WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!


На правах рукописи

АНАНЬКО Григорий Григорьевич

БИОНЕМАТИЦИД НА ОСНОВЕ ГРИБА-ГЕЛЬМИНТОФАГА DUDDINGTONIA FLAGRANS F-882

03.01.06 – биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата биологических наук

Кольцово - 2012

Работа выполнена в Федеральном бюджетном учреждении науки Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Научный руководитель доктор биологических наук, профессор Теплякова Тамара Владимировна

Официальные оппоненты:

Аликин Юрий Серафимович, доктор биологических наук, Институт медицинской биотехнологии ФБУН Государственного научного центра вирусологии и биотехнологии «Вектор», старший научный сотрудник лаборатории нуклеиновых кислот и рекомбинантных белков.

Ашмарина Людмила Филипповна, доктор сельскохозяйственных наук, Государственное научное учреждение Сибирское отделение Россельхозакадемии, начальник отдела земледелия, растениеводства и селекции Ведущая организация Новосибирский государственный аграрный университет, г. Новосибирск

Защита состоится «21» декабря 2012 г. в 9-00 часов на заседании диссертационного совета Д 208.020.01 при ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» по адресу: р.п. Кольцово, Новосибирского района, Новосибирской области, 630559; тел: (383) 336-74-

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Автореферат разослан «16» ноября 2012 г.

Ученый секретарь диссертационного совета доктор биологических наук, профессор Трошкова Галина Павловна



Актуальность исследования. Защита сельскохозяйственных культур от вредителей и болезней является неотъемлемой частью современного сельскохозяйственного производства. Известно свыше 3000 видов фитопаразитических нематод, поражающих практически все виды культурных растений, что приводит к ежегодным потерям 10 % мировой растительной продукции или около 120 млрд. долларов в денежном выражении. В 50-70-х гг. ХХ века численность нематод, как правило, контролировали с помощью химических нематицидов. В последующие годы в полной мере выявились такие недостатки химических препаратов, как токсичность для человека и животных и снижение эффективности вследствие возникновения резистентных рас гельминтов. В развитых странах ряд химических препаратов был запрещен к использованию, что привело к ограничению ассортимента разрешенных нематицидов. Возникла настоятельная необходимость в создании альтернативных нетоксичных средств защиты растений.

Замена химических нематицидов биопрепаратами позволяет получать экологически чистую продукцию, снизить степень загрязнения окружающей среды, успешно бороться с фитопаразитическими нематодами, резистентными к химическим нематицидам. Но ассортимент бионематицидов на сегодняшний день крайне ограничен, а технология их производства далека от совершенства.

Поэтому повышение конкурентоспособности биопрепаратов на основе совершенствования технологии их производства и применения остается актуальной задачей (Монастырский О.А., 2006). В 60-80-х гг. прошлого века в ряде регионов Советского Союза предпринимались попытки налаживания производства бионематицидов на основе грибов-гельминтофагов (Теплякова Т.В., 1999). Известные технологии были рассчитаны на производство небольших партий грибных нематицидов в условиях биолабораторий, располагавших ограниченным набором технологического оборудования. Однако с современной точки зрения эти технологии обладают рядом недостатков: большая продолжительность производственного цикла (4–недель), высокие затраты ручного труда, колебания качества различных партий биопрепарата из-за нестандартности субстратов и контаминации посторонними микроорганизмами, трудности масштабирования применяемых технологий.

В качестве перспективной основы для получения бионематицида был выбран штамм хищного гриба Duddingtonia flagrans F-882, выделенный ранее (патент РФ 2253671, 2004). Последнее десятилетие D. flagrans активно изучался за рубежом с точки зрения его применения для профилактики гельминтозов у животных и был признан перспективным в этом плане (Paraud C. et al., 2005).

Проведенные исследования подтвердили возможность использования D. flagrans в ветеринарии: было показано, что он эффективен против стронгилят (Elaphostrongylus panticola) желудочно-кишечного тракта маралов (Ефремова Е.А., Теплякова Т.В., Ананько Г.Г., 2007). Но возможности его применения для контроля фитопаразитических нематод ранее не исследовались. Имеющаяся в литературе информация содержит отрывочные данные по физиологии этого гриба. Основное содержание представленной работы составляют результаты исследования переходных процессов в жизненном цикле D. flagrans и описание разработанных на основе этих данных новых способов получения и применения различных препаративных форм.

Цель и задачи исследования. Целью нашего исследования было создание технологии производства и применения биопрепарата на основе нематофагового гриба D. flagrans F-882, предназначенного для регулирования численности фитопаразитических нематод. В процессе исследования решали следующие задачи.

1. Выявление основных факторов, контролирующих жизненный цикл D. flagrans.

2. Создание более эффективных, по сравнению с существующими, способов получения споросодержащих препаративных форм на основе хищного гриба по таким показателям, как продолжительность производственного цикла и возможность масштабирования процесса.

3. Проведение испытаний бионематицида против фитопаразитических нематод.

4. Оптимизация процесса применения биопрепарата с целью снижения его расхода при сохранении эффективности.

Научная новизна. Впервые показано, что в глубинной культуре D. flagrans формирование хламидоспор индуцируется разбавлением среды водой в 2 и более раз. Впервые установлено, что для индукции процесса формирования ловушек у этого гриба необходимо снижение концентрации источников азота и углерода ниже критического уровня, а также определены критические значения содержания таких веществ, как питательная среда МК (на основе мелассы и кукурузного экстракта), сахароза и триптон, полностью ингибирующие процесс.

Предложено три новых способа получения бионематицида на основе хламидоспор D. flagrans. Один из способов впервые позволяет реализовать процесс получения хламидоспор в биореакторе, при этом процесс спорообразования индуцируется стрессом при разбавлении водой. Второй способ позволяет получать препарат с высоким содержанием хламидоспор (4106 спор/г) на частицах вспученного вермикулита в поверхностной культуре (патент РФ 2366178, 2009). Третий оригинальный способ сочетает технологии поверхностного и глубинного культивирования, позволяя параллельно осуществлять процессы созревания хламидоспор и высушивания препарата.

Все три указанных способа позволяют снизить затраты времени на производственный цикл в 4-6 раз по сравнению с известными способами выращивания хищных грибов на твердых органических носителях. Кроме того, первый и третий способы открывают возможности для эффективного масштабирования процесса, так как здесь количество производимой продукции зависит от объема сосуда, а не от площади.

Впервые продемонстрирована нематофаговая активность бионематицида на основе D. flagrans в отношении галловой, цистообразующей и стеблевой нематод, а также ростостимулирующий эффект в отношении таких растений, как бегония, огурец, картофель и земляника.

Впервые показано пролонгирование нематофагового и ростостимулирующего действия препарата на 3 года после однократного применения на огурцах и землянике.

Практическая значимость. Предложенный спектр технологий производства бионематицида может быть адаптирован к различным техническим возможностям производителя, что подтверждается разработкой технологической схемы получения жидкой формы препарата на заводе ООО ПО «Сиббиофарм». Экспериментальная партия биопрепарата объемом 5 тонн, наработанная там же, прошла успешные производственные испытания в ОАО «Суховский» Кемеровской области, по результатам которых был составлен акт испытаний. В плане практического применения грибных нематицидов важно то, что за счет оптимизации сроков внесения и добавок нитрата аммония (из расчета 30 г/м2) можно снизить расход препарата в 4-8 раз при сохранении его эффективности.

Положения, выносимые на защиту. Формирование хламидоспор в мицелии глубинной культуры D. flagrans индуцируется резким снижением концентрации питательных веществ при разбавлении среды водой. Для индукции процесса образования ловушек у этого гриба необходимо, чтобы концентрация источников азота и углерода в среде была ниже определенного критического уровня: для среды МК, сахарозы и триптона критические значения составляют, соответственно, 45 %, 1,6 % и 1,0 %.

Новый способ получения препарата на основе хламидоспор D. flagrans в биореакторе, где процесс спорообразования инициируется разбавлением среды водой, позволяет получать (1–2)105 хламидоспор/мл глубинной культуры.

Ускоренный способ получения препарата с высоким содержанием хламидоспор D. flagrans (4106 хламидоспор/г сухого препарата), с использованием добавок растворимых питательных веществ и вспученного вермикулита в качестве носителя, позволяет сократить продолжительность производственного цикла в 4-6 раз по сравнению с ранее известными способами выращивания хищных грибов на твердых органических носителях.

Оригинальный способ получения хламидоспор D. flagrans, сочетающий технологии поверхностного и глубинного культивирования, открывает возможности для эффективного масштабирования процесса.

Экспериментальная установка, созданная для его реализации, позволяет параллельно осуществить процесс получения хламидоспор на частицах вспученного вермикулита и высушивание препарата, урожай составляет 41хламидоспор/г сухого препарата.





Биопрепарат на основе D. flagrans:

- проявляет нематицидное действие в отношении галловой Meloidogyne incognita (снижение зараженности растений до 0,5 балла), цистообразующей Globodera rostochiensis (снижение зараженности на 70 %) и стеблевой Anguillulina dipsaci (снижение численности в 17 раз) нематод;

- обладает ростостимулирующим действием в отношении таких культур, как бегония королевская (Begonia rex), огурец (Cucumis sativus), картофель (Solanum tuberosum) и земляника садовая (Fragaria ananassa), выражающийся в увеличении длины корней и площади листовой поверхности на 15–45 % и увеличении урожая плодов на 10–53 %;

- пролонгирует нематицидный и ростостимулирующий эффекты на года после однократного применения на растениях огурца и земляники.

Внесение биопрепарата до наступления пиковой численности нематод, также как и применение стимулирующих добавок (нитрата аммония) позволяет снизить расход грибного нематицида в 4–8 раз, при сохранении его эффективности.

Апробация работы. Результаты работы представлены на международной научно-практической конференции «Биологическая защита растений, перспективы и роль в фитосанитарном оздоровлении агроценозов и получении экологически безопасной сельскохозяйственной продукции» в Краснодаре (2008 г.); на 5 съезде общества биотехнологов России в Москве (2008 г.); на международной конференции «Биология – наука XXI века» в Москве (2012 г.);

на 3 съезде микологов России в Москве (2012 г.). Имеется патент на способ получения препарата на основе микроскопического гриба для борьбы с паразитическими нематодами растений и животных (патент РФ 2366178, 2009).

Проведение исследований было поддержано грантом CRDF (RBO - 11029).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 14 работ, в том числе патент и 6 статей, из них 4 - в журналах, рекомендованных ВАК РФ.

Объем и структура диссертации Диссертация состоит из введения, обзора литературы (1-я глава), описания материалов и методов (2-я глава), изложения результатов и их обсуждения (3-5-я главы), заключения и выводов, списка цитируемой литературы и приложения. Работа изложена на 149 страницах, включая список литературы на 16 страницах и приложения на 15 страницах, иллюстрирована рисунками и 23 таблицами. Список цитированной литературы включает 1источника, в том числе 125 - иностранных авторов.

Вклад автора. Основные результаты получены автором самостоятельно.

Разработка технологической схемы и наработка крупной партии жидкого препарата для производственных испытаний проводилась совместно с Т.В. Тепляковой и сотрудниками ООО ПО «Сиббиофарм». Испытания препаратов проводились совместно с Т.В. Тепляковой, сотрудниками ГНУ ВНИИ биологической защиты растений (г. Краснодар) и сотрудниками ФБГУН Сибирского ботанического сада СО РАН (г. Новосибирск).

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ Объекты исследования: штамм гриба-гельминтофага Duddingtonia flagrans F-882, выделенный Т.В. Тепляковой, депонирован в «Коллекции бактерий, бактериофагов и грибов ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» и защищен патентом РФ (№ 2253671, 2004); тест-объекты – свободноживущая нематода-бактериофаг (Panagrellus redivivus), галловая (Meloidogyne incognita), цистообразующая золотистая картофельная (Globodera rostochiensis) и стеблевая (Ditylenchus dipsaci) нематоды. Выделение нематод из почвы производили модифицированным методом Бермана (Ruess L., 1995).

Вспученный вермикулит использовали в качестве носителя (ООО "Ангарский вермикулит", г. Красноярск).

Культивирование D. flagrans. Посевной мицелий получали в 0,75 л колбах на круговой качалке при 180 об./мин, температуре 28С на питательной среде МК, содержащей мелассу и кукурузный экстракт (патент РФ № 2253671, 2004).

Наработку биомассы для проведения испытаний производили в глубинной культуре (ГК) в биореакторе БИОК - 022с (ООО «Саяны», г. Новосибирск), объемом до 10 л (Теплякова Т.В. и др., 2005).

Для исследования процессов спорообразования в поверхностной культуре использовали агаризованную среду МК и водный агар (Теплякова Т.В., 1999).

Получение хламидоспор в погруженной культуре осуществлялось в конических колбах объемом 200 мл на круговой качалке при 180 об./мин, температуре 28С, объем жидкости составлял 25 мл. Для индукции спорообразования культуру, выращенную на среде МК, разводили водой в 2–5 раз и инкубировали до завершения процесса созревания спор (4-7 суток).

Индукцию процесса образования ловушек в погруженной культуре осуществляли в конических колбах объемом 200 мл на круговой качалке при 180 об./мин, температуре 28С в течение 2-х суток, объем жидкости составлял 25 мл. Для индукции процесса формирования ловушек (для нематод) культуру D. flagrans, выращенную на среде МК, разбавляли водой в три раза и добавляли нематод или кондиционированную среду, содержащую метаболиты нематод.

Подсчет ловушек в полях зрения производился под микроскопом (400), результаты усреднялись по 40 полям зрения.

Жидкий препарат для производственных испытаний (5 т) был произведен на линии ферментеров ООО ПО «Сиббиофарм» (г. Бердск). Его использовали для проведения испытаний в тепличном комбинате ОАО «Суховский» (г. Кемерово) на овощных культурах против галловой нематоды;

во Всероссийском институте биологической защиты растений (ВНИИ БЗР, г. Краснодар) для полевых испытаний на землянике, пораженной стеблевой нематодой. Различные дозы сухой и жидкой форм препарата были испытаны также против: галловых нематод овощных культур в теплице Новосибирского метрополитена; галловых нематод в горшечных культурах бегонии (ФБГУН Центральный сибирский ботанический сад СО РАН, г. Новосибирск);

золотистой картофельной нематоды (Новосибирская область, Мошковский район).

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Большинство исследований хищных грибов проводится на поверхностных культурах, выращиваемых на агаризованных средах (Grnvold J. et al., 1996, 1999). Основной их недостаток – гетерогенность условий и самих культур, так как разные участки культуры имеют различный возраст и физиологическое состояние.

хламидоспора конидия Влажная Жидкая поверхность среда Воздушный Глубинный мицелий мицелий Нематоды Ловушки для нематод Рис. 1. Жизненный цикл D. flagrans В наших экспериментах культивирование D. flagrans проводилось в колбах в термостатированном шейкере или в биореакторе, где обеспечивается равномерное распределение питательных веществ и, соответственно, единство состояния всей культуры. Глубинная культура D. flagrans является хорошей моделью для количественных исследований факторов, контролирующих переход от одной стадии жизненного цикла к другой (рис. 1). Были изучены следующие переходы: вегетативный мицелий формирование спор; мицелий образование ловушек для нематод; а также особенности процесса спорообразования при зоотрофном способе питания.

1. Условия получения хламидоспор В глубинной культуре. В качестве пусковых факторов спорообразования использовали различного рода стрессы, которые индуцировали процесс спорообразования у других видов грибов (Феофилова Е.П. и др., 2012). Ранее на примере хищных грибов рода Arthrobotrys, родственных даддингтонии, было показано, что стимулирование формирования хламидоспор происходило при помещении мицелия в воду, почву, в присутствии нематод, а также при длительном хранении в холодильнике (Теплякова Т.В., 1992, докт. диссер.).

Выяснилось, что у D. flagrans наилучшим индуктором процесса спорообразования является лимитирование культуры по питательным веществам, что достигается разбавлением глубинной культуры водой в 2–раза. При разбавлении культуры хламидоспоры формировались гораздо быстрее (за 4 суток, вместо двух недель), и их количество было на 1–2 порядка больше, чем в неразбавленной культуре (табл. 1).

Таблица Выход хламидоспор в глубинной культуре (ГК) в зависимости от степени ее разбавления Варианты Количество хламидоспор 1в 1 мл разбавленной ГК В пересчете на 1 мл исходной ГК ГК 0,40 ± 0,05 0,4 ± 0,ГК, разбавление в 2 раза 4,6 ± 0,4 9,2 ± 0,ГК, разбавление в 3 раза 7,8 ± 0,6 23,4 ± 1,ГК, разбавление в 4 раза 6,2 ± 0,5 24,8 ± 2,Оказалось, что варьирование значений остальных факторов (температуры, рН и интенсивности аэрации) лишь модулирует эффект разбавления и не способно самостоятельно индуцировать процесс спорообразования. Таким образом, можно получить (1-2)105 хламидоспор в расчете на 1 мл исходной (не разбавленной) глубинной культуры. Параллельная с разбавлением добавка глицерина (до 2 %) позволяет увеличить выход хламидоспор в 2-3 раза, до (2,8-3,6)105 хламидоспор/мл глубинной культуры.

В поверхностной культуре. Согласно нашим данным, при нанесении на частицы наполнителя (торф, силикагель, цеолит, керамзит, почва) вегетативной биомассы D. flagrans, выращенной в глубинной культуре, из клеток мицелия в течение 4 суток формируется множество хламидоспор, при этом конидии почти не образуются. Наилучший урожай хламидоспор был получен на частицах вспученного вермикулита (табл. 2).

Таблица Выход хламидоспор в зависимости от соотношения глубинной культуры (ГК) и вспученного вермикулита Описание варианта Число хламидоспор 1на 1 г вермикулита на 1 мл исходной ГК 1 мл ГК на 1 г вермикулита 1,7 ± 0,2 1,7 ± 0,2 мл ГК на 1 г вермикулита 3,2 ± 0,3 1,6 ± 0,3 мл ГК на 1 г вермикулита 4,9 ± 0,5 1,6 ± 0,В данном интервале концентраций выход хламидоспор прямо пропорционален количеству биомассы, нанесенной на вермикулит. При формировании хламидоспор очевидно используются вещества, запасенные в клетках мицелия в процессе роста в глубинной культуре. Поэтому представляло интерес исследование влияния добавок различных питательных веществ на выход хламидоспор (табл. 3). Добавки ряда источников азота и углерода действительно способствовали увеличению выхода хламидоспор в 7–10 раз в сравнении с контролем. Характер субстратов оказал заметное влияние на продолжительность процесса формирования хламидоспор. При добавлении растворимых источников углерода и азота (мелассы и кукурузного экстракта) процесс формирования хламидоспор происходит в те же сроки, что и в контроле (4 суток). При этом мицелий почти не растет, добавка расходуется на формирование дополнительных хламидоспор. При добавлении нерастворимого субстрата (муки или крахмала) происходит мощный прирост мицелия, и процесс формирования хламидоспор завершается лишь через 13 суток.

Таблица Динамика прироста хламидоспор на вспученном вермикулите при добавлении в глубинную культуру (ГК) различных источников углерода и азота Описание образцов Продолжительность инкубации, суток / количество хламидоспор 106 в 1 г сухого препарата 4 7 10 Контроль – ГК без 0,5 ± 0,1 0,5 ± 0,1 0,5 ± 0,1 0,5 ± 0,добавок ГК с 6 % мелассы и 0,6 % 3,5 ± 0,4 3,7 ± 0,4 3,7 ± 0,4 3,7 ± 0,кукурузного экстракта ГК с 10 % крахмала 0,5 ± 0,1 2,2 ± 0,3 3,1 ± 0,3 3,8 ± 0,ГК с 10 % муки 0,6 ± 0,05 2,7 ± 0,2 4,4 ± 0,4 5,4 ± 0,Примечание: 3 мл ГК на 1 г вермикулита во всех вариантах.

В результате проведенных исследований установлено, что переход культуры в состояние гипобиоза происходит при наиболее существенных изменениях среды обитания. Было показано значение двух стресс-сигналов (рис. 2), индуцирующих переход мицелия D. flagrans к спорообразованию.

Увеличение Хламидоспоры Хламидоспоры числа спор на воздушном в глубинной мицелии культуре 6-ти суточная культура Добавка растворимых Контакт питательных Добавка мицелия с Истощение веществ питательных воздухом среды веществ 3-х суточная культура Глубинный вегетативный мицелий Рис. 2. Факторы, управляющие переходом от стадии вегетативного роста к спорообразованию в глубинной и поверхностной культурах.

Первый – естественный или искусственно созданный дефицит питания, индуцирующий процесс спорообразования как в поверхностной, так и в глубинной культуре. В молодой глубинной культуре (до 3-х суток) этот процесс может быть обращен вспять посредством добавок питательных веществ. Второй значимый фактор – непосредственный контакт глубинного мицелия с кислородом воздуха. Он запускает два параллельных процесса:

преобразование глубинного мицелия в воздушный и формирование хламидоспор. В этой ситуации переход необратим, добавки питательных веществ не прерывают спорообразование, но приводят к увеличению числа образующихся спор.

2. Три новых способа получения хламидоспор D. flagrans На основе полученных данных об индукторах процесса спорообразования были разработаны новые методы получения хламидоспор (рис. 3), необходимых для приготовления бионематицида с достаточно длительным сроком хранения (не менее 1 года). Первая стадия во всех трех способах реализуется одинаково: выращивание необходимого количества вегетативного мицелия в биореакторе или на качалке на среде МК до концентрации биомассы по сухому веществу не менее 10 г/л (30-40 часов). Далее описаны последующие стадии трех технологий (Ананько Г.Г., Теплякова Т.В., 2008).

Выращивание вегетативного 1 мицелия в биореакторе Применение жидкой + добавки Разведение препаративной + вспученный водой формы вермикулит 2 Получение Активно Стационарная хламидоспор в перемешиваемая поверхностная глубинной культуре в поверхностная культура биореакторе культура Созревание Созревание хламидоспор хламидоспор и на частицах параллельное вермикулита высушивание препарата Концентрирование и Высушивание сушка препарата препарата Рис. 3. Способы получения препаративных форм.

2.1. Получение хламидоспор в глубинной культуре (1-й способ) Индукция процесса спорообразования (2-я стадия) осуществляется посредством разбавления глубинной культуры водой в 2–3 раза, после чего разбавленная ГК культивируется в биореакторе в течение 4 суток при температуре 28оС, интенсивном перемешивании и аэрации. Полученную биомассу, содержащую хламидоспоры и мицелий, концентрируют фильтрованием. Концентрат смешивают со вспученным вермикулитом (в качестве наполнителя) и высушивают, получая сухой споросодержащий препарат. В отличие от поверхностного способа культивирования, данная технология открывает возможности для эффективного масштабирования, крупные партии препарата можно производить на стандартном ферментационном оборудовании существующих микробиологических производств.

2.2. Получение хламидоспор на вспученном вермикулите в стационарных условиях (2-й способ) Процесс спорообразования (2-я стадия) запускается после смешивания глубинной культуры, выращенной в биореакторе, со стерильным вермикулитом в соотношении 3:1, смесь инкубируют в полипропиленовых мешках при температуре 28°С в течение 4 суток до созревания хламидоспор. Благодаря высокой влагоемкости вспученного вермикулита (около 400 %) можно варьировать количество наносимого посевного материала и добавок питательных веществ в широком диапазоне. Так, добавка растворимых питательных веществ, мелассы (6 %) и кукурузного экстракта (0,6 %) позволяет на порядок увеличить выход хламидоспор, от 4105 до 4106 спор/г сухого препарата. Продолжительность производственного цикла составляет 6–7 суток, тогда как при использовании твердых органических субстратов для этого требуется 4–6 недель. Два вышеописанных способа получения хламидоспор были запатентованы (патент РФ 2366178, 2009).

2.3. Получение хламидоспор на активно перемешиваемых частицах вспученного вермикулита (3-й способ) Основным недостатком процесса получения хламидоспор в стационарной поверхностной культуре является ограничение на допустимую высоту слоя носителя (не более 10-15 см), при которой еще осуществима пассивная аэрация всего объема культуры. Разработан новый способ получения хламидоспор D. flagrans, который сочетает технологии глубинного и поверхностного культивирования, и пилотная установка для его реализации. Данную установку можно классифицировать как биореактор с клетками грибов, иммобилизованными на частицах носителя (вспученного вермикулита): жидкая фаза (питательная среда) заключена внутри частиц носителя, а сам носитель инкубируется в газовой фазе. Установлено, что медленное пересыпание субстрата при вращении сосуда не препятствует развитию хламидоспор на частицах вермикулита. Поток воздуха, стерилизуемый на воздушных фильтрах, обеспечивает аэрацию мицелия, теплообмен и постепенное высушивание препарата. Таким образом, параллельно реализуется сразу две стадии технологического процесса – созревание спор и высушивание препарата. В итоге получается стерильный сухой продукт, который можно сразу фасовать.

Поскольку количество производимой продукции зависит от объема сосуда, а не от площади, снимаются препятствия для эффективного масштабирования процесса, позволяющего снизить себестоимость продукции. Данное оборудование может быть использовано также для производства споровых препаратов других видов грибов, споры которых невозможно получить в глубинной культуре.

По сравнению с известной схемой получения грибного нематицида на твердых органических субстратах (Теплякова Т.В., 1999), в нашей технологии сокращаются затраты времени на первую стадию. В глубинной культуре посевной материал можно получить за 1-2 суток, тогда как на зерновом субстрате на это требуется около 2 недель (Сопрунов Ф.Ф., 1958). Вторая стадия, получение хламидоспор, во всех трех разработанных технологиях реализуется за 4 суток, вместо 3–4 недель. Это достигается за счет использования достаточного количества посевного материала и использования растворимых питательных веществ. В целом, предлагаемые технологии позволяют сократить затраты времени на производственный цикл в 4–6 раз.

3. Условия перехода к зоотрофному типу питания D. flagrans относится к группе грибов миксотрофов, которые могут выбирать способ питания и, в зависимости от условий, питаются либо мертвой органикой (как типичные сапротрофы), либо почвенными нематодами (как хищники). Целью данного раздела является исследование основных факторов, управляющих переходом от сапротрофного к зоотрофному способу питания, что необходимо для разработки эффективной технологии применения бионематицида.

Переход к зоотрофии в глубинной культуре D. flagrans. Штамм D. flagrans F-882 продуцирует аттрактант, ациклический сесквитерпеновый альдегид 3,7,11-триметил-додека-2,4,6,10-тетраеналь, привлекающий нематод Panagrellus redivivus (Ананько Г.Г., Теплякова Т.В., Ткачев А.В., 2012). При определенных условиях данный штамм также образует клейкие петли для улавливания нематод, как в поверхностной, так и в глубинной культуре. Было показано, что максимальное количество ловушек образуется при оптимальных концентрациях питательной среды МК (20 %), сахарозы (0,4 %) и триптона (0,2 %), тогда как в высоких концентрациях эти же вещества ингибируют их образование. Были определены критические концентрации указанных питательных веществ (соответственно, 45 %, 1,6 % и 1,0 %), полностью ингибирующие процесс образования ловушек. Таким образом, для индукции процесса формирования ловушек необходимо выполнение двух обязательных условий: снижение концентрации источников азота и углерода ниже критического уровня и контакт мицелия с метаболитами нематод (Ананько Г.Г., Теплякова Т.В., 2011). В богатой среде D. flagrans питается как сапротроф, но если переход к зоотрофии произошел, то гриб ведет себя подобно облигатному хищнику, используя нематод как полноценный источник питания.

Активность бионематицида в почве, в зависимости от способа его применения. С использованием данных, полученных в глубинной культуре D. flagrans, было проведено сравнительное исследование различных вариантов применения сухого препарата (табл. 4). Выяснилось, что внесение препарата в почву до наступления пиковой численности нематод, также как и добавка нитрата аммония, позволяют снизить расход биопрепарата в 4–8 раз при сохранении его эффективности (Ананько Г.Г., Теплякова Т.В., 2010). В данном случае внесение азотных удобрений приносит двойную пользу, как стимулятор образования ловушек и роста растений.

Таблица Динамика гибели нематод в почве при использовании различных технологий применения сухой формы бионематицида № Технология применения Описание образца *Доля погибших нематод, % 10 суток 20 суток 1 Одновременное внесение в 0,25 % препарата 0 33 ± 2 почву сухого препарата и 0,5 % препарата 44 ± 25 77,3 ± нематод 3 1,0 % препарата 55,8 ± 12,4 92,5 ± 0,4 2,0 % препарата 88,5 ± 0,7 93,5 ± 1,5 Сначала вносили препарат в 0,25 % препарата 83,1 ± 3,0 90,5 ± 5,6 почву, затем через 4 суток 0,5 % препарата 93,3 ± 1,0 94,1 ± 3,добавляли нематод 7 1,0 % препарата 94,4 ± 0,1 95,0 ± 0,8 Одновременно вносили 0,5 % 0,25 % раствор NH4NO3 47,5 ± 23,5 85,5 ± 7,9 препарата от массы почвы, 1,0 % раствор NH4NO3 93,5 ± 3,8 99,5 ± 0,нитрат аммония и нематод 10 Одновременно вносили 1,0 % 0,25 % раствор NH4NO3 88,3 ± 2,2 91,5 ± 0,препарата от веса почвы, 11 1,0 % раствор NH4NO3 97,7 ± 2,3 99,5 ± 0,нитрат аммония и нематод Примечание: *в процентах от количества нематод в контроле (почва без препарата).

4. Испытания препаративных форм на основе D. flagrans Были проведены испытания (табл. 5) жидкой и сухой препаративных форм против: галловой нематоды на бегониях (Begonia rex) и огурцах (Cucumis sativus), цистообразующей золотистой нематоды на картофеле (Solanum tuberosum) и стеблевой нематоды земляники садовой (Fragaria ananassa), в различных климатических зонах (в Сибири и Краснодарском крае).

Крупномасштабные испытания жидкой формы препарата в условиях реального производства были проведены в теплицах ФГУП «Суховский» в Кемеровской области на площади 3000 м2.

В результате применения препарата наблюдалось существенное снижение зараженности растений нематодами, а также проявление ростостимулирующего эффекта, а именно, увеличение вегетативной массы растений и повышение урожайности культур. На овощных и ягодных культурах показано пролонгированное действие препарата в течение всего срока наблюдения, года, после однократного внесения в почву (Теплякова и др., 2008;

Агасьева И.С. и др., 2008).

Таблица Сводная таблица по результатам проведенных испытаний бионематицида Объект контроля: Растение Результаты испытаний Галловая Бегония - Снижение зараженности растений до 0,5 балла (в нематода королевская контроле все растения погибли).

Meloidogyne (Новосибирск) - Продление периода вегетации растений.

incognita Огурцы сорта - Снижение зараженности растений до 1 балла (в «Королек» контроле – 5 баллов).

(Новосибирск) - Ростостимулирующий эффект – увеличение площади листовой поверхности на 17-45 %.

Огурцы сорта - Ростостимулирующий эффект: увеличение высоты «Эффект» растений на 25-30 см и урожая на 0,7-2,8 кг/м2.

(Кемерово) - Пролонгирование указанных эффектов на три года после однократного внесения препарата.

Цистообразующая Картофель: - Снижение зараженности на 52-70 %.

золотистая «Свитанок - Ростостимулирующий эффект на стадии нематода киевский», проростков.

Globodera «Любава» - Повышение урожайности картофеля в 1,5-2 раза.

rostochiensis (Новосибирск) Стеблевая Земляника - Уменьшение количества нематод в 2-17 раз в нематода садовая зависимости от дозы и формы препарата.

Anguillulina (Краснодар) - Снижение инвазии нематод в здоровые растения.

dipsaci - Ростостимулирующий эффект: увеличение количества листьев на 37-50 % и высоты растений на 51-73 %; увеличение урожая на 10-53 %, в том числе фракции крупных ягод на 5-19 %.

- Пролонгирование вышеуказанных эффектов на три года после однократного внесения препарата.

ВЫВОДЫ 1. Впервые показано, что формирование хламидоспор D. flagrans индуцируется естественным или искусственно созданным дефицитом питания, либо при контакте глубинного мицелия с воздушной средой. Показано также, что для инициации процесса формирования ловушек необходимо выполнение двух условий: снижение концентрации источников азота и углерода ниже критического уровня и контакт мицелия с метаболитами нематод. Для ряда питательных веществ, таких как питательная среда МК, сахароза и триптон, выявлены оптимальные концентрации, стимулирующие процесс образования ловушек (соответственно, 20 %, 0,4 % и 0,2 %), и критические концентрации, полностью ингибирующие этот процесс (45 %, 1,6 % и 1,0 %).

2. Разработан способ получения препарата на основе хламидоспор D. flagrans в биореакторе, где процесс спорообразования инициируется разбавлением среды водой, который позволяет получать (1-2)1хламидоспор/мл глубинной культуры.

3. Разработан способ получения препарата с высоким содержанием хламидоспор D. flagrans (4106 спор/г) с применением добавок растворимых питательных веществ и вспученного вермикулита в качестве носителя.

Продолжительность производственного цикла сокращается в 4-6 раз по сравнению с известными способами выращивания хищных грибов на твердых органических носителях.

4. Разработан способ культивирования D. flagrans, который сочетает технологии поверхностного и глубинного культивирования, открывающий возможности для эффективного масштабирования процесса. Создана экспериментальная установка для его тестирования, позволяющая реализовать процесс получения хламидоспор на частицах вспученного вермикулита с одновременным высушиванием препарата. Урожай составляет 41хламидоспор/г сухого препарата.

5. В результате испытаний бионематицида в Новосибирской, Кемеровской областях и Краснодарском крае показаны его нематофаговая активность и ростостимулирующий эффект:

• зараженность бегонии галловой нематодой снизилась до 0,5 балла (в контроле все растения погибли), был продлен период вегетации растений;

• зараженность растений огурца галловой нематодой снизилась до 1 балла (в контроле – 5 баллов), увеличилась длина корней и площадь листовой поверхности на 15–45 %, прибавка к урожаю составила 0,7–2,8 кг/м2;

• зараженность картофеля цистообразующей золотистой нематодой снизилась на 52–70 %, урожайность картофеля повысилась в 1,5–2 раза;

• численность стеблевой нематоды на землянике снизилась в 2–17 раз, при увеличении количества листьев на 37-50 % и урожая ягод на 10–53 %.

6. Установлено, что действие биопрепарата после однократного применения на растениях огурца (галловая нематода) и земляники (стеблевая нематода) пролонгируется на 3 года (срок наблюдения).

7. Показано, что расход грибного нематицида можно снизить в 4-8 раз, при сохранении его эффективности, за счет оптимизации сроков внесения бионематицида (за две недели до наступления пиковой численности нематод), а также использования стимулирующих добавок (нитрата аммония).

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ Публикации в журналах, рекомендуемых ВАК РФ 1. Ефремова Е.А., Теплякова Т.В., Ананько Г.Г. Лярвицидные свойства глубинной культуры хищного гриба Duddingtonia flagrans при элафостронгилезе маралов // Сибирский вестник с.-х. науки. 2007. № 6. С.

87-91.

2. Теплякова Т.В., Ананько Г.Г. Хищные грибы-гифомицеты против паразитических нематод // Защита и карантин растений. 2009. № 6. С. 22-25.

3. Ананько Г.Г., Теплякова Т.В. Способы повышения эффективности препарата на основе нематофагового гриба Duddingtonia flagrans // Защита и карантин растений. 2010. № 7. С. 20-22.

4. Ананько Г.Г., Теплякова Т.В. Факторы, определяющие переход от сапротрофного к зоотрофному типу питания у хищного гриба Duddingtonia flagrans // Микробиология. 2011. № 2. С. 200-206.

Патенты 5. Теплякова Т.В., Ананько Г.Г. Способ получения препарата на основе хламидоспор микроскопического гриба для борьбы с паразитическими нематодами растений и животных: патент РФ № 2366178, опубл. 10.09.2009.

Бюл. № 25. 12 с.

Статьи в сборниках и журналах 6. Теплякова Т.В., Кислых В.И., Ананько Г.Г., Ибрагимова Ж.Б.

Использование хищного гриба Duddingtonia flagrans против нематод // Коммерческая биотехнология: интернет-журнал. 20.10.2005. Т. 5. URL:

http://www.cbio.ru/page/43/id/2108/.

7. Ананько Г.Г., Теплякова Т.В. Биотехнология получения препарата против паразитических нематод сельскохозяйственных культур // Сборник научных трудов «Достижения современной биотехнологии» под ред. Дроздова И.Г.

Новосибирск. 2008. С. 328-335.

Материалы конференций 8. Агасьева И.С., Федоренко Е.В., Теплякова Т.В., Ананько Г.Г. Испытание нематофагового препарата на основе гриба Duddingtonia flagrans против стеблевой нематоды земляники Anguillulina dipsaci Ritz. // Материалы международной научно-практической конференции «Биологическая защита растений, перспективы и роль в фитосанитарном оздоровлении агроценозов и получении экологически безопасной сельскохозяйственной продукции».

23 – 25 сентября 2008 г., Краснодар. Вып. 5. С. 189-193.

9. Теплякова Т.В., Ананько Г.Г., Агасьева И.С., Федоренко Е.В.

Пролонгированное действие нематофагового препарата на основе гриба Duddingtonia flagrans против галловых нематод на огурцах // Материалы международной научно-практической конференции «Биологическая защита растений, перспективы и роль в фитосанитарном оздоровлении агроценозов и получении экологически безопасной сельскохозяйственной продукции».

23–25 сентября 2008 г., Краснодар. Вып. 5. С. 303-306.

10. Ананько Г.Г., Теплякова Т.В. Биотехнология получения препарата против паразитических нематод сельскохозяйственных культур // Материалы съезда общества биотехнологов России им. Ю.А. Овчинникова. Москва. 2 – 4 декабря 2008 г. С. 11-12.

11. Теплякова Т.В., Ананько Г.Г., Свириденко А.Н. Исследование устойчивости нематофаговых грибов рода Arthrobotrys к действию ультрафиолетового излучения // Материалы 5 съезда общества биотехнологов России им. Ю.А.

Овчинникова. Москва. 2 – 4 декабря 2008 г. С. 290-291.

12. Ананько Г.Г., Теплякова Т.В. Новые методы получения спор грибовгельминтофагов для производства бионематицидов на их основе // Материалы международной конференции «Биология – наука XXI века».

Москва. 24 мая 2012 г. С. 42-43.

13. Ананько Г.Г., Ибрагимова Ж.Б., Мазуркова Н.А., Теплякова Т.В.

Перспективы использования хищных грибов-гифомицетов в производстве противопаразитарных и противовирусных препаратов // Материалы международной конференции «Биология – наука XXI века». Москва. 24 мая 2012 г. С. 44-46.

14. Ананько Г.Г., Теплякова Т.В., Ткачев А.В. Идентификация аттрактантов для нематод, продуцируемых хищным грибом Daddingtonia flagrans // Материалы 3-го съезда микологов. Москва. 10-12 октября 2012 г. С. 62.






© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.