы и трипсина происходит смещение температурного оптимума в сторону более высоких температур, для РНК-азы также наблюдается смещение значения оптимума рН в нейтральную область. При этом для РНК-азы и панкреатина область оптимальных значений расширяется, для трипсина – сужается (табл. 13).

Полученные результаТаблица 12.

ты могут быть обусловлены Влияние концентрации изофлавоноидов и продолжительности предынкубации на активность сычужного фермента и пепсина образованием водородных Фермент/ Концентра- Предынкубация Предынкубация связей и гидрофобными субстрат ция с ферментным с субстратом взаимодействиями в системах изофлаво- препаратом изофлавоноиды/фермент или ноидов, мин. Активность, мин. Активность, моль/л*1% от % от изофлавоноиды/субстрат, что контроля контроля подтверждено результатами Пепсин/ 0 0 100 0 1УФ- и ИК-спектрометрии.

молоко 11,8 0 121,9±2,45 0 121,9±2,23,6 0 111±3,02 0 111±3,02 Сходство строения изофла11,8 5 127,7±2,78 5 102,0±1,воноидов с другими модифи11,8 15 95,5±2,11 15 95,8±2,каторами ферментов – алки11,8 30 95,9±2,43 30 94,8±2,локсибензолами, также споСычужный 0 0 100 0 1фермент/ собными образовывать водо11,8 0 110,2±1,78 0 110,2±1,молоко 23,6 0 101,8±1,45 0 101,8±1,родные связи и гидрофобные 11,8 10 114,6±1,63 10 100,6±2,взаимодействия с фермента11,8 20 102,1±1,79 20 103,8±1,ми и субстратами, позволяет 11,8 30 98,0±2,04 30 98,2±1,предположить схожесть механизмов действия обеих групп соединений. Эта гипотеза подтверждается результатами апробации кинетической модели взаимодействия [Красноштанова А.А., 2009], разработанной для алкилоксибензолов, применительно к изофлавоноидам. Показано, что модель, разработанная для алкиТаблица 13.

локсибезолов, адекватно описывает Влияние изофлавоноидов на температурный и рНповедение системы в присутствии зависимости каталитической активности ферментных препаратов изофлавоноидов.

Ферментативный Условия Оптимальные Таким образом, показано, что процесс условия соевые изофлавоноиды и Т, 0С рН ингибиторы протеаз являются Гидролиз без изофлавоноидов 65 7,соединениями, обладающими высодрожжевой РНК с изофлавоноидами 70* 7,кой биологической активностью:

Гидролиз без изофлавоноидов 40 казеината натрия с изофлавоноидами 45** 8** повышают выживаемость клеток Гидролиз без изофлавоноидов 37 микроорганизмов при действии на оливкового с изофлавоноидами 37* 7* них жесткого ультрафиолетового масла излучения и пероксида водорода (на Створаживание без изофлавоноидов 35 5,молока с изофлавоноидами 35 5,примере культуры Saccharomyces пепсином cerevisiae). Кроме того, изоСтвораживание без изофлавоноидов 35 5,флавоноиды оказывают влияние на молока с изофлавоноидами 35 5,каталитическую активность про- сычужным ферментом мышленных ферментов (на примере * - расширение, ** - сужение РНКазы, трипсина, панкреатина, пепсина и сычужного фермента).

ВЫВОДЫ 1. Разработаны основы технологии переработки соевого шрота с получением изолята белка сои, изофлавоноидов и ингибиторов протеаз, включающей стадии экстракции, ультрафильтрации, диафильтрации, осаждения и переосаждения.

2. Проведен сравнительный анализ очистки фракции изофлавоноидов ионным обменом и жидкость-жидкостной экстракцией по технологическим и экономическим показателям. Показана предпочтительность жидкость-жидкостной экстракции (соотношение органической (этилацетат/н-бутанол 6:4) и водной фаз 3:1, рН 2,0, продолжительность 30 минут, температура 25 С), позволяющей получить фракцию изофлавоноидов с содержанием основного вещества 73 % при затратах на сырье не более 195 руб./г изофлавоноидов.

3. Подобраны условия выделения ингибиторов протеаз из отходов производства изолята белка сои, включающего стадии мембранного разделения, диафильтрации, осаждения и переосаждения из водно-спиртовых и водно-ацетоновых растворов.

Получены фракция ингибиторов Кунитца, содержащая 95 % сырого протеина (1 мг ингибирует 1,5 мг трипсина с активностью 300 ед. TAME/мг фермента); фракция ингибиторов Баумана-Бирк, содержащая 89 % сырого протеина (1 мг ингибирует 0,35 мг трипсина с активностью 300 ед. TAME/мг фермента и 0,7 мг химотрипсина с активностью 40 ед. BTEE/мг фермента).

4. Показано, что ингибиторы протеаз и изофлавоноиды повышают выживаемость клеток микроорганизмов (на примере дрожжей Saccharomyces cerevisiae) при воздействии на них жестким ультрафиолетом ( = 250 нм, 0-30 с) и пероксидом водорода (0,1-1,5 %) в 1,2-4,7 раза.

5. Исследовано влияние изофлавоноидов на каталитическую активность промышленных ферментных препаратов (на примере трипсина, РНКазы, панкреатина, пепсина и сычужного фермента). Подтверждено, что изофлавоноиды являются модификаторами ферментов, при этом степень гидролиза субстратов в случае РНКазы и панкреатина возрастает в 1,5-4 раза, в случае трипсина снижается в 2 раза, активность молокосвертывающих ферментов повышается на 15-30 %. Установлено, что влияние изофлавоноидов на каталитическую активность ферментов обусловлено образованием водородных связей и гидрофобными взаимодействиями.

6. Проведена ориентировочная технико-экономическая оценка реализации разработанной технологии. При расчетной мощности производства 5 000 тонн/год по соевому шроту прибыль составляет не менее 480 млн. руб./год при сроке окупаемости, не превышающем 2 года.

Основные результаты диссертации изложены в следующих работах:

1. Хабибулина, Н.В. Зависимость биологических эффектов от химической структуры флавоноидов / Насибов Р.С., Хабибулина Н.В., Козлов К.Г. // Вестник Уральской медицинской академической науки. 2010. №2/1. С. 260.

2. Хабибулина Н.В., Красноштанова А.А. Заявка на патент «Способ защиты дрожжей Saccharomyces cerevisiae от стрессорных воздействий различной природы» №2012106867, приоритет от 27.02.3. Хабибулина, Н.В. Изучение кинетики накопления и инактивации ингибиторов трипсина и химотрипсина из белого лепестка. Разработка технологии получения соевых ингибиторов трипсина и химотрипсина / Н.В. Хабибулина // IV Международный конгресс молодых ученых по химии и химической технологии. Москва. 2008. Том XXII, №13. С. 76-80.

4. Хабибулина, Н.В. Получение ингибиторов трипсина и химотрипсина из отходов производства соевого изолята / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // 6-я Международная конференция «Сотрудничество для решения проблемы отходов».

Харьков. 2009. С. 149-151.

5. Хабибулина, Н.В. Разработка научных основ технологии получения соевых ингибиторов трипсина и химотрипсина / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // V Московский Международный конгресс «Биотехнология: состояние и перспективы развития». 2009 г. ч.1. С. 411 – 412.

6. Хабибулина, Н.В. Исследование процесса получения ингибиторов пищеварительных ферментов на основе отходов производства изолята белка сои / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // 3-я Конференция молодых ученых и специалистов «Обеспечение качества и безопасности продукции агропромышленного комплекса в современных социально-экономических условиях». Москва. 2009 г. С.236-238.

7. Хабибулина, Н.В. Разработка научных основ технологии получения соевых ингибиторов трипсина и химотрипсина из отходов производства изолята белка сои / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // 15-я международная выставка химической промышленности и науки «ХИМИЯ-2009», Конкурс проектов молодых ученых. Москва. 2009 г. С. 40-41.

8. Хабибулина, Н.В. Разработка научных основ технологии получения соевых ингибиторов трипсина и химотрипсина из отходов производства изолята белка сои / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // I-я Международная конференция Российского Химического Общества им. Д.И.Менделеева «Ресурсо- и энергосберегающие технологии в химической и нефтехимической промышленности». Москва. 2009 г. С. 71-72.

9. Хабибулина, Н.В. Исследование процесса очистки экстракта изофлавоноидов от белковых веществ / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова, В.И. Панфилов // Химическая промышленность сегодня. – 2012. – № 5. – с. 34-38.

10. Хабибулина, Н.В. Изучение процесса получения и очистки фракции соевых изофлавоноидов совместно с изолятом белка сои / Н.В. Хабибулина // VI Международный конгресс молодых ученых по химии и химической технологии. Москва.

2010. Том XXIV, №11(116). С. 46-50.

11. Хабибулина, Н.В. Изучение эффективности применения соевых ингибиторов трипсина и химотрипсина в качестве антистрессовых агентов / Н.В. Хабибулина, А.А.

Красноштанова // XIII Международная конференция молодых ученых, студентов и аспирантов «Синтез, исследование свойств, модификация и переработка высокомолекулярных соединений – V Кирпичниковские чтения». Казань. 2009. С. 365.

12. Хабибулина Н.В. Исследование процесса получения соевых изофлавоноидов из отходов производства изолята белка сои / Н.В. Хабибулина, О.Ю. Костина, К.С. Закиева, А.А. Красноштанова // Московская Международная научно-практическая конференция «Биотехнология: экология крупных городов». Москва. 2010. С. 241-242.

13. Хабибулина, Н.В. Исследование эффективности применения соевых изофлавоноидов в качестве антистрессорных агентов / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // VIII Международная конференция «Биоантиоксидант». Москва. 2010. С. 486-487.

14. Хабибулина, Н.В. Разработка научных основ технологии совместного получения изофлавоноидов, изолята белка и ингибиторов протеолитических ферментов из белого лепестка / Н.В. Хабибулина, А.А. Красноштанова // VI Московский Международный Конгресс «Биотехнология: состояние и перспективы развития». Москва. 2011. ч.1. С. 329-330.






© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.