WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 | 2 || 4 | 5 |   ...   | 13 |

«1 Молекулярная биология клетки 2 Molecular Bruce Alberts, Dennis Bray, Biology Julian Lewis, Martin Raff, of the Cell Keith Roberts, James D. Watson SECOND EDITION Garland Publishing, Inc. ...»

-- [ Страница 3 ] --

Stanley P. Glycosylation mutants and the functions of mammalian carbohydrates Trends Genet., 3, 77-81, 1987.

West C. M. Current ideas on the significance of protein glycosylation. Мої Cell Biochem., 72, 3-20, 1986.

50. Hassel J. R.. Kimura J. H., Hascal V. C. Proteoglycan core protein families Annu Rev. Biochem., 55, 539-567, 1986.

Huttner W. B. Tyrosine sulfation and the secretory pathway. Annu. Rev. Physiol., 50, 363 - 376, 1998.

Ruoslahti F. Structure and biology of proteoglycans. Annu. Rev. Cell Biol., 4, 229--255, 1988.

Wagh P. V., Bahl O. P. Sugar residues on proteins. CRC Crit. Rev. Biochem., 10, 307-377, 1981, 51. Douglass J., Civelli O., Herbert E. Polyprotein gene expression: generation of diversity of neuroendocrine peptides. Annu. Rev. Biochem., 53, 665-715, Orel L. et al. Conversion of proinsulin to insulin occurs coordinately with acidication of maturing secretory vesicles. J. Cell Biol., 103, 2273 2281, 1986.

52. Dunphy W. G., Rothman J. E. Compartmental organization of the Golgi stack. Cell, 42, 13-21, 1985.

53. Bainton D. The discovery of lysosomes. J. Cell Biol., 91, 66s- 76s, 1981.

de Duve C. Exploring cells with a centrifuge. Science, 189, 186 194, 1975.

54. Holzman E. Lysosomes: A Survey. New York, Springer-Verlag, 1976.

55. Griffiths G., Holfack В., Simons K., Mellman /., Kornfeld S. The mannose 6-phosphate receptor and the biogenesis of lysosomes. Cell, 52, 341, 1988.

Helenius A., Mellman /., Wall D., Hubbard A. Endosomes. Trends Biochem. Sci., 8, 245-250, 1983.

Mayer R.J., Dohertv F. Intracellular protein catabolism: state of the art. FEBS Lett., 198, 181-193, 1986.

Mellman I., Fuchs R., Helenius A. Acidification of the endocytic and exocytic pathways. Annu. Rev. Biochem., 55, 663-700, 1986.

Silverstein S.C., Steinman R.M., Cohn Z.A. Endocytosis. AnhurRev. Biochem., 46, 669-722, 1977.

56. Dahms N. M., Label P., Breitmeyer J., Chirgwin J. M., Kornfeld S. 46 kd mannose 6-phosphate receptor: cloning, expression, and homology to the 215 kd mannose 6-phosphate receptor. Cell, 50, 181 192, 1987.

Kornfeld S. Trafficking of lysosomal enzymes. FASEB J., 1, 462-468, 1987.

Pfeffer S. R. Mannose 6-phosphate receptors and their role in targeting of proteins to lysosomes. J. Membr. Biol., 103, 7-16, 1988.

van Fiqura K., Hasilik A. Lysosomal enzymes and their receptors. Annu. Rev. Biochem., 55, 167-193, 1986.

57. Brown W.J., Goodhouse J.;

Farquhar. M.G. Mannose 6-phosphate receptors for lysosomal enzymes cycle between the Golgi coplex and endosomes. J. Cell Biol., 103, 1235-1247, 1986.

Duncan J. R., Kornfeld S. Intracellular movement of two mannose 6-phosphate receptors: return to the Golgi apparatus. J. Cell Biol., 106, 617 628, 1988.

Geuze H.J.. Slot J. W., Strous G.J.A.M., Hasilik A., van Figura K. Possible pathways for lysosomal enzyme delivery. J. Cell Biol., 101, 2253 2262, 1985.

Rothman J. E., Schmid S. L. Enzymatic recycling of clathrin from coated vesicles. Cell, 46, 5-9, 1986.

58. Lane/ L., Reitman M., Tang J., Roberts R. M., Kornfeld S. Lysosomal enzyme phosphorylation. J. Biol. Chem., 259, 14663-14671, 1984.

Reitman M. L., Kornfeld S. Lysosomal enzyme targeting. N-acetylglucosaminyl-phosphotransferase selectively phosphorylates native lysosomal enzymes. J. Biol. Chem., 256, 11977 11980, 1981.

59. Kornfeld S. Trafficking of lysosomal enzymes in normal and disease states. J. Clin. Invest., 77, 1-6, 1986.

Neufeld E. F., Lim T. W., Shapiro L. J. Inherited disorders of lysosomal metabolism. Annu. Rev. Biochem. 44, 357 376, 1975.

60. Burgess T. L., Kelly R. B. Constitutive and regulated secretion of proteins. Annu. Rev. Cell Biol., 3, 243-293, 1987.

61. Griffiths G., Simons K. The trans-Golgi network: sorting at the exit site of the Golgi complex. Science, 234, 438-443, 1986.

Orci L. et a/. The trans-most cisternae of the Golgi complex: a compartment for sorting of secretory and plasma membrane proteins. Cell, 51, 1039-1051, 1987.

62. Herzoy V'., Farquhar M. G. Luminal membrane retrieved after exocytosis reaches most Golgi cisternae in secretory cells. Proc. Natl. Acad. Sci.

USA, 74, 5073-5077, 1977.

Snider M. D.. Rogers О. С. Membrane traffic in animal cells: cellular glycoproteins return to the site of Golgi mannosidase I. J. Cell Biol., 103, 265-275, 1986.

63. Lodish H. F. Transport of secretory and membrane glycoproteins from the rough endoplasmic reticulum to the Golgi. J. Biol. Chem., 263, 2107 2110, 1988.

Rothman J. E. Protein sorting by selective retention in the endoplasmic reticulum and Golgi stack. Cell, 50, 521-522, 1987.

Wieland F. Т., Gleason M. L., Serafini T. A., Rothman J. E. The rate of bulk flow from the endoplasmic reticulum to the cell surface. Cell, 50, 289-300, 1987.

64. Bartles J. R.. Hubbard A. L. Plasma membrane protein sorting in epithelial cells: do secretory pathways hold the key? Trends Biochem. Sci., 13, 181 184, 1988.

Matlin K. S. The sorting of proteins to the plasma membrane in epithelial cells. J. Cell Biol., 103, 2565 2568, 1986.

Mostov K. E., Breitfeld P., Harris J. M. An anchor-minus form of the polymeric immunoglobulin receptor is secreted predominantly apically in Madin-Darby canine kidney cells. J. Cell Biol., 105, 2031-2036, 1987.

Simons K., Fuller S. D. Cell surface polarity in epithelia. Annu. Rev. Cell Biol., 1, 243-288, 1985.

65. Simons К., Garoff Н., Helenius A. How an animal virus gets into and out of its.host cell. Sci. Am., 246(2), 58-66, 1982.

Simons K., Warren G. Semliki forest virus: a probe for membrane traffic in the animal cell. Adv. Protein Chem., 36, 79-132, 1984.

66. Rodriguez-Boulan F. J. Membrane biogenesis, enveloped RNA viruses, and epithelial polarity. In: Modern Cell Biology. Vol. 1 (J. R. Mcintosh, В. Н. Satir, eds.), pp. 119 170, 1983.

Rodriguez-Boulan E. J., Sabatini D. D. Asymmetric budding of viruses in epithelial monolayers: a model system for the study of epithelial polarity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75, 5071-5075, 1978.

Roth M. G., Sirnivas R. V., Compans R. W. Basolateral maturation of retroviruses in polarized epithelial cells. J. Virol., 45, 1065-1073, 1983.

Strauss E. G., Strauss J. H. Assembly of enveloped animal viruses. In: Virus Structure and Assembly (S. Casjens, ed.), Chapter 6. Boston, Jones and Bartlett, 1985.

67. Rothman J. E. Protein sorting by selective retention in the endoplasmic reticulum and Golgi stack. Cell, 50, 521-522, 1987.

68. Griffiths G., Pfeiffer S., Simons K., Mat/in K. Exit of newly synthesized membrane proteins from the trans cisterna of the Golgi complex to the plasma membrane. J. Cell Biol., 101, 949-964, 1985.

Orci L., Click B. S., Rothman J. E. A new type of coated vesicular carrier that appears not to contain clathrin: its possible role in protein transport within the Golgi stack. Cell, 46, 171-184, 1986.

69. Bourne H. Do GTPases direct membrane traffic in secretion? Cell, 53, 669-671, 1988.

Novick P., Field C., Schekman R. Identification of 23 complementation groups required for post-translational events in the yeast secretory pathway. Cell, 21, 205-215, 1980.

Scheckman R. Protein localization and membrane traffic in yeast. Annu. Rev. Cell Biol., 1, 115-143, 1985.

70. Batch W. E., Dunphy W. G., Braell W. A., Rothman J. E. Reconstitution of the transport of protein between successive compartments of the Golgi measured by the coupled incorporation of N-acetylglucosamine. Cell, 39, 405-416, 1984.

Dunphy W. G. et al. Yeast and mamals utilize similar cytosolic components to drive protein transport through the Golgi complex. Proc. Natl.

Acad. Sci. USA, 83, 1622-1626, 1986.

Fries E., Rothman J. E. Transport of vesicular stomatitis virus glycoprotein in a cell-free extract. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 3870-3874, 1980.

9 Клеточное ядро Почти вся ДНК эукариотической клетки сосредоточена в ядре, объем которого составляет приблизительно 10% от общего объема клетки.

Ядро окружено ядерной оболочкой, состоящей из двух концентрически расположенных мембран. Ядерные мембраны пронизаны удаленными на некоторое расстояние друг от друга порами, которые играют важную роль в переносе определенных молекул в цитоплазму из нее. Ядерная оболочка непосредственно связана с эндоплазматическим ретикулумом. С обеих сторон к ней прилегают сетеподобные структуры, состоящие из промежуточных филаментов. Та из них, которая выстилает внутреннюю ядерную мембрану, имеет вид тонкой оболочкя и называется ядерной ламиной. Сетеподобная структура, окружающая наружную ядерную мембрану, гораздо менее компактна (рис. 9-1).

Скорее всего у предков эукариотических клеток, как и у живущих ныне прокариотических организмов, ядро отсутствовало (см. разд.

8.1.2), и можно только строить догадки, почему в ходе эволюции появилась такая обособленная структура. О возможных причинах отделения ДНК от цитоплазмы можно судить по двум специфическим свойствам эукариотических клеток. Одно из таких свойств - существование цитоскелета, состоящего главным образом из микротрубочек и акти-новых нитей, участвующих в движении эукариотических клеток (см. гл. И). Бактерии, ДНК которых контактирует с цитоплазмой, лишены таких филаментов и передвигаются с помощью наружных образований. Возможно, одна из функций ядерной оболочки эукариот состоит в защите их длинных ломких молекул ДНК от механических воздействий цитоскелета.

Рис, 9-І. Поперечный срез ядра типичной клетки. Ядерная оболочка состоит из двух мембран, причем наружная является продолжением мембраны эндоплазматического ретикулума (см. также рис. 8-19). ЛипидныЙ бислой внутренней и наружной ядерных мембран соединяются в ядерных порах. Две сети нитевидных промежуточных фибрилл (цветные линии) обеспечивают механическую прочность ядерной оболочки.

Фибриллы внутри ядра образуют подстилающую ядерную ламину.

Рис. 9-2. Синтез белка у эукариот (ДНК -+ РНК -» белок). Благодаря ядерной оболочке активные рибосомы отделены от ядра;

в результате транскрипты РНК проходят про-цессинг до выхода из ядра в цитоплазму, где происходит трансляция. Таким образом, между транскрипцией ДНК и трансляцией РНК осуществляется процессинг и транспорт РНК.

Второй важной особенностью эукариотических клеток является наличие у них процессинга РНК, который происходит перед трансляцией РНК в белок. В эукариотической клетке в ходе эволюции возникли многочисленные ограниченные мембраной компарт менты, в каждом из которых происходит вполне определенный набор химических реакций. Ядро можно рассматривать как один из таких компартментов. Известно, что в прокариотических клетках синтез РНК (транскрипция) и синтез белка (трансляция) происходят одновременно: рибосомы синтезируют белок начиная с 5'-конца молекулы РНК, а в это время на З'-конце молекулы РНК еще продолжается транскрипция. Таким образом, воз-можностъ внесения изменений й траискрштты РНК до трансляции белка относительно невелика. У эукариот же процессы транскрипции и трансляции разделены и во времени, и в пространстве: транскрипция происходит в ядре, а трансляция-в цитоплазме. Транскрипты РНК сразу же упаковываются в рибонуклеопротеиновые комплексы, что способствует их последующему процессингу. В ходе процессинга определенные нук-леотидные последовательности РНК удаляются, и оставшиеся «сращиваются» (сплайсируются). Эту стадию в процессе переноса генетической информации у эукариот следует признать чрезвычайно важной. Лишь по завершении сплайсинга упаковывающие белки удаляются, и молекулы РНК переносятся из ядра в цитоплазму, где рибосомы начинают трансляцию белка с РНК (рис. 9-2).

Сплайсинг РНК позволяет одному гену детерминировать образование нескольких различных белков (см. разд. 10.4.2) и кроме того дает клетке ряд преимуществ (см. разд, 10,5.3). Вполне возможно, что биологический смысл появления ядра в ходе эволюции эукариотических клеток заключается именно в том, что ядерный компартмент обеспечивает эффективный сплайсинг (рис. 9-3). Гипотетическая схема возникновения ядра представлена на рис. 8-4.

Строение ядерной оболочки подробно рассматривается в гл. 8 в связи с проблемой избирательного транспорта макромолекул (см. разд.

8.3). В настоящей главе мы обсудим, как белки упаковывают ДНК в хромосомы, как хромосомы складываются и размещаются в ядре и как они реплицируются в течение S-фазы каждого клеточного цикла. Большое Рис. 9-3. Ядерная оболочка отделяет ядро от цитоплазматических органелл. На этой электронной микрофотографии представлен тонкий срез ооцита морского ежа, ядро которого окрашивается необычайно равномерно, а цитоплазма плотно забита органеллами. (С любезного разрешения David Begg и Tim Hunt.) внимание будет уделено проблемам синтеза и сплайсинга РНК, наиболее значительным событиям, происходящим в интерфазном ядре. Механизмы, контролирующие экспрессию генов, обсуждаются в гл. 10.

9.1. ДНК и белки, входящие в состав хромосом [1] В течение первых 40 лет нашего столетия биологи не принимали всерьез предположения о том, что содержащаяся в хросомах ДНК несет генетическую информацию. Отчасти это было следствием господствовавшего тогда ошибочного мнения, будто бы в нуклеиновых кислотах имеются лишь простые регулярно повторяющиеся тетрануклеотидные последовательности (например, AGCTAGCTAGCT...). Сейчас мы знаем, что ДНК представляет собой чрезвычайно длинный неразветвленный линейный полимер, который может содержать много миллионов нуклеотидов, расположенных в нерегулярной, но отнюдь не случайной последовательности: эта последовательность нуклеотидов в полинуклеотидной цепи ДНК является кодовой формой записи наследственной информации. Линейный четырехбуквенный генетический код, словами-символами которого служат тройки нуклеотидов (кодонов, определяющих аминокислоты, см. разд. 5.1.6), позволяет хранить огромное количество информации в очень малом объеме. В ДНК 1 млн. «букв» (нуклеотидов) умещается на отрезке прямой, длина которого равна 3,4 х 105 нм (0,034 см), и занимает объем, составляющий примерно 106 нм3 (10~15 см3).

Каждая молекула ДНК упакована в отдельную хромосому, а вся генетическая информация, хранящаяся в хромосомах организма, называется геномом. Геном бактерии E.coli содержит 4,7 х 106 нуклеотидных пар, составляющих единственную молекулу ДНК (одна хромосома).

Геном человека представлен 6 х 109 парами нуклеотидов, распределенных в 46 хромосомах (22 пары аутосом и 2 отличающиеся друг от друга половые хромосомы), и, следовательно состоит из 24 типов молекул ДНК. У диплоидных организмов, таких как мы с вами, имеется по две копии каждого типа хромосом, одна из этих копий наследуется от матери, а другая от отца (за исключением половых хромосом самцов, которым Y хромосома всегда достается от отца, а Х-хромосома-от матери). Итак, типичная клетка человека содержит 46 хромосом и около 6 х нуклеотидных пар ДНК. Другие млекопитающие имеют геном примерно такого же размера. Теоретически это количество ДНК можно упаковать в куб со стороной 1,9 мкм. Для сравнения, 6 х 109 букв в такой книге заняли бы более миллиона страниц, и ее объем оказался бы в 1017 раз больше.

В данном разделе мы обсудим взаимосвязь между молекулами ДНК и хромосомами и расскажем про разнообразные белки, которые связываются с молекулой ДНК, преобразуя ее в активную эукариотическую хромосому. Некоторые из этих белков контролируют экспрессию генетической информации, регулируя синтез молекул РНК на определенных участках генома. Другие белки, главным образом гистоны, складывают каждую длинную молекулу ДНК таким образом, что она становится компактной и упорядоченной, но при этом сохраняется доступ к необходимой генетической информации.

9- 9.1.1. Каждая хромосома образуется из одной длинной молекулы ДНК [2] В каждой отдельной хромосоме человека содержится от 50 х 106 до 250 х 106 нуклеотидных пар. В нескрученном состоянии молекулы ДНК такого размера имели бы длину от 1,7 до 8,5 см, но при удалении хромосомных белков даже самое слабое механическое воздействие приводит к их разрыву. Целые молекулы ДНК можно выделить из некоторых низших эукариотических организмов, таких как дрожжи Saccharomyces cerevisiae, хромосомы которых значительно короче. С помощью метода пульс-гельэлектрофореза удалось показать, что каждая хромосома дрожжей состоит из единственной линейной молекулы ДНК. Эти данные согласуются с результатами весьма сложных измерений, основанных на степени спирализации. Соответствующие эксперименты проводили на хромосомах дрозофилы, молекулы ДНК которой имеют примерно ту же длину, что и хромосомы человека. Полученные разными способами данные позволяют сделать вывод, что все хромосомы содержат только одну молекулу ДНК.

9- 9- 9.1.2. Каждая молекула ДНК, образующая хромосому, должна содержать центромеру, две теломеры и точки начала репликации [3] Для того, чтобы молекула ДНК могла сформировать активную хромосому, она должна обладать способностью реплицироваться, разделяться при митозе и сохраняться в ряду клеточных поколений. Применение метода рекомбинантных ДНК к клеткам дрожжей позволило выделить и определить те элементы, которые «превращают» последовательность нуклеотидов в хромосому. Два из трех этих элементов были идентифицированы при изучении небольших кольцевых молекул ДНК, самостоятельно реплицирующихся в клетках дрожжей Saccharomycos cerevisiae. Оказалось, что для репликации такой молекулы необходима специальная последовательность, которая выполняет роль участка инициации репликации ДНК (называемого также точкой начала репликации). В каждой хромосоме дрожжей таких участков несколько. Второй элемент, необходимый для функционирования последовательности ДНК как хромосомы, называется центромерой. Центромера соединяет содержащую ее молекулу ДНК с митотическим веретеном во время М-фазы (см. разд. 13.5.3). В каждой хромосоме дрожжей имеется только одна центромера. Если участок, выполняющий роль центромеры, встроить в плазмиду, то при делении каждая дочерняя клетка дрожжей обязательно получит одну из двух копий вновь реплицировавшейся молекулы плазмидной ДНК.

Третий необходимый элемент хромосомы - это теломера, она должна присутствовать на каждом конце линейной хромосомы. Если кольцевая плазмида, содержащая участок инициации репликации и центромеру, разрывается по какому-либо сайту, она продолжит свою репликацию и останется прикрепленной к митотическому веретену, однако в последующих поколениях клеток все-таки будет утеряна. Это происходит вследствие того, что репликация на отстающей цепи требует того, чтобы перед копируемым участком имелась последовательность ДНК, которая могла бы служить матрицей для РНК-затравки (см. рис. 5-43). Так как для последних нескольких нуклеотидов линейной молекулы ДНК этих последовательностей нет, ее цепи с каждым новым циклом репликации становятся все короче. У бактерий и вирусов хромосома имеет кольцевую форму, и поэтому подобные затруднения при окончании репликации не возникают. Эукариотические клетки, хромосомы которых линейны, обзавелись специальной теломерной последовательностью ДНК. Это простая повторяющаяся последовательность нуклеотидов, которая периодически наращивается специальным ферментом (см. разд. 9.3.5).

Рис. 9-4. Функционирование трех элементов последовательности ДНК, необходимых для образования стабильных линейных эукарио тических хромосом. Теломерные последовательности предотвращают укорачивание хромосом, которое без них происходило бы при каждом цикле репликации ДНК. Центромеры служат для выстраивания молекул ДНК на митотическом веретене в ходе М-фазы. Точки начала репликации (сайты инициации репликации) нужны для формирования решшкационных вилок в S-фазе.

Таким образом, потерянная теломерная ДНК восстанавливается, что дает возможность линейной хромосоме реплицироваться полностью.

На рис. 9-4 представлены схемы действия трех элементов последовательности ДНК, которые обеспечивают стабильность линейной хромосомы в клетке дрожжей. По-видимому, такие же элементы необходимы и для поддержания стабильности хромосом в клетках человека.

Однако до сих пор участки инициации репликации ДНК и последовательности центромер человека охарактеризованы далеко не полностью, а соответствующие дрожжевые последовательности в клетках высших эука-риот, как оказалось, не функционируют.

С другой стороны, рекомбинантные конструкции, состоящие из ДНК человека и дрожжей, способны реплицироваться в клетках дрожжей как Рис. 9-5. Искусственный хромосомный вектор дрожжей (yeast artificial chromosome, YAC-вектор), позволяющий клонировать очень большие молекулы ДНК. Теломера, центромера и точка начала репликации дрожжей Saccharomyces cerevisiae обозначены соответственно TEL, CEN и ARS (ARS от англ, autonomously replicating sequence - автономно реплициругошиеся последовательности. Точка начала репликации лает возможность плазмиде реплицироваться вне хромосом клеток хозяина). BamHl и EcoRl-рестрикционные эндонуклеазы, которые разрезают двойную спираль ДНК в строго определенных сайтах. Последовательности, обозначенные «А» и «В», кодируют ферменты, которые служат селективными маркерами для отбора трансформированных дрожжевых клеток, несущих искусственную хромосому. (С изменениями из D. Т. Burke, G. Е. Carle and M. V. Olson, Science 236: 806-812, 1987.) искусственные хромосомы. Таким образом, клетки дрожжей можно использовать для получения геномных библиотек человека (см. разд, 5.6.3), в которых каждый клон ДНК, размноженный в виде искусственной хромосомы, содержит до миллиона нуклеотидных пар последовательности ДНК человека (рис. 9-5).

9.1.3. Большая часть ДНК хромосомы не кодирует жизненно важных белков или РНК [4] Геномы высших организмов содержат, по-видимому, большой избыток ДНК. О том, что относительное содержание ДНК в гаплоидных геномах различных организмов напрямую не связано со сложностью организма, стало ясно уже давно: например, клетки человека содержат в раз больше ДНК, чем Е.соїі, в то же время в клетках некоторых земноводных и растений ДНК в 30 раз больше, чем в клетках человека (рис. 9-6).

Более того, содержание ДНК в геномах различных видов земноводных может различаться в 100 раз.

Биологи, изучающие генетику популяций, попытались оценить количество ДНК высших организмов, кодирующей белки клетки или принимающей участие в регуляции генов, ответственных за синтез таких белков. Их подход заключался в следующем: каждый ген всегда с небольшой долей вероятности подвержен мутации-случайному изменению нуклеотидов в ДНК. Чем больше число генов, тем выше вероятность того, что по крайней мере в одном из них произойдет мутация. Так как большинство мутаций приводит к повреждению активности гена, в котором они происходят, скорость мутирования накладывает ограничения на число жизненно важных генов. Принимая во внимание этот довод и исходя из наблюдаемой скорости мутирования, можно заключить, что в регуляции или кодировании жизненно важных белков принимает участие не более нескольких процентов генома млекопитающих. Ниже в поддержку такого вывода будут приведены и другие доказательства.

На основании приведенных рассуждений можно сделать весьма важный вывод. Хотя геном млекопитающих в принципе имеет достаточную величину (3 х 109 нуклеотидов), чтобы кодировать почти 3 млн. белков средних размеров, ограничения, накладываемые точностью воспроизведения ДНК, означают, что ни один организм не может иметь более 60000 жизненно важных белков (при этом не учитывается вклад Рис. 9-6. Количество ДНК в гапло-идном геноме самых маленьких прокариотических клеток и самых больших клеток некоторых растений и амфибий может различаться в 100000 раз. Обратите внимание, что размер генома у человека (3 х 109 нуклеотидных пар) намного меньше, чем у некоторых других организмов.

альтернативного сплайсинга РНК). Таким образом с генетической точки зрения человек, вероятно, лишь в 10 раз сложнее, чем плодовая мушка дрозофила, имеющая около 5000 генов.

Для чего бы ни служила избыточная ДНК в клетках высших эукариот (см. гл. 10), данные, приведенные на рис. 9-6, доказывают, что клетки высших эукариот, содержащие большое количество дополнительной ДНК, не страдают от этого. И действительно, даже важные кодирующие последовательности у них часто прерываются длинными участками некодирующей ДНК.

9.1.4. Каждый ген-это сложная функционально активная единица, предназначенная для регулируемого синтеза молекулы РНК Главной функцией генома является образование молекул РНК. Определенные участки последовательности нуклеотидов ДНК копируются с образованием соответствующих последовательностей РНК, которые либо кодируют белки (как мРНК), либо образуют «структурную» РНК, например молекулы тРНК или рРНК. Каждый участок молекулы ДНК, на которой синтезируется активная молекула РНК, носит название «ген».

Гены, входящие в состав хромосом высших эукариот, могут содержать до 2 млн. нуклеотидных пар, а гены, размер которых превышает 100000 нуклеотидных пар, встречаются довольно часто (табл. 9-1). Между тем для кодирования белка среднего размера (содержащего от 300 до аминокислотных остатков) требуется всего лишь 1000 нуклеотидных пар. Большая часть избыточных участков состоит из длинных последовательностей некодирующей ДНК, которая перемежается относительно короткими сегментами кодирующей ДНК. Кодирующие последовательности называются экзонами, а разделяющие их некодирующие последовательности - нитронами. Молекула РНК, синтезированная с такого гена, носит название первичного транскрипта. Для того чтобы первичный транскрипт превратился в мРНК, он подвергается процессиигу.

При этом некодирующие последовательности удаляются, а кодирующие как бы «сращиваются» в единую молекулу (сплайсинг РНК).

Большие гены состоят из длинной вереницы чередующихся экзонов и нитронов. Кроме того, в каждом гене имеются регуляторные последовательности ДНК, с которыми связываются регуляторные белки, контро- Таблица 9-1. Размер некоторых генов человека в тысячах нуклеотидов Размер гена 1) Размер мРНК Число нитронов -глобин 1,5 0,6 Инсулин 1,7 0,4 Протеинкиназа С 11 1,4 Альбумин 25 2,1 Каталаза 34 1,6 Рецептор ЛНП 45 5,5 Фактор VIII 186 9 Тироглобулин 300 8,7 Дистрофии1) более 17 более 2000 1) В указанный размер гена входит его транскрибируемая часть вместе с близлежащими регуляторними последовательностями ДНК (По данным Victor McKusick).

2) Измененная форма этого гена вызывает мышечную дистрофию Дюшенна.

Рис. 9-7. Организация генов в типичной хромосоме позвоночных. Белки, связывающиеся с ДНК в регуляторных областях, определяют транскрипцию гена. Регуляторные последовательности, как правило, расположены на 5'-конце гена (как показано на схеме), но могут находиться в нитронах, экзонах и на З'-конце. При образовании молекул информационной РНК (мРНК) последовательности интро-нов из первичных транскриптов РНК удаляются. Приведенные здесь данные по количеству тенов в хромосоме соответствуют минимальной оценке.

лирующие транскрипцию. Многие регуляторные последовательности расположены перед (на 5'-конце) сайтом, с которого начинается транскрипция РНК, однако они могут также находиться в нитронах, за (на З'-конце) сайтом, где кончается транскрипция РНК или даже внутри экзонов. Типичная хромосома позвоночных схематически изображена на рис. 9-7, кроме того, на рисунке представлен один из многих генов, входящих в ее состав.

9- 9.1.5. Сравнение ДНК родственных организмов позволяет выявить в ней консервативные и неконсервативные области [5] По мере совершенствования методов определения нуклеотидной последовательности ДНК все более реальной представляется идентификация всех 3 х 109 нуклеотидов, составляющих геном человека. Однако необходимы специальные подходы, чтобы выявить ту небольшую часть последовательности (менее 10%), которая собственно и является смысловой. Один из путей решения это задачи - определение последовательности соответствующих областей генома родственного вида, например, мыши. Полагают, что человек и мышь произошли от общего предка около 80 х. 106 лет назад. Это дейстаточно продолжительное, время дм того, чтобы примерно два из каждых трех нуклеотидов подверглись изменениям при случайных мутациях. Следовательно, те немногие области, которые в обоих геномах оказались схожими (консервативные последовательности), представляют собой именно те участки, в которых мутация приводит к повреждению активности. Организмы, несущие такую вредную мутацию, очевидно, при естественном отборе будут элиминироваться. Неконсервативные области соответствуют некодирующей ДНК, расположенной между генами и входящей в состав нитронов. Последовательности такой ДНК не оказывают столь сильного влияния на функцию.

Напротив, консервативные участки содержат функционально важные экзоны и регуляторные области. Изучая результаты столь длительного «эксперимента», поставленного природой, можно выявить наиболее интересные области геномов. Сравнение нуклеотидной последовательности ДНК у разных видов свидетельствует о том, что у позвоночных более чем 90% ДНК не имеет существенного значения.

9.1.6. Хромосомы содержат разнообразные белки, связанные с определенными последовательностями ДНК Информация, хранящаяся в ДНК, организуется, реплицируется и считывается разнообразными белками, связывающимися с ДНК (ДНК-связанные белки). Некоторые из этих белков связываются по всей длине молекулы относительно неспецифически и участвуют в ее упаковке, не мешая при этом функционированию других белков. Эти упаковывающие белки будут обсуждены ниже (см. разд. 9.1.17). Другие белки объединяются с определенными короткими последовательностями ДНК, которые часто в ходе эволюции оказываются в различных геномах консервативными (см. рис. 10-34). Такие сайт-специфические ДНК-связывающие белки имеют самые разнообразные функции. Некоторые из них, вероятно, участвуют в сворачивании длинной молекулы ДНК с образованием различных доменов, другие способствуют инициации репликации ДНК;

многие из них контролируют транскрипцию генов. Каждый тип клеток многоклеточного организма содержит разнообразную смесь таких регуляторних белков. Действуя совместно, они определяют характер экспрессии различных генов (см. разд. 10.2.8).

Контроль экспрессии генов обсуждается в гл. 10. Здесь мы рассмотрим только вопрос о том, каким образом белок связывается с ДНК. Все до сих пор описанные сайт-специфические ДНК-связывающие белки узнают свою последовательность с внешней стороны молекулы и ассоциируют с ДНК, не влияя на спаренные основания. Это оказывается возможным благодаря тому, что части каждой нуклеотидной пары расположены в двух отдельных «бороздках» - большой и малой (рис. 9-8, А). В большой бороздке каждая из четырех возможных пар (А-Т, Т-А, G-C или C-G) однозначно узнается по специфическому расположению выступающих атомов, малая бороздка менее информативна в этом Рис. 9-8. Узнавание ДНК-связывающими белками определенных пар оснований в составе молекулы ДНК. А. Двойная спираль ДНК (В форма): цветом выделены большая и малая бороздки. «Края» каждой пары оснований выступают в эти бороздки, что дает возможностъ ДНК связывающим белкам опознавать различные последовательности нуклеотидов, образуя с ними водородные связи. Предполагаемое взаимодействие аминокислоты и А-Т-пары схематически изображено на Б (вид вдоль оси спирали). Расположение водородных связей донорных и акцепторных групп в этой бороздке различно для каждого из четырех возможных сочетаний нуклеотидных пар. Необходимо отметить, что В-форма спирали ДНК правозакручена (см. рис. 3-4). Сайт-специфические ДНК-связывающие белки могут узнавать последовательности длиной от 4 до нуклеотидных пар.

отношении. Как будет показано ниже, аминокислоты в связывающемся участке сайт-специфического белка расположены таким образом, чтобы усилить электростатические и водородные связи, возникающие при взаимодействии белка и определенной последовательности ДНК. Как и ожидалось, большая часть водородных связей с нуклеотидными парами, по-видимому, приходится на большую бороздку. Схема взаимодействия между боковой аминокислотной цепью и одной парой оснований в этой бороздке представлена на рис. 9-8, Б.

10- 10- 9.1.7. Уменьшение подвижности в геле позволяет выявить сайт-специфические ДНК-связываюшие белки в экстрактах клеток [6] Молекула ДНК обладает высоким отрицательным зарядом и, следовательно, в электрическом поле быстро движется к положительному электроду. При электрофорезе в полиакриламидном геле молекулы ДНК разделяются по размеру, так как меньшие молекулы легче и быстрее проходят через поры геля. Молекулы белка, связавшись с ДНК, вызывают уменьшение подвижности ее молекул в геле. Чем больше связавшийся белок, тем медленнее движется связанная с ним ДНК. Это явление лежит в основе метода, регистрирующего сдвиг подвижности в теле. С помощью этого метода удается обнаруживать даже следовые количества сайт-специфического ДНК-связывающего белка. Короткие фрагменты ДНК, длина и последовательность которых известна (полученные либо при клонировании ДНК, либо путем химического синтеза), метят радиоактивной меткой и смешивают с экстрактом клеток;

полученную смесь наносят на полиакриламидный гель и проводят электрофорез. Если фрагмент ДНК соответствует области хромосомы, с которой связываются многие сайт-специфические белки, то при радиоавтографии выявляется серия полос, обладающих разной подвижностью. Белки, связанные с ДНК в каждой из полос геля, можно отделить, фракционируя затем клеточные экстракты (рис. 9-9).

Рис. 9-9. Замедление в геле. Принцип метода схематически изображен на рис. 9-9, А. Экстракт, полученный из линии клеток, продуцирующих антитела, смешивают с радиоактивными фрагментами ДНК, содержащими последовательность от точки —131 до + (относительно сайта инициации транскрипции в положении + 1) гена, кодирующего легкую цепь соответствующей молекулы антитела.

Воздействие белков, входящих в состав экстракта, на подвижность фрагмента ДНК определяют методом электрофореза в полиакриламидном геле с последующей радиоавтографией. Свободные фрагменты ДНК быстро передвигаются к концу геля, тогда как фрагменты, связанные с белком, задерживаются. Обнаружение шести зон с замедленным движением указывает на присутствие в экстракте шести различных сайт-специфических ДНК-связывающих белков (обозначенных С1-С6). На схеме Б экстракты фракционировали с помощью стандартной хроматографической методики, каждую фракцию смешивали с радиоактивным фрагментом ДНК, наносили на одну дорожку полиакриламидного геля и анализировали далее, как указано на схеме А. (Б-с изменениями из С. Scheidereit, A. Heguy, R.G. Roeder, Cell 51: 783-793, 1987.) 9.1.8. Сайт-специфические ДНК-связывающие белки можно выделить и охарактеризовать, используя их сродство к ДНК [7] Впервые сайт-специфические белки, связывающиеся с ДНК, были обнаружены у бактерий. С помощью генетического анализа у этих микроорганизмов удалось доказать существование регуляторных белков, таких как репрессор lac-оперона, репрессор бактериофага лямбда и сго белок. Эти белки были выделены при последовательном фракционировании клеточных экстрактов на хроматографических колонках, а специфически связывающие их участки ДНК определены методом футприн-тинга (см. разд. 4.6.6). Аналогичными методами были выделены и охарактеризованы первые сайт-специфические ДНК-связывающие белки у эукариот: Т-антиген вируса SV40, фактор транскрипции TF11IA и рецептор стероидного гормона.

В настоящее время для выделения сайт-специфических ДНК-связывающих белков разработаны гораздо более совершенные методы.

Процедура обычно начинается с определения сдвига подвижности в геле. Благодаря этому можно выяснить, с каким именно участком на фрагменте ДНК связывается неизвестный белок в клеточном экстракте (см. рис. 9-9). Затем химическим способом синтезируется соответствующий этому связывающему участку двухцепочечный олигонуклеотид, который можно использовать двумя способами. При аффинной хроматографии олигонуклеотид связывают с нерастворимым пористым носителем, например агарозой, а затем таким нагруженным носителем заполняют колонку, которая селективно связывает белки, узнающие определенные последовательности ДНК. Этот относительно нетрудоемкий метод позволяет добиться 10000-кратной очистки.

Большинство белков, связывающихся с определенной последовательностью ДНК, присутствуют в клетках высших эукариот в количестве нескольких тысяч копий на клетку (что соответствует примерно одной молекуле из 50000 молекул всех белков клетки). Этого количества оказывается достаточно, чтобы методом аффинной хроматографии выделить белок той степени чистоты, которая позволяет определять у него аминоконцевую последовательность аминокислот. Это дает возможность синтезировать олигонуклеотидный зонд и с его помощью идентифицировать соответствующий клон кДНК. Имея в руках нужный клон кДНК, исследователь может определить полную аминокислотную последовательность белка и получать его в неограниченных количествах. В некоторых случаях клон кДНК, кодирующий сайт-специфический ДНК связывающий белок, легче получить более простым путем, используя второй метод, еще более эффективный, чем аффинная хроматография ДНК.

Этот метод начинается с получения библиотеки кДНК в соответствующим образом подобранном векторе. Отдельная колония бактерий (если экспрессирующий вектор - плазмида) или негативная колония (если вектор-бактериофаг) будет продуцировать большое количество белка, закодированного в содержащейся в ней кДНК. Чтобы найти ту редкую колонию, которая образует нужный белок, олигонуклеотид, содержащий соответствующий сайт связывания, метят радиоактивной меткой и используют его в качестве зонда на бумаге, куда нанесены аликвоты отдельных колоний (см. разд. 5.6.5). Те немногие колонии, которые синтезируют белки, специфически связывающие меченый олигонуклеотид, выращивают отдельно и испытывают дальше, чтобы найти среди них ту единственную, продуцирующую искомый белок.

Этот высоко эффективный метод разработан сравнительно недавно и поэтому на сегодняшний день из многих сотен сайт-специфических ДНК-связывающих белков, которые, как полагают, присутствуют в клетках высших эукариот, удалось выделить лишь небольшую часть.

9.1.9. Многие сайт-специфические ДНК-связывающие белки имеют одинаковые области [8] Фактор транскрипции III A (TFIIIA) эукариот необходим для инициации синтеза небольших рибосомных РНК (5S-pPHK);

он связывается в виде мономера с последовательностью ДНК размером около 50 нуклеотид-ных пар, расположенной почти в середине очень маленького гена 5S-pPHK. Аминокислотная последовательность этого белка дает основание предполагать, что он организован в виде серии девяти повторяющихся доменов, каждый из которых содержит по 30 аминокислот, сложенных в одну структурную единицу вокруг атома Zn, связывающего два остатка цистеина и два-гистидина. Другие белки, предположительно участвующие в регуляции генов, содержат меньшее число доменов со сходной структурой. Такие домены обычно называют «цинковыми пальцами». Белки, их содержащие, функционируют на ранних стадиях развития дрозофилы, более пяти таких белков участвуют в процессе скрещивания дрожжей;

к этому же классу относится обычный фактор транскрипции млекопитающих Spl (см. разд. 10.2.8) и большая группа белков-рецепторов стероидного гормона (см. рис. 10-25).

Пока не определена трехмерная структура белков этого типа, и, следовательно, остается неизвестным, как они связываются с ДНК. На рис. 9-10 представлена гипотетическая схема, которую подтверждают данные футпринтинга.

9.1.10. Симметричные димеры ДНК-связывающих белков часто узнают симметричные последовательности нуклеотидов [8] Для определения трехмерной структуры белка обычно необходим дифракционный рентгеноструктурный анализ больших кристаллов, получение которых часто представляет собой нелегкую задачу. Один из первых регуляторных белков, изученных таким методом - сго-белок бактериофага лямбда. Это небольшой белок (66 аминокислотных остатков), который не имеет «цинковых пальцев», однако, связывается с кластером специфических последовательностей ДНК, каждая из которых содержит Рис. 9-10. Семейство сайт-специфических ДНК-связывающих белков типа «цинковые пальцы» А. Упрощенная схема строения ДНК связы-вающего домена;

кружочками обозначены отдельные аминокислоты. В настоящее время считается, что полипептидная цепь, образующая каждый «палец», имеет сложную глобулярную структуру. Б. Схема взаимодействия четырех «цинковых пальцев» с последовательностью ДНК.

Согласно этой модели, каждый палец узнает определенную последовательность, состоящую примерно из пяти нуклеотидных пар. (С изменениями из A. Klug, D. Rhodes, Trends in Biochem. Sci. 12: 464-469, 1987.) Рис. 9-11. Специфическая последовательность ДНК, узнаваемая сrо-белком бактериофага лямбда. Выделенные цветом нуклеотиды в этой последовательности расположены симметрично, что позволяет половине димерного белка распознавать каждую половину данного сайта.

по 17 нуклеотидных пар. Одна из этих последовательностей приведена на рис. 9-11. Выделенная цветом часть последовательности является симметричной, т.е. при повороте спирали ДНК на 180° она не изменится. Симметрией обладают и многие участки связывания сайт-специфических белков. Такую симметрию можно объяснить исходя из структуры сrо-белка, определенной методом дифракции рентгеновских лучей.

Сrо-белок представляет собой симметричный гомодимер, который связывается с ДНК способом, изображенным на рис. 9-12. В связи с тем, что ось симметрии второго порядка последовательности белка расположена на оси симметрии второго порядка последовательности ДНК, каждая из одинаковых половин димера может образовывать одинаковые связи с теми нуклеотидными парами ДНК, которые она узнает. Во всех случаях, когда последовательность связывающего сайта ДНК симметрична, белок, узнающий ее, скорее всего оказывается димером или симметричным образованием большего размера.

9.1.11. Сrо-белок принадлежит к семейству ДНК-связывающих белков, построенных по принципу «спираль-виток спираль» [9] Сайт мономера белка его, контактирующий с ДНК, образован последовательностью из 20 аминокислот, формирующих две -спирали, которые разделены коротким витком. Такой фрагмент спираль-виток-спираль обнаружен и у ряда других бактериальных сайт-специфических ДНК-свя-зывйющих белков, трехмерные структуры которых известны (рис. 9-13). Более того, анализ аминокислотных последовательностей (обнаруженная при этом гомология) свидетельствует о том, что такой фрагмент присутствует и в составе других белков, участвующих в регуляции активности генов у бактерий, дрожжей и дрозофилы.

Все белки, содержащие структуру спираль-виток-спираль, изображенные на рис. 9-13, представляют собой симметричные гомодимеры.

Одна из -спиралей в каждом мономере, называемая узнающей, располагается в большой бороздке, где выступающая часть ее аминокислотной последовательности образует водородные связи с определенными основаниями ДНК. Важно, что две идентичные узнающие спирали в димере разделены только одним витком цепи ДНК (3,4 нм). Такое разделение дает возможность каждой узнающей спирали одинаковым образом взаимодействовать с симметрично расположенными парами оснований в участке связывания (рис. 9-14).

Рис. 9-12. Схема связывания сrо-белка бактериофага лямбда с ДНК. Белок представляет собой симметричный гомодимер, который связывается с симметричной последовательностью ДНК, представленной на рис. 9-11. Способ связывания с ДНК определен путем анализа молекулярных моделей. А. Проволочная модель молекулы белка, совмещенная со схематическим изображением двойной спирали ДНК. Б.

Пространственная модель ДНК-белкового комплекса, показанного на А. На этой модели каждая аминокислота в белковой цепи изображена в виде сферы;

цветные шары представляют остов ДНК. (С любезного разрешения Brian W. Matthews по W. F. Ander-son, D. H. Ohlendorf, Y. Takoda and B.

W. Matthews, Nature 290: 754-758, 1981, © 1981, Macmillan Journals Ltd.) Рис. 9-13. Семейство димерных ДНК-связывающих белков. Эти регуляторные белки работают в бактериальных системах: репрессор лямбда и cro-белок контролируют экспрессию генов бактериофага лямбда, а белок активатор катаболизма (САР) регулирует экспрессию ряда генов Е. coli, которые могут включаться лишь в отсутствие глюкозы. В каждом случае рентге-ноструктурный анализ выявил наличие двух копий узнающей спирали (коричневый цилиндр), разделенных одним витком спирали ДНК (3,4 нм).

Рис. 9-14. Спаривание боковой цепи аминокислот с парами оснований ДНК при узнавании нуклеотидной последовательности регуляторним белком-репрессором, влияющим на активность гена бактериофага 434. Комплекс ДНК с этим белком изучали методом рентгеноструктурного анализа. (С изменениями из J. Е. Anderson, M. Ptashne and S.C. Harrison, Nature 326: 846-852, 1987.) Молекула аллостерического эффектора, связываемая белком такого типа, может значительно повышать или снижать его сродство с ДНК, меняя расстояние между двумя узнающими спиралями. Аналогичным образом аллостерические эффекторы могут изменять сродство с ДНК других типов белков, регулирующих активность генов. Подобные изменения имеют большое значение при включении и выключении генов в ответ на изменения в окружающей среде (см. разд. 10.2.10).

9.1.12. Молекулы белков при связывании с ДНК частоконкурируют или кооперируются друг с другом [10] Большинство генетических процессов зависит от взаимодействия между молекулами белков, которые одновременно связываются с близлежащими сайтами ДНК. В простейшем случае два сайт-специфических белка, участки связывания которых частично или полностью перекрываются, конкурируют друг с другом за место на спирали ДНК (рис. 9-15, А). Например, белок-репрессор может подавлять транскрипцию гена, блокируя связывание активирующего белка с ДНК. Однако белки могут и помогать друг другу более прочно удерживаться на ДНК. Такое кооперативное связывание может происходить как между двумя различными молекулами белка (рис, 9-15, Б), так и между двумя копиями молекул одного типа. В последнем случае белки, как правило, связываются по типу «все или ничего» и образуют на ДНК кластеры. При повышении концентрации этих белков, их связывание с ДНК резко возрастает (рис. 9-15, В). В качестве примера кооперативно связывающихся белков такого типа можно привести спираль-дестабилизируюгций белок, белок гесА (гл. 5) и гистон H1.

Механизм взаимодействия при кооперативном и конкурентном связывании на примере двух различных сайт-специфических ДНК связывающих белков будет обсуждаться дальше в связи с проблемой регуляции транскрипции (гл. 10).

9.1.13. Геометрия спирали ДНК зависит от последовательности нуклеотидов [11] В течение 20 лет после открытия двойной цепи ДНК в 1953 г. полагали, что эта молекула имеет одинаковую структуру на всем своем протяжении, причем поворот спирали между соседними парами оснований составляет точно 36° (10 нуклеотидных пар на поворот спирали).

Последующие эксперименты выявили, что ДНК гораздо более полиморфна, а варианты ее формы определяются последовательностью Рис. 9-15. Примеры конкурентного и кооперативного взаимодействия при связывании белков с ДНК. А. Конкуренция происходит, когда связывание белков X и Y со специфическими сайтами ДНК взаимно исключается. Б. Кооперация имеет место, если связывание одного белка с ДНК повышает сродство другого белка к близлежащему сайту. В. Самокооперативность приводит к связыванию отдельного белка в виде кластера молекул, в результате связывание с какой-либо областью ДНК происходит по типу «все или ничего».

Рис. 9-16. Три формы спирали ДНК, каждая из которых содержит 22 нуклеотидные пары. Все эти структуры образованы двумя антипараллельными цепями ДНК, которые удерживаются вместе благодаря спариванию комплементарных нуклеотидов. Каждая форма показана сбоку и сверху. Сахарно-фосфатный остов и пары оснований выделены разными оттенками серого: темно-серым и светло-серым, соответственно. А.

В-форма ДНК, которая чаще всего встречается в клетках. Б. А-форма ДНК, которая становится преобладающей при высушивании любой ДНК, независимо от ее последовательности. В. Z-форма ДНК: такую форму приобретают некоторые последовательности при определенных условиях. В форма и А-форма-правоза-крученные, а Z-форма -левозакру-ченная (см. рис. 3-4). (С любезного разрешения Richard Feldmann.) нуклеотидов. Форма спирали оказывает значительное влияние на ее взаимодействие с белками.

Существует несколько типов спирали ДНК, причем в некоторых случаях изменения в ее структуре оказываются весьма значительными.

Самая стабильная форма ДНК - это правозакрученная спираль В-формы (рис. 9-16, А). Изучение рассеяния рентгеновских лучей показало, что небольшие области последовательности образуют правозакрученную спираль, отличающуюся от В-формы и известную как А-форма ДНК. Для этой формы характерен более сильный наклон оснований, в результате чего спираль оказывается более короткой и более широкой, чем в случае В формы (рис. 9-16, Б). Вероятно, в некоторых случаях это имеет большое значение, например, когда нить ДНК спаривается с РНК в затравочной части фрагментов Оказаки (дополнительная гидроксиль-ная группа рибозы не позволяет спирали РНК-ДНК образовывать В-форму). По тем же причинам А-форму имеет и спираль РНК-РНК. А-форма характерна для спиральных областей шпилечных структур всех одноцепочечных РНК и, следовательно, чрезвычайно важна для жизнедеятельности клетки. Биологическая роль третьей спиральной формы ДНК менее ясна.

Последовательности ДНК, состоящие из чередующихся пуринов и пиримидинов (GCGCGCGC) легко образуют левозакручен-ную двойную спираль, известную как Z-форма ДНК (рис. 9-16, В). Считается, что короткие области с такой структурой редко встречаются в хромосоме. Можно предположить, однако, что они особым образом распознаются белками, а значит, тоже способны играть существенную роль в жизнедеятельности клетки.

А- и Z-формы ДНК, которые сильно отличаются от стабильной В-структуры, весьма редки, но менее сильные изменения В-цепи являются обычными, и, несомненно, имеют важное биологическое значение. У нуклеиновых кислот, находящихся в В-форме, наклон оснований и угол поворота спирали между их парами существенно зависят от того, какие именно нуклеотиды соседствуют друг с другом в последовательности.

В результате атомы спирали отклоняются от идеального положения. Даже ДНК-связывающие белки, которые не обладают способностью специфически узнавать определенные нуклеотидные пары, могут «чувствовать» такие искажения.

Значение вариаций в структуре ДНК-спирали для связывания сайт-cпецифических белков четко показано на примере репрессора бактерио- Рис. 9-17. Сравнение конформации ДНК в составе комплекса с репрессором бактериофага 434 (справа) с идеальной спиралью В-формы (слева). Фосфаты ДНК, контактирующие с белком, обозначены цветными кружочками. Углы, образующиеся при повороте спирали между парами оснований, указаны для искаженной спирали. Считается, что отклонения от идеальной спирали необходимы для более тесного связывания белка.

Энергия связывания частично зависит от «неспецифического» взаимодействия между NH-группами и фосфатами ДНК. Такие, способствующие связыванию контакты, может образовывать лишь несколько искаженная спираль В-формы: середина малой бороздки в области связывающего сайта должна быть слегка сужена, и спираль немного изогнута. Поскольку для получения такого изгиба и уплотнения спирали в центральной области должны присутствовать АТ-пары, их замена на GC значительно ослабляет связывание белков. Таким образом, пары оснований, расположенные в центре, узнаются репрессором даже если белок не контактирует непосредственно с этими основаниями (см. также рис. 9-14). (С изменениями из J.E.

Anderson, M. Ptashne and S.C Harrison, Nature 326: 846-852, 1987.) Рис. 9-18. Электронная микрофотография фрагментов, несущих сильно изогнутый сегмент спирали ДНК. Фрагменты ДНК, выделенные из миниколец кинетопластов трипаносоми Crithidia fasciculata содержит всего лишь 200 пар нуклеотидов, однако некоторые из них изогнуты так, что весь фрагмент замыкается в кольцо. Нормальная спираль ДНК такой длины может при изгибе образовать в среднем лишь четверть кольца (один равномерный правый виток). (По J. Griffith, М. Bleyman, С. A. Rauch, P. A. Kitchin and P. T. Englund, Cell 46: 717-724, 1986.) фага X. С помощью рентгеноструктурного анализа установлено, что ДНК при связывании с этим белком приближается к идеальной В-форме (рис.

9.17).

9- 9.1.14. Некоторые последовательности ДНК сильно изогнуты [12] Спираль ДНК обладает достаточной конформационной свободой, чтобы выдерживать пружинящие изгибы и вращательные движения.

Однако в связи с тем, что эта спираль обладает и жесткостью, для того чтобы она могла изогнуться под углом 90°, в молекуле ДНК должно содержаться приблизительно 200 нуклеотидных пар. Некоторые последовательности ДНК оказываются необычайно гибкими и намного легче остальных принимают изогнутую форму.

Есть последовательности ДНК, которые склонны всегда оставаться изогнутыми. К числу последних принадлежат последовательности, в которых через каждые 10-11 нуклеотидов встречаются повторы AAAAANNNNN (где N-любой нуклеотид) (рис. 9-18). Сильный изгиб таких молекул представляет собой крайнюю форму вариаций структуры спирали. Еще не ясно, обусловлен ли такой изгиб суммарным вкладом небольших наклонов между определенными парами оснований, большим изгибом в месте соединения коротких областей или же обоими типами воздействий.

Даже если специфические последовательности, влияющие на изгиб спирали, отсутствуют, структуру ДНК в значительной мере может исказить связывание белков, принимающих участие в формировании высококонденсированных комплексов белка и ДНК.

9.1.15. Белки могут сворачивать ДНК в плотную спираль [13] Многие белки при связывании с ДНК изгибают ее, а если подобных ДНК-белковых связей много, то нить ДНК может сформировать плотную спираль вокруг белкового комплекса с образованием нуклеопротеиновой частицы. Известно, что у бактерий такие нуклеопротеиновые частицы образуются при связывании инициаторных белков с точкой начала репликации (см. разд. 5.3.9), а также при связывании ДНК с интегразой фага лямбда для катализа сайт-специфической рекомбинации (рис. 9-19). По-видимому, в таком сложном трехмерном соединении участвуют как конкурентное, так и кооперативное взаимодействия. Аналогичные типы взаимодействий используются при регуляции каталитической активности нуклеопротеиновых частиц, как показано на примере белкового комплекса, содержащего интегразу фага лямбда (рис. 9-20). В связи с тем, что при экспрессии эукариотических генов происходит связывание кластеров белков, регулирующих активность генов, Рис. 9-19. Схема комплекса ДНК—белок, образуемого интегразой фага лямбда, ферментом, осуществляющим встраивание ДНК бактериофага в хозяйскую хромосому Е. coli. Этот комплекс катализирует сайт-специфическую рекомбинацию, разрывая и воссоединяя спирали ДНК бактериофага лямбда и бактерии по определенным участкам, называемым сайтами прикрепления (см. рис. 5-66). (С изменениями по Е. Richet, P. Abcarian, Н.А. Nash, Cell 52: 9-17, 1988.) Рис. 9-20. Исключение бактериофага лямбда из хромосомы бактерии контролируется посредством кооперативного и конкурентного взаимодействия между сайт-специфическими ДНК-связывающими белками. Реакция катализируется интегразой фага лямбда и является противоположной по своему действию сайт-специфической рекомбинации, показанной на рис. 9-19. А. Общая схема реакции и некоторые участвующие в ней сайты связывания белков (указаны не все сайты). Для исключения необходимы разрыв и воссоединение двойной спирали ДНК в сайтах рекомбинации 1 и 2;

при этом образуется кольцевая хромосома фага лямбда. Int-интеграза фага лямбда, Xis-эксцизионаза фага лямбда, a IHF и FIS -белки, образуемые бактериальной клеткой-хозяином. Б. Активация исключения белком FIS;

указанные стадии, по-видимому, имеют место при низких концентрациях белков Int и Xis. Как показано, ряд белков при связывании сильно изгибают ДНК. Хотя белок Int катализирует реакцию сайт-специфической рекомбинации, его активность катализируется другими белками. (С любезного разрешения Arthur Landy.) с определенными регуляторными последовательностями ДНК, аналогичные белковые комплексы могут принимать участие в контроле транскрипции ДНК и у эукариот (см. рис. 10-23).

Очевидно, что любые комплексы, имеющие отношение к регуляции определенных генов, должны встречаться относительно редко. В структуре хромосом эукариот присутствует главным образом другой тип нуклеопротеиновых частиц;

речь идет о нуклеосоме, которая играет ведущую роль в упаковке и организации ДНК в клеточном ядре.

9.1.16. Гистоны - основные структурные белки хромосом эукариот [14] Наиболее изученные структурные белки хромосом - это несомненно гистоны, которые имеются только в эукариотическвх клетках.

Количество их в клетках столь велико, что у эукариот принято делить белки, связывающиеся с ДНК, на два класса: гистоны и негистоновые белки хромосом. Комплекс обоих классов белков с ядерной ДНК клеток эукариот известен под названием хроматин. Гистоны присутствуют в таких огромных количествах (около 60 млн. молекул каждого типа на клетку по сравнению с 10000 на клетку для типичного сайт-специфического белка), что их общая масса в хромосоме примерно равна содержанию ДНК.

Гистоны представляют собой относительно небольшие белки с очень Рис. 9-21. Аминокислотная последовательность гистона Н4-одного из нуклеосомных гистонов. Аминокислоты обозначены однобуквенными сокращениями, положительно заряженные аминокислоты выделены цветом. Как и в случае других нуклеосомных гистонов, протяженная аминоконцевая последовательность молекулы обратимо модифицируется в клетке путем ацетилироваиия отдельных остатков лизина.

Приведенная последовательность соответствует гистону Н4 быка. У гороха этот гистон имеет почти такую же аминокислотную последовательность, за исключением того, что в нем один остаток валина замещен на изолейцин, а один остаток лизина - на аргинин.

высоким содержанием положительно заряженных аминокислот (лизина и аргинина). Суммарный положительный заряд позволяет им прочно связываться с ДНК независимо от ее нуклеотидного состава. Скорее всего гистоны постоянно находятся в комплексе с ДНК и, следовательно, играют существенную роль во всех процессах, связанных с функционированием генома.

Пять типов гистонов можно разделить на две основные группы: 1) нуклеосомные гистоны и 2) НІ гистоны. Нуклеосомные гистоны - это небольшие белки (102-135 аминокислотных остатков), отвечающие за формирование нуклеосом. К ним относятся четыре гистона: Н2А, Н2В, НЗ и Н4. НЗ и Н4 образуют внутреннюю часть нуклеосомы и, как установлено, являются наиболее консервативными из известных белков: например, аминокислотные последовательности гистонов Н4 у гороха и коровы различаются всего лишь по двум аминокислотным остаткам (рис. 9-21). Такая эволюционная стабильность предполагает, что почти каждая аминокислота, входящая в состав таких белков, играет важную роль, и изменение в любом положении может оказаться вредным для клетки.

Размер гистонов НІ больше (около 220 аминокислотных остатков), и эти белки оказались эволюционно менее стабильными, чем нуклеосомные гистоны. У дрожжей Saccharomyces cerevisiae HI, по-видимому, вообще отсутствует (см. разд. 10.3.15).

9- 9- 9.1.17. Связывание гистонов с ДНК приводит к образованию нуклеосом - частиц, представляющих собой единицу хроматина [15] Если бы оказалось возможным растянуть нить ДНК каждой хромосомы человека, ее длина в тысячи раз превышала бы размер ядра.

Гистоиы играют важную роль в упаковке очень длинной молекулы ДНК в ядре, диаметр которого составляет всего несколько микрон. Эти белки важны и по другой причине. Известно, что ДНК может быть упакована по-разному и способ упаковки какой-либо области генома в хроматин в определенной клетке может, по-видимому, влиять на активность содержащихся в этой области генов (см. разд. 10.3.8).

Начало углубленному изучению структуры хроматина положило открытие в 1974 г. его основной структурной единицы-нуклеосомы.

Благодаря наличию нуклеосом частично декомпактизованныи хроматин на электронных микрофотографиях напоминает нитки бус (рис. 9-22).

«Бусину»-нуклеосому можно отделить от длинной нити ДНК путем обработки препарата хроматина ферментами, расщепляющими ДНК.

Ферменты, вызывающие деградацию как ДНК, так и РНК, называют нуклеазами, а ферменты, действующие только на ДНК,- дезоксирибонук леазами или ДНКазами. Нуклеаза, с помощью которой выделяют индивидуальные нуклеосомы, получена из клеток микрококков (микрококковая нуклеаза). При непродолжительной обработке этим ферментом расщепляются только те участки ДНК, которые расположены между нуклеосомами;

остальная ДНК защищена связанными с ней гистонами, вследствие чего вся молекула полимера распадается на двухцепочечные фрагменты длиной 146 пар оснований. Эти ДНК-гисто-новые комплексы на электронных микрофотографиях выглядят как частицы дисковидной формы, имеющие диаметр около 11 нм. Каждая нуклеосома содержит набор из восьми молекул гистонов - по две молекулы каждого из четырех высококонсервативных нуклеосомных гисто- Рис. 9-22. Электронные микрофотографии хроматиновых нитей до и после обработки, приводящей к деконденсации нативной структуры и образованию «бус на нитке». А. Нативная структура, характерная для основных хроматиновых фибрилл диаметром 30 нм. Б. Деконденсированная форма хроматиновой фибриллы «бусы на нитке», показанная при том же увеличении. Схематическое изображение обеих форм хроматина приведено на рис. 9-38. Электронные микрофотографии получены с помощью модифицированной процедуры, описанной на рис. 9-71. (А-с любезного разрешения Barbara Hamkalo, Б-с любезного разрешения Victoria Foe.) нов: Н2А, Н2В, НЗ и Н4. Этот гистоновый октамер является по сути белковой сердцевиной нуклеосомы или ее гистоновым кором, на который накручивается фрагмент двухцепочечной ДНК (рис. 9-23).

В интактном хроматине ДНК тянется в виде непрерывной нити от нуклеосомы к нуклеосоме. Каждая нуклеосомная бусина отделена от следующей линкериой последовательностью, длина которой варьирует от 0 до 80 нуклеотидных пар. В среднем нуклеосомные частицы (нуклеосом-ный кор плюс линкерная последовательность) повторяются через каждые 200 нуклеотидов (см. рис. 9-23). Таким образом, эукариотический ген, состоящий из 10000 нуклеотидных пар, связан с 50 нуклеосомами, а в каждой клетке человека, ДНК которой насчитывает в х 109 нуклеотидных пар, содержится 3 х 107 нуклеосом.

9- 9.1.18. Некоторые нуклеосомы расположены на ДНК неслучайным образом [16] Опыты, проведенные in vitro с изолированным хроматином, дают основание полагать, что при физиологических условиях гистоновые октамеры остаются зафиксированными в одном положении, поскольку их тесная связь с нуклеиновой кислотой препятствует перемещению по спирали ДНК. Остается открытым вопрос, случайно или нет расположены эти октамеры на ДНК (случайность следует понимать так, что в одной клетке определенная последовательность ДНК плотно обвита вокруг гистонового октамера, а в другой - та же последовательность отделяет друг от друга бусины нуклеосом).

Для того чтобы определить положение нуклеосом в клетках, нужно обработать их ферментом или реагентом, вносящим разрывы в ДНК, а затем изучить защищенные от воздействия участки методом, аналогичным футпринтингу ДНК (см. разд. 4.6.6). Хотя большинство нуклеосом, по видимому, расположены случайным образом, известны поразительные примеры из неслучайного расположения. Так, у дрожжей Saccharomy-ces cerevisiae 15 нуклеосом строго фиксированным образом окружают ДНК центромеры (последовательность CEN) (разд. 13.5.3). Единственный сайт локализации имеет и нуклеосома, связанная с очень маленьким по размеру геном 5S-pPHK. Известно также, что по крайней мере одна нуклеосома расположена перед точкой начала синтеза РНК -глобина, Чем же объясняется такое неслучайное расположение нуклеосом? Показано, что в некоторых случаях (например, для нуклеосом, связанных с генами 5S-pPHK) смесь четырех очищенных гистонов, составляющих нуклеосому, in vitro образует ее точно на том же месте, где она расположена in vivo. Возможно, причина заключается в том, что нуклеосомы стремятся связаться таким образом, чтобы максимально заполнить богатую AT малую бороздку ДНК. Такое предпочтение вызвано тем, что двойную спираль ДНК трудно уложить двумя плотными витками вокруг гистонового октамера, и для этого требуется значительное уплотнение на малой бороздке спирали ДНК (рис. 9-24). Как установлено на примере белка репрессора бактериофага (см. рис. 9-17), кластер, состоящий из двух или трех пар AT и расположенный в малой бороздке, облегчает возникновение такого уплотнения. На характер расположения нуклеосом должны влиять и другие неизвестные пока свойства последовательности ДНК.

Рис. 9-23. Строение нуклеосом. Нуклеосомные частицы состоят из двух полных витков ДНК (83 нуклеотидных пары на виток), закрученных вокруг кора, представляющего собой гистоновый октамер, и соединяются между собой линкерной ДНК. Нуклеосом-ная частица выделена из хроматина путем ограниченного гидролиза линкерных участков ДНК микрококковой нуклеазой. В каждой нуклеосомнои частице фрагмент двойной спирали ДНК, имеющий в длину 146 пар оснований, закручен вокруг гистонового кора. Этот белковый кор содержит по две молекулы каждого из гистонов Н2А, Н2В, НЗ и Н4. Полипептидные цепи гистонов насчитывают от 102 до 135 аминокислотных остатков, а общий вес октамера составляет приблизительно 100000 Да. В деконденсированной форме хроматина каждая «бусина» связана с соседней частицей нитевидным участком линкерной ДНК.

Рис. 9-24. Изгиб ДНК на нуклеосоме. Спираль ДНК делает два оборота вокруг гистонового октамера, причем на каждый виток приходится по 83 нуклеотидные пары. Соотношение ДНК и белка на схеме приближено к реальному, чтобы показать сдавливание малой бороздки на внутренней части витка. Как указывалось выше (см. рис. 9-17), в узкой малой бороздке расположены главным образом АТ-пары оснований.

9.1.19. Определенные сайты на хромосомах не содержат нуклеосом [17] На некоторых участках ДНК нукдеосомы отсутствуют, несмотря на то, что длина этих участков составляет сотни нуклеотидных пар.

Такие области можно выявить, обработав ядро клетки следовыми количествами дезоксирибонуклеазы (ДНКаза 1). Использование минимальных концентраций фермента обеспечивает разрушение длинных областей безнуклеосомной ДНК, при этом короткие участки линкерной ДНК, расположенной между нуклеосомами, останутся целыми. Хроматин, обработанный таким образом, расщепляется преимущественно по участкам, которые, по-видимому, не содержат нуклеосом. Обычно такие сайты отстоят друг от друга на расстояние нескольких тысяч нуклеотидных пар.

Первое доказательство биологической значимости сайтов, сверхчувствительных к нуклеазе, было получено в экспериментах с вирусом SV40. Его хромосома помимо кольцевой ДНК содержит гистоны, продуцируемые клеткой-хозяин ом. В составе этой хромосомы имеется участок длиной 300 нуклеотидных пар, который свободен от нуклеосом и быстро разрушается под воздействием ДНКазы!. Этот участок расположен очень близко от последовательностей ДНК, с которых начинается как репликация ДНК вируса, так и синтез его РНК. Здесь же локализуются и несколько сайт-специфических ДНК-связывающих белков, которые защищают лишь небольшой участок этой молекулы, по видимому, совершенно лишенный нуклеосом, от нуклеазной деградации. Аналогичным образом, многие участки хроматина в клетке, обладающие гиперчувствительностью к ДНКазе, расположены в регуляторных областях генов (рис. 9-25);

в клетках, где эти гены активны, таких сайтов больше, нежели в других клетках. Полагают, что за удаление нуклеосом ответственны сайт-специфические ДНК-связывающие белки, которые принимают участие в регуляции эукариотических генов (см. рис. 9-27).

9.1.20. Нуклеосомы обычно упаковываются вместе, образуя при этом упорядоченные структуры высшего порядка [18] В живых клетках хроматин, вероятно, редко имеет вид растянутых «бус на нитке». Напротив, нуклеосомы связаны друг с другом и образуют регулярные структуры, в которых ДНК еще больше конденсирована. Электронномикроскопический анализ лизированных прямо на сеточке ядер показывает, что большая часть хроматина имеет форму фибрилл диаметром около 30 нм (рис. 9-22, А). Один из возможных способов упаковки нуклеосом в фибрилле хроматина диаметром 30 нм приведен на рис. 9-26. Эта модель представляет идеальную структуру. В действи- Рис. 9-25, Расположение сайтов, сверхчувствительных к нуклеазе (цветные стрелки), в регуляторних областях активных генов. Хотя такие участки хроматина обычно расположены на 5'-конце гена, как показано на этом рисунке на примере кластера генов, кодирующих гистоны (НІ, Н2А, Н2В, НЗ и Н4) у дрозофилы, эти сайты могут находиться и в других областях (см. рис. 10-40, А).

Рис. 9-26. Модель, предложенная для объяснения упаковки нуклеосомной нити в составе 30 нм-фибриллы, наблюдаемой под электронным микроскопом (см. рис. 9-22, А). А. Вид сверху. Б. Вид сбоку. При таком типе упаковки на нуклеосому приходится одна молекула гистона Н1 (не указано). Хотя место прикрепления гистона Н1 к нуклеосоме определено, расположение молекул Н1 на этой фибрилле неизвестно (см. также рис. 9-27).

тельности и разброс длин линкерных участков (что связано с определенным расположением нуклеосом), и наличие образовавшихся случайным образом безнуклеосомных последовательностей придают различным участкам 30 нм-фибриллы различные свойства (рис. 9-27).

Если бы хроматин типичной хромосомы человека существовал в виде фибриллы диаметром 30 нм, то в растянутом состоянии он имел бы длину 0,1 см, т.е. в 100 раз превышал бы размеры ядра. Микроскопический анализ интактных хромосом дает основание полагать, что внутри клеток происходит дальнейшая упаковка фибрилл диаметром 30 нм, при этом образуются нити хроматина толщиной 100 нм. Как расположены нуклеосомы в такой структуре, неясно.

9.1.21. Гистоновые белки Н1 помогают соединять нуклеосомы [19] В клетках млекопитающих имеется приблизительно шесть близкородственных вариантов (подтипов) гистонов Н1, которые несколько отличаются друг от друга по аминокислотной последовательности. По-видимому, эти молекулы ответственны за упаковку нуклеосом в фибриллу диаметром 30 нм. Молекулы Н1 имеют эволюционно консервативную глобулярную центральную область, соединенную с выступающими аминоконцевыми и карбоксильными «ручками», аминокислотная последовательность которых эволюционирует быстрее. Каждая молекула Н связывается своей глобулярной частью с уникальным сайтом на нуклеосоме, а «ручка», как полагают, захватывают область шире и контактируют с другими сайтами, расположенными на гистонах, входящих Рис. 9-27. Схема, иллюстрирующая прерывание правильной нуклеосом-нон структуры хроматина короткими областями, в которых ДНК необычно чувствительна к обработке ДНКазой І. В каждом из этих сайтов, сверхчувствительных к нуклеазе, нуклеосомы на ДНК, вероятно, замещены одним или несколькими сайт-специфическими ДНК-связывающими белками.

Рис. 9-28. Схема, показывающая, каким образом гистон Н1 (220 аминокислот) мог бы обеспечить контакт соседних нуклеосом.

Глобулярная часть Н1І связывается с каждой нуклеосомой вблизи сайта, в котором спираль ДНК входит и выходит с гистонового октамера. В присутствии гистона Н1 два полных витка ДНК (166 нуклеотидных пар) защищены от действия микрококковой нуклеазы (см. рис. 9-23). Однако до сих пор неизвестны ни трехмерная структура гистона Н1І, ни точные области взаимодействия выступающих аминоконцевых и карбоксиконцевых плечей этого гистона с нуклеосомой.

в состав соседних нуклеосом. При этом нуклеосомы стягиваются вместе, образуя регулярную повторяющуюся структуру (рис. 9-28). Согласно разным гипотезам, молекулы Н1 располагаются либо внутри хроматиновой 30 нм-фибриллы, либо снаружи.

Гистоновый октамер, образующий сердцевину каждой нуклеосомы, представляет собой симметричную структуру, а единственная молекула гистона Н1, связывающаяся с каждой нуклеосомой, симметрией не обладает. Таким образом, связывание молекул Н1 с хроматином создает локальную полярность (рис. 9-29).

Опыты, проведенные in vitro, показывают, что при связывании гистона H1 с ДНК к ней присоединяется сразу по восемь или более белковых молекул, что может служить примером кооперативного связывания. Весьма вероятно, что хроматин организован именно за счет кооперативных взаимодействий такого типа, а при их нарушении белками-регуляторами происходит локальная деконденсация хроматина (что и имеет место в области активных генов). Образовавшиеся области «активного хроматина», по-видимому, обладают необычайно низкой способностью связывать гистон Н1. В этом отношении ограниченная область хроматина может напоминать крошечный кристалл, который способен в ходе процессов, приводящих к активации гена, менять свою конформацию по типу все или ничего (рис. 9-30).

9.1.22. Нуклеосомы не мешают синтезу РНК [20] Результаты биохимических исследований свидетельствуют о том, что при транскрипции большая часть ДНК остается связанной с нуклеосомами;

электронномикроскопическое изучение препаратов распластанного по специальной методике хроматина обычно выявляет одинаковое расположение нуклеосом как в транскрибируемых, так и в нетранскриби- Рис. 9-29. Полярность хроматина обусловлена связыванием его с гистоном Н1. А. В отсутствие гистона Н1 хроматин не обладает полярностью, так как каждая нуклеосома симметрична. Б. В присутствии НІ хроматин становится полярным. Остается неизвестным, для чего нужна такого рода полярность.

Рис. 9-30. Отдельные участки хроматина могут вести себя как структурные единицы вследствие кооперативного характера упаковки нуклеосом с помощью гистона Н1. Приведенная схема показывает момент внезапной деконденсации такой единицы (фибриллы 30 им или более компактной структуры), вызванной внешним регуляторним сигналом. Деконденсация хроматина подобного типа может сопутствовать активации гена (см. рис. 9-50).

руемых областях (рис. 9-31). По-видимому, гистоновый октамер так прочно связан с ДНК, что остается на ней постоянно. Тем не менее трудно себе представить, как РНК-полимераза транскрибирует ДНК, связанную с нуклеосомой, не внося никаких временных изменений в строение нуклеосом.

По мере прохождения РНК-полимеразы, ДНК, входящая в состав нуклеосомы, вероятно, раскручивается с гистонового октамера, не освобождая его полностью. Возможно, вся нуклеосома временно приоткрывается, разделяя гистоновый октамер на две половинки. Не исключено также, что октамер остается интактным, но как бы «покачивается», давая пройти полимеразе (рис. 9-32). Очевидная трудность подобных маневров может служить объяснением столь высокой консервативности, которая характерна для аминокислотных последовательностей гистонов. Если бы нуклеосома представляла собой лишь устройство для наматывания ДНК, было бы логично ожидать большей вариабельности аминокислотной последовательности у нуклеосомных гистонов.

Как уже обсуждалось выше, большая часть нуклеосом клетки упакована в хроматиновую фибриллу 30 нм, которая затем подвергается дальнейшей конденсации. Трудно себе представить, что хроматин, находящийся в таком состоянии, транскрибируется РНК-полимеразой, и при этом упаковка нуклеосом, входящих в его состав, не подвергается значительным изменениям (рис. 9-33). Некоторые эксперименты дают основание предполагать, что отчасти такое изменение структуры имеет место (см. рис. 9-50).

Рис. 9-31. Участок хроматина в форме нуклеосомной нити. Показаны три нити хроматина, на одной из которых две молекулы РНК полимеразы транскрибируют ДНК. Большая часть хроматина в ядре высших эукариот не содержит активных генов, и, следовательно, свободна от РНК-транскриптов. Следует отметить, что нуклеосомы имеются как в транскрибируемых, так и в нетранскрибируемых областях, и что они связаны с ДНК непосредственно перед и сразу же за движущимися молекулами РНК-полимераз. (С любезного разрешения Victoria Foe.).

Рис. 9-32. Две возможные модели, объясняющие, как РНК-полимераза может транскрибировать хроматин, не вытесняя с него нуклеосомы. А. Транскрипция через временно приоткрытые полинуклеосомы. Б. Транскрипция через целый гистоновый октамер.

Рис. 9-33. Схема, представляющая молекулу РНК-лолимеразы, которая приближается к 30 нм-фибрил-ле хроматина. Число изображенных нуклеосом соответствует примерно 7000 парам оснований ДНК, что сопоставимо с геном среднего размера у человека (табл. 9-І).

Вся эта ДНК, не соскальзывая с гистоновых октамеров хроматина, каким-то образом должна оказаться доступной для действия РНК-полимеразы.

Очевидно, что для этого необходимо развернуть хроматин.

Заключение Ген - это последовательность нуклеотидов, представляющая собой единицу активности для образования молекулы РНК. Хромосома состоит из одной-единственной невероятно длинной молекулы ДНК, содержащей множество генов. В молекуле хромосомной ДНК имеются и другие типы нуклеотидных последовательностей, необходимых для ее функционирования: сайт инициации репликации и теломера (они обеспечивают репликацию молекулы ДНК), а также центромера (она служит для прикрепления ДНК к митотическому веретену). Гаплоидный геном человека содержит 3 х 109 нуклеотидных пар, которые распределены между 22 различающимися аутосомами и 2 половыми хромосомами.

По-видимому, лишь несколько процентов этой ДНК кодируют белки.

ДНК эукариот тесно связана с большим количеством гистонов, которые служат для образования множества повторяющихся частиц, содержащих белки и ДНК и называемых нуклеосомами. Нуклеосомы обычно упакованы вместе в регулярную структуру — фибриллу, имеющую диаметр 30 нм. Однако в областях ДНК, содержащих гены, гистоновый октамер, образующий каждую нуклеосому, должен конкурировать с разнообразными сайт-специфическими белками за участки связывания на ДНК. Такие участки, на которых нуклеосома замещена ДНК связывающими белками, обычно выявляются как области более активной транскрипции ДНК.

В эукариотической клетке имеются сотни самых разнообразных сайт-специфических ДНК-связывающих белков. Каждый из них узнает короткую последовательность ДНК по водородным связям с парами оснований и по форме спирали. Эти белки при образовании белковых комплексов на определенных участках ДНК вступают друг с другом в кооперативное или конкурирующее взаимодействие.

9.2. Структура хромосомы После обсуждения структуры ДНК и белков, входящих в состав хромосомы, рассмотрим ее строение в целом. Оказывается, ДНК в хромосоме не только упакована с помощью гистонов в регулярно повторяющиеся нуклеосомы, но, кроме того, хитроумным способом организована вместе с другими белками в серию субдоменов, обладающих различными свойствами. Эти структуры более высокого порядка являются удивительной особенностью хроматина эукариотических клеток;

до сих пор остается загадкой, как именно такие домены функционируют.

9.2.1. Хромосомы, по-видимому, состоят из серии петель [21] Диаметр ядра обычно не превышает 5 мкм (5 х 10 4 см). Поскольку упаковка ДНК в хроматиновой фибрилле позволяет уменьшить ее линейные размеры до 1 мм, должны существовать другие, более высокие, уровни компактизации. Один из принципов дальнейшей конденсации хроматина был подсказан внешним видом некоторых особых хромосом -так называемых хромосом типа ламповых щеток из ооцитов многих животных и политенных хромосом определенных клеток насекомых. Хромосомы этих двух типов обладают хорошо выраженной петельной структурой, т. е. имеют серию петельных доменов, которые под углом отходят от основной оси хромосомы. Установлено, что хромосома бактерии E.coli (кольцевая молекула ДНК длиной около 0,1 см, лишенная гистонов) также уложена в виде петель. Существующие в настоящее время данные позволяют считать петельную укладку общим принципом структурной организации хроматина.

Рис. 9-34. Схематическое изображение участка хромосомы, имеющего петельную организацию. Каждая из петель содержит приблизительно от 20000 до 100000 пар оснований двухцепочечной ДНК, входящей в состав 30 нм-хроматиновой фибриллы. А. Модель упаковки, согласно которой на каждом конце петли находится сайт-специфический ДНК-связывающий белок. Б. Модель упаковки с участием хромосомной оси. В настоящее время неизвестно, как в действительности происходит упаковка, хотя цитологические данные свидетельствуют о том, что осевой участок изолированных митотических хромосом (место локализации концов петель) сильно обогащен ферментом, который в клетке содержится в большом количестве,-ДНК топоизоме-разой ll.

Рис. 9-35. Схематическое изображение типичной метафазной хромосомы. Каждая хроматида содержит одну из двух идентичных дочерних молекул ДНК (одна из них выделена цветом], образующихся в процессе репликации на более ранней стадии клеточного цикла.

Была выдвинута гипотеза, предполагающая, что петли хроматина формируются и поддерживаются с помощью ДНК-связывающих белков, которые узнают определенные нуклеотидные последовательности двух отдельных участков хроматиновой фибриллы и сближают их (рис.

9-34, А). В результате эти участки образуют устье петли. Петли могут сформироваться и иным путем при связывании ДНК с осью хромосомы (рис.

9-34, Б). По косвенным оценкам у таких таксономически отдаленных организмов, как дрозофила и человек, средняя длина петель весьма сходна, типичная петля содержит примерно от 20000 до 100000 пар оснований, что соответствует приблизительно 0,5 мкм фибриллы диаметром 30 нм.

Если типичная хромосома человека состоит главным образом из петель, то в ее состав могло бы входить более 2000 таких доменов.

9.2.2. Митотические хромосомы состоят из максимально сконденсированного хроматина [22] Большинство хромосом чрезвычайно растянуты и спутаны, что делает их невидимыми на всех фазах клеточного цикла за исключением митоза. В этот период хромосомы спирализуются, конденсируются и приобретают четкие формы. Эта суперспирализация, уменьшающая линейные размеры ДНК с 5 см по 5 мкм, сопровождается фосфорилированием всех молекул гистона НІ, присутствующих в клетке, по пяти сериновым остаткам. В связи с тем, что гистон НІ связывает между собой нукдеосомные частицы (см. рис. 9-28), его фосфорилирование может играть ключевую роль в конденсации хромосом в процессе митоза.

На рис. 9-3 5 изображена типичная митотическая хромосома на стадии метафазы. Две дочерние молекулы ДНК упаковываются порознь и образуют сестринские хроматиды, которые удерживаются вместе с помощью центромеры. Митотические хромосомы обычно несут на своей поверхности множество других молекул, в том числе большое количество рибонуклеопротеинов. Если удалить эту оболочку, на электронных микрофотографиях можно отчетливо увидеть, что каждая хро- Рис. 9-36. Микрофотография участка типичной высококонденсированной митотическоЙ хромосомы, полученная с помощью сканирующего электронного микроскопа. Предполагается, что каждый выступ, напоминающий клубенёк, представляет собой конец отдельного петлевого домена. Обратите внимание, как хорошо различимы две идентичные спаренные хрома-тиды, схема которых представлена на рис. 9-35.

(По Mardsen M. Р., Laemmli U.K. Cell 17: 849-858, 1979.) матида построена из хроматиновых петель, отходящих от центральной оси (рис. 9-36 и 9-37). Экспериментально доказано, что поперечная исчерченность, характерная для митотических хромосом, отражает в какой-то степени порядок расположения генов в молекуле ДНК. Различные способы упаковки длинной спирали ДНК представлены на рис. 9-38.

Рис. 9-37. Электронная микрофотография одиночной хроматиды митотическай хромосоми насекомого (Oncopelfus). Специальная обработка позволяет визуализировать петли хроматина, от&одящае от центральной оси хромагиды. (С любезного разрешения Victoria Foe.) Рис. 9-38. Схема, иллюстрирующая различные уровни упаковки хроматина, которые, по-видимому, отражают последовательные этапы формирования высококонденсированной метафазной хромосомы.

В митотической хромосоме хроматин транскрипционно неактивен: синтез РНК с началом конденсации хромосом прекращается. По видимому, РНК-полимераза не может в этих условиях продвигаться вперед по ДНК, хотя возможно это обусловлено и другими причинами.

9.2.3. Каждая митотическая хромосома содержит определенный набор очень больших доменов [23] Набор из 46 митотических хромосом человека называют его кариотнпом. Цитологические методы, разработанные в начале 70-х гг., позволяют безошибочно идентифицировать каждую хромосому в кариотипе человека. Для этого специально подготовленные препараты митотических хромосом обрабатывают красителями, способными флуоресцировать только при связывании с определенными типами последовательностей ДНК. Несмотря на то, что эти красители обладают очень низкой избирательностью [их использование позволяет в основном отличать участки ДНК, обогащенные АТ-парами (G-полосы) от участков с GC-богатыми последовательностями (R-полосы)], обработка ими митотических хромосом выявляет в каждой из них характерную картину чередования темных и светлых полос (сегментов) (рис. 9-39).

Распределение Рис. 9-39. Микрофотографии трех пар митотических хромосом человека, полученные с помощью флуоресцентного микроскопа. А.

Окрашивание хромосом АТ-специфичес-ким красителем Hoescht 33258 (G-полосы). Б. Окрашивание хромосом GC-специфическим красителем оливомицином (R-полосы). Черта указывает положение центромеры. Обратите внимание на то, что картины распределения сегментов (полос) в хромосомах на обеих фотографиях комплементарны: полосы, яркоокрашенные на А, на Б затемнены и наоборот. G-полосы проявляются и при окрашивании красителем Гимза (отсюда их название), а обозначение полос буквой R отражает тот факт, что они как бы обратны (reverse) G-no лосам. (По K.F. Jorgenson, J.H. van de Sande and С. С. Zin, Chromosoma 68: 287-302, 1978.) этих полос специфично для каждого типа хромосом, что делает возможной их однозначную идентификацию (рис. 9-40).

При анализе хромосом человека, проведенном с помощью флуоресцентных красителей, на ранних стадиях митоза, когда хромосомы значительно менее компактны, чем в метафазе, удалось подсчитать, что весь гашюидный набор содержит по меньшей мере 2000 четко выраженных полос, соответствующих АТ-богатым последовательностям ДНК.

Рис. 9-40. Стандартная карта распределения сегментов в каждой из хромосом, составляющих человеческий кариотип, на стадии прометафазы митоза. Хромосомы от 1-й до 22-й пронумерованы в примерном соответствии с размером. Диплоидная клетка человека содержит по две хромосомы каждого типа плюс две Х-хромосомьт (у женщин) или Х- и Y-хромосомы (у мужчин). 850 полос, указанных на рисунке - это G полосы, обнаруживаемые при окрашивании реагентами, специфичными к АТ-последова-тельностям ДНК. Выделенные цветом «головки» на хромосомах 13, 14, 15, 21 и 22 указывают на расположение генов, кодирующих большие рибосомные РНК, цветными линиями отмечено положение центромеры на каждой хромосоме. (С изменениями по U. Franke, Cytogenet. Cell Genet. 31: 24-32, 1981.) В ходе митоза происходит дальнейшая конденсация хромосом и, как следствие, утолщение полос и уменьшение их числа.

Наличие поперечной исчерченности составляет общую черту миготических хромосом даже таких далеких друг от друга видов, как человек и дрозофила. Более того, картина распределения полос в хромосомах почти не изменилась за долгие периоды эволюции. Например, почти каждой хромосоме человека соответствует аналог в кариотипе шимпанзе, гориллы и орангутана (хотя в результате слияния одной пары хромосом у человека имеется 46, а не 48 хромосом, как у обезьян), причем картина распределения полос у них практически одинакова. Все это лишний раз указывает на большое значение пространственной организации ДНК в составе хромосом для экспрессии соответствующих генов, а само существование полос, возможно, отражает какие-то черты функциональной организации хроматина. Почему образуются такие полосы, до сих пор является загадкой. Даже наиболее тонкие полосы, изображенные на рис. 9-40, должны содержать не менее 30 петель, а суммарный нуклеотидный состав столь длинных последовательностей ДНК (более миллиона пар оснований, что соответствует размеру среднего бактериального генома), по видимому, близок к среднестатистическому. Известно, что как АТ-богатые, так и GC-богатые полосы содержат гены.

9- 9.2.4. ДНК хромосом типа ламповых щеток в интерфазе состоит из серии различающихся доменов [24] Несмотря на высокий порядок упаковки хроматина, нити его в период интерфазы слишком тонки и спутанны, чтобы можно было ясно увидеть целиком всю хромосому. Тем не менее, существуют определенные типы клеток, в которых общую структуру интерфазных хромосом различить можно. Например, спаренные в мейозе хромосомы растущих ооцитов (незрелые яйцеклетки), активно синтезируют РНК и образуют необычайно жесткие и протяженные петли хроматина, покрытые вновь транскрибируемой РНК, которая упакована в плотные комплексы РНК белок. В связи с тем, что ДНК покрыта такими комплексами, хромосомы (их называют хромосомами типа ламповых щеток) хорошо видны даже под световым микроскопом (рис. 9-41).

Рис. 9-41. Световая микрофотография хромосом типа ламповых щеток из ооцита земноводного. На ранних стадиях дифференцировки ооцитов каждая хромосома перед началом мейоза рсплицируется, ад гем гомологи спариваются с образованием четыреххроматидной протяженной структуры, изображенной на фотографии. Стадия хромосом типа ламповых щеток может длиться месяцы и даже годы. В это время в ооците создается запас мРНК и других веществ, необходимых для его последующего развития в новую особь. Обратите внимание, что каждая хромосомная ось имеет в длину приблизительно 400 мкм, тогда как длина большинства митотических хромосом составляет менее 10 мкм. (С любезного разрешения Joseph G. Gall.) Рис. 9-42. Строение хромосомы типа ламповых щеток. У многих земноводных набор хромосом типа ламповых щеток содержит в сумме около 10000 петель хроматина, хотя большая часть ДНК остается в сильно конденсированном состоянии и располагается в хромомерах. Каждая петля соответствует определенной последовательности ДНК. В каждой клетке содержится по четыре копии каждой петли, поскольку структура, представленная в верхней части рисунка, состоит из двух спаренных гомологичных хромосом, а каждая хромосома представлена двумя сестринскими хроматидами. Такие структуры, состоящие из четырех нитей, характерны для данной стадии развития ооцита (стадия диплонемы мейоза).

Схема строения хромосом типа ламповых щеток приведена на рис. 9-42. Большие петли, состоящие из деконденсированного хроматина, отходят в стороны от оси хромосомы. Опыты по гибридизации нуклеиновых кислот показали, что определенная петля всегда содержит одну и ту же последовательность ДНК, которая во время роста ооцита располагается строго определенным образом. Следовательно, эти петли соответствуют фиксированным единицам упаковки хроматина, который деконденсировался и стал транскрипционно активным. Поскольку петля среднего размера содержит приблизительно 100 000 пар оснований, каждая петля может соответствовать одной петле хроматина, описанного выше (см. разд. 9.2.1).

Многие петли постоянно транскрибируются по всей длине, другие содержат протяженные участки хроматина, который не транскрибируется вовсе.

Большая часть хроматина не входит в состав петель и остается в сильно конденсированном состоянии в хромомерах;

этот хроматин, как правило, не транскрибируется. Короткие области хроматина, которые не обладают высокой степенью конденсации и активно не транскрибируются, соединяют соседние хромомеры вдоль хорошо выраженной оси хромосомы.

Хромосомы типа ламповых щеток являются необычными в том отношении, что уровень их транскрипции выше, а большинство образующихся транскриптов РНК длиннее, чем те, которые синтезируются на других хромосомах. Однако есть данные, что молекула ДНК, входящая в состав любых интерфазных хромосом, тоже подразделяется на различные области, каждая из которых отделена от своих соседей границей. По-видимому, и в данном случае хроматин в разных областях упакован по-разному (например, в виде петель, хромомеров или хроматина, входящего в состав оси между хромомерами).

9.2.5. В политенных хромосомах также можно увидеть упорядоченные участки интерфазного хроматина [25] Структура хроматина на уровне одиночных петель очень хорошо различима и в некоторых клетках насекомых. Многие клетки личинок мух вырастают до необычайно большого размера, претерпевая несколько циклов репликации ДНК, которые не сопровождаются клеточным делением. В результате они содержат в несколько тысяч раз больше ДНК, чем обычная клетка. Такие гигантские клетки называются полшлоидными в том случае, если число наборов хромосом у них превышает норму. Ситуация может быть и иной: гомологичные хромосомные пары могут не отделяться друг от друга, а формировать единые огромные хромосомы (политенные хромосомы). Тот факт, что в отдельных гигантских клетках насекомых хромосомы могут переходить из политенного в по- Рис. 9-43. Полный набор политенных хромосом из клетки слюнной железы дрозофилы. Эти хромосомы были расправлены и подготовлены для наблюдения путем «раздавливания» материала на предметном стекле. На рисунке представлены четыре пары хромосом. Каждая хромосома тесно спарена со своим гомологом (так, что каждая пара кажется единой структурой), чего не наблюдается в большинстве интерфазных ядер. Четыре пары хромосом связаны друг с другом своими центромерными зонами, образующими один большой «хромоцентр» (окрашенная область). На данном препарате хромоцентр разделился на две части в процессе подготовки к микроскопированию. Необходимо отметить, что при выстраивании бок о бок многих нитей хроматина произошло значительное раскручивание каждой молекулы ДНК. (С изменениями по Т. S. Painter, J.Hered. 25: 465-476, 1934.) Рис. 9-44. Световая микрофотография участка политенной хромосомы из клетки слюнной железы дрозофилы. Видна характерная картина распределения дисков. Эти диски обнаруживаются в интерфазных хромосомах и являются отличительной чертой гигантских политенных хромосом;

их не следует отождествлять с гораздо более «грубыми полосами, показанными на рис. 9-40, которые обнаруживаются в нормальных митотических хромосомах с помощью специальных красителей. (С любезного разрешения Joseph G. Gall.) Рис. 9-45. Электронная микрофотография небольшого участка полигенной хромосомы дрозофилы. На тонком срезе видно, что разные хромосомные диски, весьма различающиеся по толщине (В), разделены междисковыми участками (I), хроматин которых гораздо менее сконденсирован. (С любезного разрешения Viekko Sorsa.) лишюидное состояние, свидетельствует о том, что эти два хромосомных статуса тесно связаны между собой и что структура политенных хромосом в принципе аналогична структуре нормальных хромосом.

Благодаря своей большой величине, а также тому, что плотная и строго упорядоченная упаковка индивидуальных хроматшювых нитей в составе политенной хромосомы препятствует их запутыванию, эти хромосомы очень хорошо видны в световой микроскоп. Как и хромосомы типа ламповых щеток, политенные хромосомы в интерфазе активно синтезируют РНК. Явление политении наиболее глубоко было изучено на четырех хромосомах клеток слюнных желез личинок дрозофилы. В этих клетках ДНК реплицируется 10 раз подряд, дочерние хромосомы не разделяются, в результате чего образуются гигантские хромосомы, содержащие 1024 (210) тесно прилегающие друг к другу индивидуальные хроматиновые нити.

При наблюдении окрашенных политенных хромосом в световой микроскоп хорошо заметны перемежающиеся поперечные полосы:

темные (диски) и светлые (междисковые участки) (рис. 9-43 и 9-44). Каждый диск и междисковый участок состоят из 1024 идентичных последовательностей ДНК, расположенных рядом друг с другом. Около 85% ДНК в политенных хромосомах содержится в дисках и 15%-в меж дисковых участках. Хроматин каждого диска при окрашивании выглядит более темным, так как он более конденсирован, чем хроматин междисковых участков (рис. 9-45). Полагают, что диск состоит из петли, которая многократно сложена (рис. 9-46). В зависимости от размера отдельные полосы содержат от 3000 до 300000 нуклеотидных пар. Поскольку каждый диск можно идентифицировать исходя из его толщины и расположения в хромосоме, все диски могут быть пронумерованы, что дает возможность составить «карту» политенной хромосомы. Во всем геноме дрозофилы содержится примерно 5000 дисков и 5000 междисковых участков.

9.2.6. Отдельные домены хроматина в политенных хромосомах могут разворачиваться и вновь упаковываться как отдельные единицы [26] Задолго до того, как были получены первые данные о структуре хроматина, изучение политенных хромосом позволило сформулировать гипотезу, согласно которой транскрипция генов сопровождается значительными изменениями в упаковке ДНК: отдельный диск хромосомы вздувается при активации содержащихся в нем генов и вновь конденсируется, когда гены становятся неактивными.

Для того чтобы выявить транскрибируемые области на политенной хромосоме, можно ввести в клетки радиоактивный предшественник РНК [3Н]-уридин, а затем локализовать растущий транскрипт РНК с помощью радиоавтографии (рис. 9-47). Именно таким способом было установлено, что большая часть активного хроматина находится в де-конденсированном состоянии и образует характерные хромосомные пуфы.

Рис. 9-46. Схема, показывающая, каким образом плотно прилегающие один к другому гомологичные петельные домены могут стать причиной появления дисков в политенных хромосомах. В составе каждого диска петли хроматиновых фибрилл находятся в очень тесном контакте друг с другом, формируя гораздо более конденсированную структуру, чем показано на этом рисунке.

Одним из основных факторов, контролирующих активность генов в политенных хромосомах дрозофилы, является гормон экдизои, встречающийся у насекомых. Уровень этого гормона в ходе развития личинки периодически поднимается и снижается, индуцируя транскрипцию разнообразных генов, которые кодируют белки, необходимые личинке для линьки и для окукливания. По мере прохождения через определенные стадии развития, возникают новые и исчезают старые пуфы, что связано с активацией и затуханием активности транскрипционных единиц и с синтезом разнообразных мРНК и белков (рис. 9-48). Изучение отдельного пуфа, размер которого относительно мал (но соответствующая ему полоса на хромосоме все-таки различима), дает основание предполагать, что каждый пуф образуется при разворачивании одного-единственного диска на хромосоме (рис. 9-49). Электронномикроскопический анализ показал, что ДНК пуфов находится в гораздо менее конденсированном состоянии, чем это свойственно хроматиновой фибрилле диаметром 30 нм (рис. 9-50). По-видимому, отдельная петля, которая, как полагают, упакована в диск на хромосоме (рис. 9-46), при транскрипции деконденсируется как самостоятельная единица.

9.2.7. Гены на политенной хромосоме расположены, вероятно, как в дисках, так и в междисковых участках [27] Фиксированное расположение дисков и междисковых участков на политенной хромосоме дрозофилы навело цитогенетиков на мысль, что каждый диск, возможно, соответствует отдельному гену. Анализ мутаций не только подтвердил это предположение, но позволил генетикам подсчитать число жизненно важных генов у дрозофилы;

их оказалось приблизительно 5000, т. е. столько же, сколько дисков на хромосомах.

Например, при попытке индуцировать мутации, картируемые на небольшом участке хромосомы (содержащем около 50 различных дисков), генетическими методами было выявлено около 50 жизненно важных генов. Хотя данный метод и не позволяет определить, где именно локализован конкретный ген, в диске или в междисковом участке, эти наблюдения дают основание для следующего вывода: обычный диск может содержать последовательности ДНК, кодирующие один-единственный жизненно важный белок.

Однако последующие эксперименты заставили усомниться в правильности гипотезы «один диск - один ген». Например, была клонирована значительная область генома дрозофилы размером 315000 нуклеотидных пар, затем отдельные ее фрагменты использовали в качестве зондов для идентификации мРНК, синтезирующихся на этом участке. Количество отдельных мРНК, как выяснилось, в три раза превышает число дисков. Весьма вероятно, что большая часть этих мРНК соответ- Рис. 9-47. Синтез РНК на гигантской политенной хромосоме из слюнных желез насекомого Chironomus tentans. На представленном радиоавтографе хромосомы, меченной [3Н]-уридином, области синтеза РНК покрыты темными гранулами серебра в соответствии с активностью каждого участка. (По С. Felling, Chromosoma 15: 71-122, 1964.) Рис. 9-48. Серия фотографий, иллюстрирующая последовательные стадии возникновения и регрессии пуфов в политенных хромосомах Drosophila melanogaster. Представлен фрагмент левого плеча хромосомы 3, содержащий пять крупных пуфов. Каждый из этих пуфов активен лишь в течение короткого периода: зафиксированная на фотографиях последовательность событий занимает 22 ч и повторяется в каждом поколении мух.

(С любезного разрешения Michael Ashburner.) Рис. 9-49. А. Упрошенная схема процесса образования пуфа на политенной хромосоме. Б. Радиоавтограф отдельного пуфа, в котором на указанном участке синтезировалась РНК;

в результате этот участок оказался меченным [3Н]-уридином. (С любезного разрешения Jose Bonner.) Рис. 9-50. Электронные микрофотографии серии тонких срезов крупного хромосомного пуфа, показывающие конформацию необычно длинной транскрипционной единицы. На схеме Г изображена пространственная модель исследуемого участка данной транскрипционной единицы.

Концы транскриптов РНК, похожие на клубеньки, прикреплены к одиночной хроматино-вой фибрилле. «Клубеньки» на 5'-конце большинства транскриптов образуются вследствие упаковки молекулы РНК в рибонуклеопроте-иновые частицы. (По К. Andersson, В. Bjokroth and В. Daneholt, Exp. Cell Res. 130: 313-326, 1980.) ствуют генам, влияющим на приспособленность мух именно в природных условиях. В лабораторных условиях, в отсутствие селективного отбора, мутации по многим из этих генов могут не улавливаться. Недавно было установлено, что мРНК синтезируется как в дисках, так и в междисковых участках.

Хотя структурная организация хромосом наиболее четко выявляется при исследовании необычных интерфазных хромосом, таких как политенные или хромосомы типа ламповых щеток, вероятно, все хромосомы высших эукариот имеют подобную организацию. Изучение политенных хромосом дрозофилы показало, что гены могут располагаться и в области конденсированного хроматина дисков, и в менее конденсированных междисковых участках;

кроме того установлено, что в каждом диске может содержаться несколько генов. Для чего же в таком случае каждый длинный тяж хроматина в хромосоме подразделяется на большое число различающихся областей? Хотя ответ и неизвестен, вполне вероятно, что такое строение дает возможность: I) сохранять организацию ДНК;

2} отделять гены друг от друга, и таким образом избегать биологических «помех»;

3) регулировать транскрипцию генов (например, конститутивно экспрессируемые гены «домашнего хозяйства» могут располагаться в междисковых участках, тогда как гены, специфические для определенного типа клеток, могут находиться в дисках).

9- 9.2.8. В транскрипционно активных областях хроматин менее конденсирован [28] При обработке ядер клеток позвоночных ДНКазой I (той самой, которая при более низких концентрациях выявляет сверхчувствительные к нуклеазе области, лишенные нуклеосом) было показано, что опреде- Рис. 9-51. Обработка хроматина панкреатической ДНКазой I. Вначале фермент разрезает сайты, обладающие повышенной чувствительностью к нуклеазе (не показано), затем деградации подвергается последовательность ДНК, в которую входят активно транскрибируемые и потенциально активные гены.

Рис. 9-52. Электронная микрофотография расправленного хроматина из клеток эмбриона насекомого (Oncopeltus). Видны значительные изменения в структуре хроматина двух тандемно расположенных генов рРНК. По-видимому, у этих эмбрионов синтезу рРНК предшествует переход хроматина из состояния «бусины на нитке» к гладкой форме. Возможно, гладкий хроматин представляет собой область, где ДНК «соскочила» с нук-леосом в ходе подготовки к транскрипции. Следует отметить, что структура хроматина, входящего в состав гена, расположенного левее от транскрибируемой области, подверглась изменениям, хотя в данный момент он не транскрибируется. (По V. Е. Foe, Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 42: 723-740, 1978.) ленная часть хроматина, содержащего активные гены, находится в де-конденсированном состоянии. Этот вывод подтверждает результаты, полученные на политенных хромосомах насекомых. При определенной концентрации ДНКазы в первую очередь подвергается деградации около 10% генома позвоночных. В разных клетках одного и того же организма нуклеаза расщепляет различные последовательности ДНК, которые соответствуют различным типам продуцируемых этими клетками РНК. С помощью гибридизации со специфическими ДНК-зондами удалось выяснить, что деградировавшие последовательности относятся главным образом к тем областям генома, которые в данном типе клеток активно транскрибируются. Интересно, что даже гены, транскрибирующиеся в каждом поколении клеток лишь несколько раз, обладают чувствительностью к нуклеазе. Этот факт говорит о том, что сверхчувствительным к нуклеазе участок становится скорее всего вследствие особого состояния хроматина, а не собственно транскрипции (рис. 9-51). Хроматин в таком чувствительном к нуклеазе состоянии часто называют активным хроматином. Полагают, что нуклеосомы, входящие в его состав, упакованы менее плотно. Даже если нуклеазной обработке подвергаются митотические хромосомы, расщепленным оказывается преимущественно активный хроматин. По-видимому, и в митозе, несмотря на чрезвычайно плотную упаковку генома, между активным и неактивным хроматином сохраняются некоторые различия.

Электронномикроскопический анализ, как правило, не выявляет никаких изменений в строении нуклеосом, входящих в состав активного хроматина. Однако есть и поразительное исключение: у некоторых зародышей насекомых в области активных генов рРНК можно заметить протяженные участки хроматина, как будто лишенного нуклеосом (рис. 9-52). Согласно одной из гипотез, в таких участках каждая нуклеосома открывается, образуя развернутую структуру. Вероятно, при этом происходит раскручивание двух витков спирали ДНК, которые в обычном состоянии намотаны на нуклеосому. По-видимому, эти структурные изменения способствуют эффективности транскрипции.

9- 9.2.9. Активный хроматин обладает особыми биохимическими свойствами [29] Для того чтобы разобраться в строении хроматина, сконденсированного в разной степени, необходимо выделить и охарактеризовать хромосомные белки, присущие каждому из этих состояний. В отношении активного хроматина на этом пути были достигнуты определенные успехи. Установлено, что 1) гистон Н1 не очень тесно связан по крайней мере с некоторой частью активного хроматина;

2) четыре гистона, образующие нуклеосому, содержатся в обычных количествах, но характеризуются необычно высоким уровнем ацетилирования лизиновых остатков, расположенных вблизи аминоконца этих белков. Ацетильные группы присоединяются к ним с помощью фермента гистоновой ацетилазы и удаляются гистоновой деацетилазой, причем каждая ацетильная груп- па существует в среднем около 10 минут;

3) нуклеосомы в активном хроматине селективно связывают два близкородственных небольших хромосомных белка HMG14 и HMG17. Так как эти белки присутствуют только в активном хроматине, их количество строго соответствует тому, которое требуется для связывания примерно одной из каждой 10 нуклеосом. Аминокислотные последовательности обоих белков крайне консервативны, что свидетельствует о важности их функции;

4) у некоторых организмов, например у Tetrahymena, активный хроматин в значительной мере обогащен минорной формой гистона Н2А. Подобная разновидность гистона найдена также у дрозофилы, курицы и человека.

Любое из описанных свойств может играть важную роль в развора-чивании хроматина и таким образом способствовать синтезу РНК, однако для подтверждения этой гипотезы требуется проведение прямых экспериментов. Дальнейшие биохимические исследования можно проводить с использованием новых методов очистки активного хроматина на основе селективного связывания с аффинным матриксом, который содержит антитела, специфические либо к белку HMG, либо к ацетилиро-ванному лизину. В гл. 10 обсуждаются механизмы контроля образования активного хроматина.

9.2.10. Гетерохроматин сильно конденсирован и транскрипционно неактивен [30] Доказательства существования второй необычной формы хроматина были получены в 1930 г., когда при наблюдении в световом микроскопе интерфазного ядра клетки высших эукариот была обнаружена особая конденсированная форма хроматина, названная гетерохроматином (менее конденсированная часть хроматина была названа эухроматином). Гетерохроматин в интерфазе остается необычайно компактным, сохраняя такую структуру, которую большая часть хроматина приобретает только в митозе. Позднее обнаружилось, что как и митотический хроматин, Гетерохроматин транскрипционно неактивен (рис. 9-53). Полагают, что в большинстве клеток около 90% хроматина транскрипционно неактивно. Хотя относительная устойчивость такого неактивного хроматина к обработке нуклеазой свидетельствует в пользу того, что этот хроматин более конденсирован, чем 10% в транскрипционно Рис. 9-53. Радиоавтограф тонкого среза ядра клетки, подвергнутой импульсному мечению [3Н]-уридином для выявления областей активного синтеза РНК (гранулы серебра). Светлые участки - области гетерохроматина, который обычно концентрируется вдоль внутренней поверхности ядерной оболочки. Светлая окраска участков гетерохроматина обусловлена особенностями метода приготовления препарата. Синтез РНК наблюдается главным образом в эухроматино-вых участках, окружающих области гетерохроматина. (С любезного разрешения Stan Fakan.) Рис. 9-54. Участок политенной хромосомы дрозофилы в фазово-контрастном (вверху) и флуоресцентном (внизу) микроскопе после иммунофлуоресцентного мечения гетерохроматина (слева) и активного хроматина (справа). А. Окрашивание моноклональными антителами, специфичными к белкам, содержащимся в гетерохроматиновых областях. Окрашены хромоцентр (указан стрелкой) и несколько отдельных дисков.

Б. Окрашивание моноклональными антителами, специфичными к белкам, содержащимся в активном хроматине. Окрашивается часть дисков. (Л-по Т.С. James and S.C.R. Elgin, Моl. Cell Biol. 6: 3862 3872, 1986;

Я-по G.C. Howard, S.M Abmayr, Z.A. Shinefeld, V.Z. Sato and S.C.R. Elgin, J. Cell Biol.

88: 219-225, 1981. © 1981 Rockefeller University Press.) активных областях, лишь часть его (возможно от 10 до 20%) обладает сильно конденсированной конформацией, известной под названием гетерохроматин. Таким образом, гетерохроматин, вероятно, представляет собой особый класс транскрипционно инертного хроматина, несущего определенные функции. У млекопитающих и многих других высших эукариот ДНК, окружающая каждую центромеру, состоит из относительно простых повторяющихся нуклеотидных последовательностей;

именно такие «сателлитные ДНК» составляют основную часть гетерохроматина этих организмов.

У дрозофилы в виде гетерохроматина организованы как хроматин центромеры, так и случайно разбросанные короткие участки.

Подобные гетерохроматиновые области недореплицируются на ранних стадиях синтеза ДНК, т. е. в тот период, когда происходит образование политенной хромосомы. Таким образом, эти последовательности в политенных хромосомах представлены в относительно меньших количествах.

Биохимические особенности этого типа гетерохроматина можно изучать на молекулярном уровне, проводя связывание с антителами, выявляющими белки хромосом, которые присутствуют только в гетерохроматине (рис. 9-54). Перспективным для биохимического анализа гетерохроматина представляется и клонирование генов, кодирующих специфические для него белки.

Заключение Все хромосомы во время митоза подвергаются значительной конденсации. Специальное окрашивание выявляет на митотических хромосомах полосы, благодаря которым можно совершенно точно идентифицировать каждую хромосому. Эти полосы, насчитывающие миллионы нуклеотидных пар ДНК, выявляют в хромосоме значительную гетерогенность, природа которой пока еще неясна.

Во время интерфазы хромосомы обычно подвергаются деконденсации в такой степени, что их структура становится трудноразличимой. Замечательным исключением являются специализированные хромосомы типа ламповых щеток в ооцитах позвоночных и политенные хромосомы гигантских секреторных клеток насекомых. Изучение этих двух разновидностей интерфазных хромосом показало, что каждая длинная молекула ДНК, входящая в состав хромосомы, состоит из большого числа дискретных, по-разному упакованных доменов. Основная характерная черта этих хромосом — наличие значительного количества петель хроматина, большая часть которых содержит от 20 000 до 100 000 нуклеотидных пар. Как в хромосомах типа ламповых щеток, так и в политенных хромосомах наименее конденсированными являются области, наиболее активно синтезирующие РНК. Судя по чувствительности к ДНКазе, лишь 10% ДНК находится в относительно деконденсированном состоянии и транскрибируется. Такой «активный» хроматин имеет иные биохимические свойства, нежели те, которыми обладают более конденсированные участки.

9.3. Репликация хромосом Перед каждым делением клетка должна синтезировать копии всех своих хромосом. Таким образом, делению клетки предшествует ее переход из состояния интерфазы (фазы G1) в фазу синтеза ДНК (S-фаза). В типичной клетке высших эукариот S-фаза длится 8 часов. После ее окончания каждая хромосома представлена двумя копиями, которые продолжают оставаться соединенными в области центромер до наступления М-фазы. (см. рис. 9-35). Для удвоения хромосомы необходима репликация ее ДНК и последующая сборка на этой молекуле хромосомных белков, образующих хроматин. В гл. 5 мы обсуждали ферменты, участвующие в репликации ДНК, и строение репликационной вилки, обеспечивающей синтез (см. рис. 5-39). Переход клетки в S-фазу будет рассмотрен в гл. 13 как часть более общей проблемы контроля клеточного цикла. В данном разделе мы изложим принципы механизма репликации эукариотической хромосомы, укажем время, необходимое для этого, и, кроме того, проанализируем взаимосвязь процесса репликации и структуры хромосомы.

9- 9.3.1. В хромосомах высших эукариот сайты инициации репликации активируются группами [31] Как отмечалось ранее, репликационные вилки возникают на бактериальной хромосоме в участках с определенной последовательностью ДНК, называемых точками начала репликации (сайтами инициации репликации) (см. разд. 5.3.9). В каждом таком сайте образуется две вилки, которые движутся в противоположных направлениях со скоростью около 500 нуклеотидов в секунду пока не закончится репликация всей кольцевой ДНК бактериальной хромосомы. Бактериальный геном столь мал, что эти две репликационные вилки могут его полностью удвоить менее, чем за 40 минут.

В начале 60-х гг. был разработан метод, позволяющий в общих чертах изучать репликацию хромосом эукариот. В культуру клеток человека на короткое время вводят радиоактивную метку (Н-тимидин), затем клетки мягко лизируют и ДНК дают расправиться на поверхности предметного стекла, покрытого фоточувствительной эмульсией;

после чего радиоавтограф изучают в световом микроскопе. Реплицировавшаяся ДНК выявляется в виде цепочки гранул серебра. Этим методом можно определить как скорость, так и направление движения репликационной вилки (рис. 9-55). Исходя из скорости, с которой увеличивается длина треков реплицировавшейся ДНК эукариот при увеличении времени мечения, репликационные вилки у этих организмов перемещаются примерно на 50 нуклеотидов в секунду, т. е. в десять раз медленнее, чем у бактерий.

Возможно, это связано с тем, что ДНК, упакованную в хромосому, реплицировать труднее.

Рис. 9-55. Схема эксперимента, позволяющего судить о характере перемещения в течение S-фазы. Вновь синтезированную ДНК в культуре клеток человека подвергали импульсному мечению [3Н]-тимидином. А. Клетки лизировали и ДНК растягивали на предметном стекле, которое затем покрывали светочувствительной эмульсией. Через несколько месяцев светочувствительный слой проявляли, при этом становился видимым ряд серебряных зерен вдоль радиоактивной ДНК. Б. Тот же эксперимент с последующей инкубацией в среде, не содержащей метку.

Синтезированная в этих условиях дополнительная ДНК характеризуется пониженным уровнем радиоактивности. Оказалось, что гранулы серебра в паре темных треков (Б) как бы расходятся в противоположных направлениях, что свидетельствует о продвижении вилки в разные стороны от точки начала репликации (см. рис. 5-49). ДНК на данном рисунке выделена цветом только для того, чтобы облегчить понимание радиоавтографа. В действительности немеченая ДНК в таких экспериментах не видна.

Согласно современным представлениям, средняя хромосома человека состоит из единственной молекулы ДНК, содержащей около млн. пар нуклеотидов. Для репликации такой молекулы от начала до конца репликационной вилки, движущейся со скоростью 50 нуклеотидов в секунду, потребуется 0,02 х 150 х 106 = 3,0 х 106 с (около 800 ч). При анализе радиоавтографов выяснилось, однако, что по каждой эукариоти-ческой хромосоме движется одновременно много вилок. Более того, часто в одной и той же области ДНК обнаруживается много вилок, тогда как в других участках той же хромосомы их нет совсем. Дальнейшие более детальные эксперименты выявили следующее: 1) сайты инициации репликации обычно активируются группами по 20-80 сайтов (их называют репликационными единицами);

2) в ходе S-фазы, по-видимому, активируются всё новые решшкационные единицы, пока вся ДНК не будет реплицирована;

3) отдельные точки начала репликации внутри репликационной единицы отстоят друг от друга на расстояние от 30000 до 300000 нуклеотидных пар, следовательно, в среднем на одну петлю хроматина может приходиться одна такая точка;

4) у эукариот, как и у бактерий, образуется сразу пара репликационных вилок, а по мере их расхождения от сайта инициации репликации формируется репликацион- Рис. 9-56. Особенности репликации ДНК в хромосомах эукариот. Точки начала репликации в большинстве клеток расположены на расстоянии от 30000 до 300000 нуклеотидных пар друг от друга. Полагают, что репликационные вилки останавливаются только при встрече с аналогичной структурой, двигающейся в противоположном направлении или по достижении конца хромосомы. В результате вся ДНК оказывается реплицированной.

ный глазок. Остановка вилки происходит только при столкновении с репликационной вилкой, движущейся в противоположном направлении (или при достижении конца хромосомы). Таким образом, по каждой хромосоме может двигаться независимо друг от друга много реплика-ционных вилок, образующих две целые дочерние спирали ДНК (рис. 9-56).

9- 9- 9.3.2. Сайтами инициации репликации служат определенные последовательности ДНК [32] У бактерий и ряда вирусов животных в роли сайтов инициации репликации (точек начала репликации) выступают вполне определенные последовательности ДНК. Можно предположить, что и у эукариот точками начала репликации служат конкретные последовательности ДНК. Наибольшим успехом завершились поиски таких участков у дрожжей Saсcharomyces cerevisiae. Для их обнаружения использовали клетки, дефектные по жизненно важному гену. Эти клетки могут расти на селективной среде лишь при условии, что они несут плазмиду, содержащую активную копию отсутствующего гена. Если бактериальную плазмиду, несущую жизненно важный ген переносят в дефектную клетку дрожжей, то плазмида не реплицируется, поскольку сайт инициации репликации бактерии в составе плазмидной ДНК не способен инициировать репликацию в клетке дрожжей. Однако если встроить в плазмиду (до ее переноса в клетки дрожжей) случайные фрагменты дрожжевой ДНК, то небольшая часть молекул плазмидной ДНК получит дрожжевой сайт инициации репликации и, следовательно, сможет реплицироваться. Клетки дрожжей, несущие такие плазмиды, способны расти, так как они получили жизненно важный ген (рис. 9-57).

Последовательности ДНК дрожжей, присутствующие в плазмидах, которые выделены из этих клеток, названы автономно реплицирующимися (autonomously replicating Рис. 9-57. Метод выявления автономно реплицирующихся последовательностей (ARS-элементов) у дрожжей. Эти последовательности выступают в роли точек начала репликации, содержащие их плазмиды способны самостоятельно реплицироваться в хозяйской клетке, не включаясь в состав хромосом.

sequences, ARS). ARS-последовательности встречаются в геноме дрожжей примерно с той же частотой, которая постулируется для точек начала репликации (приблизительно одна на каждые 40000 нуклеотидных пар). Для функционирования ARS необходима консенсусная последовательность, состоящая из 11 нуклеотидов [(А или Т) ТТТАТ (А или G)TTT(A или Т)]. Искусственно сконструированный тандем, состоящий из таких последовательностей, при встраивании в плазмиду функционирует в дрожжевой клетке как ARS. Отсюда следует, что инициаторный белок, чтобы начать репликацию, должен узнать расположенные рядом друг с другом копии этой последовательности. Были сделаны попытки идентифицировать участки ДНК, которые в клетках высших эукариот выступают в роли сайтов инициации репликации, однако подобные последовательности еще недостаточно хорошо изучены.

9- 9.3.3. Хромосома вируса SV40 реплицируется в бесклеточной системе млекопитающих [33] В репликационных системах прокариот движение репликационной вилки обеспечивает комплекс, состоящий из нескольких ферментов:

ДНК-полимеразы, ДНК-праймазы и ДНК-геликазы (см. разд. 5.3.6). Этот комплекс собирается в точке начала репликации в результате реакции с участием инициаторного белка, который специфически связывается с точкой начала репликации ДНК (см. рис. 5-50). Чтобы выявить все ферменты, участвующие в репликации ДНК млекопитающих, было предпринято много попыток реконструировать этот процесс in vitro. В наиболее удачных системах in vitro, разработанных до сих пор, удалось реплицировать небольшую кольцевую хромосому вируса обезьяны (SV40). Все белки, необходимые для его репликации (за исключением одного), обеспечиваются клеткой-хозяином. Исключение составляет Т-антиген SV40, большой многофункциональный белок (90000 дальтон), который позволяет этому вирусу избежать блокировки повторной репликации ДНК (см. разд. 9.3.11) и, таким образом, реплицироваться быстрее, чем ДНК клетки-хозяина. Множественные копии Т-антигена специфически связываются с точкой начала репликации SV40 и действуют одновременно и как инициаторный белок, и как ДНК-геликаза для того, чтобы раскрыть спираль ДНК в этом сайте. Затем к одной из цепей в этом участке присоединяется комплекс ДНК-полимеразы (ДНК-поли-мераза а) и ДНК-праймазы (оба фермента принадлежат клетке-хозяину). Образующаяся репликационная вилка напоминает репликационную вилку прокариот, но отличается от нее тем, что в ней функционируют два типа ДНК-полимераз: ДНК-полимераза а на отстающей цепи и ДНК-по-лимераза 5 на ведущей цепи. У прокариот же на обеих сторонах репликациониой вилки действуют разные молекулы одной и той же ДНК-полимеразы (см. разд. 5-47).

Белок, инициирующий репликацию на хромосомах эукариотических клеток, еще не обнаружен. Таким образом, остается неизвестным, действует ли этот белок подобно Т-антигену в качестве ДНК-геликазы или же, как у прокариот, инициаторные и геликазные функции берут на себя разные белки.

9.3.4. По мере репликации ДНК новые гистоны образуют хроматин [34] Для образования нового хроматина в каждом клеточном цикле требуется огромное количество гистонов, масса которых примерно равна массе вновь синтезированной ДНК. В связи с этим у большинства организмов для каждого из гистонов имеется много копий генов. Например, в клетках позвоночных обнаружено приблизигельно 20 одинаковых генных блоков, каждый из которых содержит все пять гистоновых генов.

В отличие от большинства клеточных белков, которые синтезируются во время интерфазы, гистоны образуются главным образом в S фазе. За это время в результате усиления транскрипции и уменьшения распада гистоновой мРНК ее содержание в клетке увеличивается примерно в 5 раз. Вследствие необычного строения З'-конца (см. разд. 10.4.13) основные гистоновые мРНК чрезвычайно нестабильны и подвергаются распаду через несколько минут после окончания синтеза ДНК в конце S-фазы (или при добавлении ингибитора, прерывающего синтез ДНК). В противоположность этому сами молекулы гистонов очень стабильны и могут существовать в течение всей жизни клетки. Тесная связь между синтезом гистонов и синтезом ДНК может быть, по крайней мере отчасти, обусловлена механизмом обратной связи, который контролирует уровень свободных гистонов, чтобы обеспечить соответствие количества гистонов количеству вновь синтезированной ДНК.

После сборки нуклеосом молекулы гистонов редко либо вообще никогда не покидают ДНК, с которой они связаны. Следовательно, по мере своего продвижения решгакационная вилка должна преодолевать родительские нуклеосомы, которые, по-видимому, устроены так, чтобы не препятствовать ходу транскрипции и репликации. В соответствии с одной из гипотез каждая нуклеосома при репликации ДНК временно раскрывается с образованием двух «полунуклеосом», что дает возможность ДНК-полимеразе копировать развернувшуюся молекулу (рис. 9-58).

Вновь синтезированная ДНК, остающаяся позади регшикационной вилки, наследует старые гистоны, и кроме того, чтобы завершить Рис. 9-58. Гипотетическая схема, показывающая, как нуклеосома может открываться для репликации ДНК и затем вновь собираться после прохождения репликационной вилки. При этом гистоны, входящие в состав нуклеосомы, остаются постоянно связанными с ДНК. На данном рисунке старая нуклеосома наследуется в прежнем виде спиралью ДНК, образовавшейся на ведущей цепи, однако в действительности пока неизвестно, как она наследуется. Представлена лишь одна из многих возможных моделей.

упаковку в хроматин, требует такого же количества новых гистонов (см. рис. 9-58). Новые гистоны обычно связываются в первые несколько минут после прохождения репликационной вилки. Однако для полного формирования вновь образованному хроматину необходим целый час. Именно в этот период новые гистоны проявляют большую чувствительность к модифицирующим ферментам, чем старые гистоны. Неизвестно, чем отличается по своему химическому составу зрелый хроматин от незрелого;

полагают, что для созревания необходимы как ковалентная модификация гистонов, так и изменения в способности связываться с другими белками, входящими в состав хроматина.

9- 9.3.5. Теломеры состоят из коротких G-богатых повторов, которые добавляются к концам хромосом [35] Как отмечалось выше, невозможность полностью реплицировать конец молекул линейных ДНК с помощью ДНК-полимеразы привела к появлению на концах эукариотических хромосом специфических последовательностей ДНК, названных теломерами (см. разд. 9.1.2). У таких разных организмов, как простейшие, грибы, растения и млекопитающие, эти участки имеют одинаковое строение. Они состоят из многих, расположенных друг за другом повторов одной короткой последовательности, которая содержит блок G-нуклеотидов (рис. 9-59, А). G-богатая теломерная последовательность всегда расположена на З'-конце молекулы ДНК и, по-видимому, складывается в специальную структуру, которая защищает конец хромосомы. Предполагаемый механизм репликации ДНК теломеры ресничного простейшего Tetrahymena приведен на рис. 9-59, Б.

9.3.6. Различные области одной и той же хромосомы в S-фазе реплицируются в разное время [36] Учитывая скорость движения репликационной вилки и расстояние, отделяющее две соседние точки начала репликации, можно сделать вывод, что синтез ДНК на этом участке, по-видимому, в норме занимает около часа. Несмотря на это, S-фаза в клетках млекопитающих обычно длится примерно 8 часов. Отсюда следует, что не все точки начала репликации активируются одновременно, и время репликации каждой группы этих сайтов (20-80 сайтов) занимает лишь небольшую часть всей S-фазы.

Рис. 9-59. А. Повторяющиеся G-богатые последовательности, которые образуют теломеры различных эукариотических организмов. Б.

Pages:     | 1 | 2 || 4 | 5 |   ...   | 13 |



© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.