WWW.DISSERS.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА

   Добро пожаловать!

Pages:     | 1 |   ...   | 9 | 10 ||

«1 Молекулярная биология клетки 2 Molecular Bruce Alberts, Dennis Bray, Biology Julian Lewis, Martin Raff, of the Cell Keith Roberts, James D. Watson SECOND EDITION Garland Publishing, Inc. ...»

-- [ Страница 11 ] --

Заключение Хлоропласты и фотосинтезирующие бактерии получают высокоэнергетические электроны с помощью фотосистем, улавливающих электроны, возбуждаемые солнечным светом, который поглощается молекулами хлорофилла. В состав фотосистем входит антенный комплекс, связанный с фотохимическим реакционным центром, где в строго определенном порядке расположены белки и пигменты, участвующие в фотохимических реакциях фотосинтеза. До сих пор лучше всего изучен реакционный центр пурпурных фотосинтезирующих бактерий - известна его полная трехмерная структура. У этих бактерий единственная фотосистема создает электрохимический градиент, энергия которого используется для синтеза как АТР, так и NADPH. В хлоропластах и у цианобактерий имеются две фотосистемы. В зависимости от нужд клетки в разных соотношениях осуществляются электронные потоки двух типов: I) нециклический поток, создаваемый при участии двух последовательно соединенных фотосистем, переносит электроны с воды на NADP+ с образованием NADPH, причем попутно синтезируется и АТР;

2) циклический поток, поддерживаемый лишь одной фотосистемой, передающей электроны по замкнутой цепи, приводит к образованию только АТР. В хлоропластах все электронтранспортные процессы происходят в тилакоидной мембране: для синтеза АТР протоны накачиваются в тилакоидное пространство и затем в результате обратного тока протонов через АТР-синтетазу в строме образуется АТР.

Получаемые при фотосинтезе АТР и NADPH служат источниками энергии для многих биосинтетических реакций, происходящих в строме, в том числе для жизненно важного цикла фиксации СО2, в котором из СО2 образуются углеводы. Эти углеводы в виде трехуглеродных фосфосахаров переносятся в цитозоль клетки, где служат источником органического углерода, АТР и восстановительной силы.

7.4. Эволюция электронтранспортных цепей [40] Структуру, функцию и эволюцию клеток и организмов в значительной мере можно связать с их потребностью в энергии. Мы уже видели, что механизмы использования таких разных источников энергии, как свет и окисление глюкозы, в основе своей одинаковы. По-видимому, эффективный способ синтеза АТР появился еще на ранних этапах эволюции и с тех пор подвергся лишь незначительным изменениям. Как же впервые возникли ключевые компоненты электронтранспортной цепи - АТР-синтетаза, протонные насосы, использующие энергию окислительно восстановительных процессов, и фотосистемы? Гипотезы о событиях, происходивших в ходе эволюции, проверить трудно. Однако ключи к разгадке можно найти как в различных примитивных электронтранспортных цепях, сохранившихся у некоторых современных бактерий, так и в геологических данных относительно условий, существовавших на Земле миллиарды лет назад.

7.4.1. Древнейшие клетки, вероятно, синтезировали АТР с помощью процессов брожения [41] Как уже говорилось в гл. 1, полагают, что первые живые клетки возникли примерно 3,5109 лет назад, когда возраст Земли составлял свыше 109 лет. Поскольку в окружающей среде отсутствовал кислород, а органические молекулы, образовавшиеся в ходе геохимических процессов, имелись в избытке, самые первые метаболические пути синтеза АТР были, по-видимому, сходны с существующими ныне формами брожения.

Рис. 7-56. Схемы двух типов брожения (конечные продукты выделены цветом). А. Две молекулы NAD+, использованные на каждую молекулу глюкозы, подвергшейся гликолизу, регенерируются путем переноса гидрид-иона с NADH на пируват с образованием двух молекул молочной кислоты. Молочная кислота выводится из клетки. Б. Две молекулы NAD+, израсходованные на каждую молекулу глюкозы при гликолизе, регенерируются путем последовательного переноса гидрид-ионов от двух молекул NADH на соединения, получаемые из пирувата, в результате чего образуется янтарная кислота. На каждую молекулу янтарной кислоты, выводимую из клетки, одна молекула пирувата (выделена цветом) остается в клетке для последующих процессов биосинтеза. В обоих случаях (А и Б) для регенерации NAD+ и продолжения гликолиза в анаэробных условиях требуется выведение какой-то органической кислоты.

При брожении АТР образуется путем субстратного фосфорилирования (разд. 2.2.2), при котором используется энергия, высвобождаемая в реакциях частичного окисления органических молекул, богатых водородом, таких как глюкоза. В отсутствие кислорода, который мог бы служить акцептором водорода, выделяемый при окислении молекул водород должен переноситься (через NADH или NADPH) на какую-то другую органическую молекулу (или на другую часть той же молекулы), которая при этом восстанавливается. Из органических конечных продуктов брожения один (или несколько) выводится из клетки в окружающую среду как отход метаболизма, а другие, такие как пируват, используются клеткой для биосинтезов.

Разные организмы выделяют разные конечные продукты, но чаще всего это органические кислоты (углеродные соединения с группой СООН). Из наиболее важных продуктов бактериального брожения следует отметить молочную кислоту (которая накапливается и при анаэробном гликолизе в клетках млекопитающих;

см. разд. 2.3.2), а также муравьиную, уксусную, пропионовую, масляную и янтарную кислоты. На рис. 7- представлены два типа брожения, встречающиеся у современных бактерий.

7- 7.4.2. Появление электронтранспортной цепи, запасающей энергию, позволило анаэробным бактериям использовать в качестве источника энергии несбраживаемые органические соединения [42] Ранние процессы брожения должны были обеспечить образование не только АТР, но и восстанавливающих агентов (NADH и NADPH), необходимых для процессов биосинтеза, и, вероятно, многие из главных метаболических путей сложились в условиях, когда брожение было единственным способом получения энергии. Однако со временем метаболическая активность прокариот должна была изменить окружающую Рис. 7-57. У некоторых современных бактерий, растущих в анаэробных условиях, в том числе у Е. со/г, окисление муравьиной кислоты фумаратом осуществляется при участии электронтранспортной цепи, находящейся в плазматической мембране. Как показано, в результате этого процесса образуются сукцинат и СО2. Обратите внимание, что протоны используются внутри клетки, а образуются снаружи, что равнозначно перекачиванию протонов из клетки. Таким образом, эта связанная с мембраной электронтранспортная система может генерировать на плазматической мембране электрохимический протонный градиент. Окислительно-восстановительный потенциал пары муравьиная кислота - СО2 равен - 420 мВ, а для пары фумарат - сукцинат он составляет + 30 мВ.

среду, и это привело к возникновению новых биохимических путей. Накопление побочных продуктов брожения могло привести к следующим изменениям:

Стадия 1. Из-за непрерывного выделения кислот рН окружающей среды понизился;

в результате понадобились трансмембранные насосы, откачивающие ионы Н+ из клетки, чтобы она не погибла от чрезмерного закисления. Вполне возможно, что один из таких насосов использовал энергию гидролиза АТР и, таким образом, мог быть предшественником современной АТР-синтетазы.

Стадия 2. Одновременно с накоплением несбраживаемых органических кислот, которое привело к появлению протонного насоса, использующего энергию АТР, истощались запасы сбраживаемых веществ, за счет окисления которых можно было осуществлять транспорт метаболитов и другие важные жизненные процессы. В этих условиях отбор благоприятствовал тем бактериям, которые были способны выводить ионы Н+ без сопряжения с гидролизом АТР, так что последний сохранялся для других надобностей. Давление отбора, возможно, привело к появлению первых белков, связанных с мембраной, которые могли использовать перенос электронов между молекулами с различным окислительно-восстановительным потенциалом в качестве источника энергии для откачивания протонов через плазматическую мембрану. Для некоторых из этих белков могли найтись подходящие доноры и акцепторы электронов среди накопившихся несбраживаемых органических кислот.

Немало таких электронтранспортных белков встречается и у ныне живущих бактерий;

например, некоторые бактерии, растущие на средах с муравьиной кислотой, перекачивают протоны за счет относительно небольшой окислительно-восстановительной энергии, извлекаемой при переносе электронов с муравьиной кислоты на фумаровую (рис. 7-57). У других бактерий возникли сходные электронтранспортные механизмы, «занятые» исключительно окислением и восстановлением неорганических субстратов (см., например, рис. 7-59).

Стадия 3. В конце концов у некоторых бактерий выработалась настолько эффективная цепь переноса электронов, что энергии запасалось больше, чем было нужно для поддержания внутриклеточного рН. Откачивание протонов создавало большой электрохимический градиент, который позволял протонам переходить обратно в клетку через АТР-зависимые протонные насосы, что приводило к обращению их действия, т.е. заставляло их функционировать как АТР-синтетазы. Поскольку таким бактериям нужно было гораздо меньше сбраживаемых питательных веществ, запасы которых всё уменьшались, эти бактерии стали быстро вытеснять своих соседей.

Рис. 7-58. Возможная эволюция механизмов окислительного фосфорилирования.

Эти три гипотетические стадии в эволюции механизмов окислительного фосфорилирования схематически представлены на рис. 7-58.

7.4.3. Фотосинтезирующие бактерии, найдя неисчерпаемый источник восстановительной силы, смогли преодолеть серьезный кризис в эволюции клетки Хотя только что описанные эволюционные шаги разрешили проблему поддержания как нейтральной внутриклеточной среды, так и достаточных энергетических запасов, осталось непреодоленным другое, не менее серьезное затруднение. Истощение запасов сбраживаемых органических веществ означало, что нужно найти иной источник углерода для синтеза Сахаров - предшественников столь многих других молекул, необходимых клетке. Потенциальным источником углерода могла быть углекислота, которой было достаточно в атмосфере;

однако для превращения СО2 в органические молекулы, например углеводы, нужно восстановить связанную углекислоту сильным донором водорода (таким, как NADH или NADPH), способным отдавать богатые энергией электроны, необходимые для образования одной СН2О-единицы из СО2 (см. рис. 7 43). На ранних стадиях эволюции клетки большие количества таких восстанавливающих агентов образовывались при брожении. Однако по мере сокращения запасов сбраживаемых субстратов и возрастания роли мембранной АТР-синтетазы в образовании АТР запасы NADH и других восстановителей должны были тоже иссякнуть. Таким образом, клетки столкнулись с острой необходимостью найти новый источник сильных восстановителей.

Главными донорами электронов в среде, где уже не было сбраживаемых молекул, стали органические кислоты, получаемые при анаэробном метаболизме углеводов, неорганические молекулы, такие как сероводород (H2S), образующийся в ходе геохимических процессов, и вода. Но восстанавливающая способность всех этих соединений слишком мала, чтобы ее можно было использовать для фиксации углекислоты.

Впервые появление сильных доноров электронов было связано, вероятно, с использованием электрохимического протонного градиента между двумя сторонами плазматической мембраны для поддержания обратного тока электронов, что и послужило причиной возникновения мембраносвязанных ферментных комплексов, напоминающих NADH-дегидрогеназу (рис. 7-59). Однако главный эволюционный «прорыв» в энергетическом метаболизме произошел, когда возникли фотохимические реакционные центры, способные прямо синтезировать такие молекулы, как NADH. Полагают, что такие центры впервые появились больше 3 млрд. лет назад у предшественников зеленых серных бактерий. Современные зеленые серные бактерии используют лучистую энергию для переноса атома водорода (в виде электрона и протона) от молекулы сероводорода Рис. 7-59. Некоторые пути переноса электронов у современных бактерий, у которых необходимые для роста АТР и восстановительная сила образуются всецело за счет энергии окисления неорганических молекул -таких, как соединения железа, азота, серы и аммиака. Некоторые виды способны расти в анаэробных условиях благодаря замене кислорода как конечного акцептора электронов нитратом. Другие виды используют цикл фиксации углерода и синтезируют органические молекулы исключительно из СО2. «Прямой» поток электронов позволяет откачивать из клетки протоны, и энергия возникающего при этом протонного градиента используется АТР-синтетазой для синтеза АТР (на схеме не показано). NADPH, необходимый для фиксации углерода, образуется при участии «обратного» тока электронов (см. также рис. 7-51, Б).

Рис. 7-60. Поток электронов в относительно примитивной схеме нециклического фотосинтеза у современных зеленых серных бактерий.

Фотосистема зеленых бактерий сходна с фотосистемой I растений и цианобактерий тем, что в ней тоже используется ряд железо-серных центров, которые служат первичными акцепторами электронов и затем отдают свои высокоэнергетические электроны ферредоксину (Ф).

на NADP+, создавая тем самым восстановительную силу, необходимую для фиксации углерода (рис. 7-60). Так как электроны, отнятые от H2S, обладают гораздо более отрицательным редокс-потенциалом, чем электроны в молекуле воды ( — 230 и +820 мВ соответственно), одного кванта света, поглощенного единственной имеющейся у этих бактерий фотосистемой, достаточно, чтобы достигнуть редокс-потенциала, необходимого для образования NADPH при участии сравнительно простой электронтранспортной цепи.

7.4.4. Первый атмосферный кислород был, вероятно, продуктом более сложных фотосинтетических электронтранспортных цепей цианобактерий [44] На следующем этапе, который, как полагают, начался примерно 3 млрд. лет назад с появления цианобактерий, возникли организмы, способные использовать воду как источник водорода для восстановления СО2. Это привело к развитию второй фотосистемы, включенной последовательно с первой, что позволило преодолеть большой разрыв в редокс-потенциалах Н2О и NADPH. Структурные гомологии между современными фотосистемами дают основание предполагать, что здесь объединились две фотосистемы, одна из которых ведет свое происхождение от зеленых бактерий (фотосистема I), а другая - от пурпурных бактерий (фотосистема II). Этот эволюционный шаг имел далеко идущие биологические последствия. Впервые появились организмы, обладавшие минимальными потребностями в химических веществах окружающей среды, и эти организмы могли распространяться и эволюционировать по путям, недоступным для более примитивных фотосинтезирующих бактерий, которые нуждались в H2S и органических кислотах как донорах электронов. В результате накопилось большое количество восстановленного органического материала, синтезированного живыми клетками. Кроме того, впервые в атмосферу стал поступать молекулярный кислород.

Кислород весьма токсичен, так как он может инактивировать ферменты, окисляя их. Например, многие из ныне существующих анаэробных бактерий быстро погибают при контакте с воздухом. Поэтому организмы древней Земли должны были выработать средства защиты от возрастающих концентраций О2 в окружающей среде. Существа, по- Рис. 7-61. Связь между содержанием кислорода в атмосфере и некоторыми из важнейших гипотетических этапов эволюции жизни на Земле. Судя по геологическим данным, между возникновением цианобактерий (которые, видимо, были первыми организмами, выделявшими кислород) и началом быстрого повышения концентрации кислорода в воздухе прошло больше миллиарда лет. Такая «задержка» объясняется главным образом наличием большого запаса растворенных в океане ионов закисного (двухвалентного) железа, которые вступали в реакцию с выделявшимся кислородом, что привело к образованию огромных отложений железа в окисной форме.

явившиеся на поздних этапах эволюции, обладают многочисленными механизмами, предохраняющими их ферменты от вредного воздействия кислорода.

Вначале уровень кислорода в атмосфере повышался очень медленно. Первобытные моря содержали большие количества ионов двухвалентного железа (Fe II), и почти весь кислород, выделяемый ранними фотосинтезирующими бактериями, использовался на превращение Fe II в Fe III. что привело к осаждению огромного количества окислов железа. Обширные «полосчатые железные формации», образование которых началось примерно 2,7 млрд. лет назад, помогают определить время интенсивного развития цианобактерий. Около 2 млрд. лет назад запасы двухвалентного железа истощились и отложение железосодержащих осадков прекратилось, после чего, судя по геологическим данным, содержание кислорода в атмосфере стало повышаться и достигло современного уровня где-то в период от 0,5 до 1,5 млрд. лет назад (рис. 7-61).

Наличие кислорода сделало возможным возникновение бактерий, способных синтезировать АТР за счет аэробного метаболизма;

эти бактерии могли использовать большое количество энергии, высвобождаемое при полном расщеплении углеводов и других восстановленных органических молекул до СО2 и Н2О. В результате модификации некоторых компонентов существовавших ранее электронтранспортных комплексов образовалась цитохромоксидаза, благодаря чему электроны, извлекаемые из органических и неорганических субстратов, могли передаваться на О2 как конечный акцептор электронов. Многие из современных пурпурных фотосинтезирующих бактерий способны переключать метаболизм с фотосинтеза на дыхание и обратно в зависимости от того, какой источник энергии более доступен - свет или кислород;

такое переключение связано у них с поразительно малыми изменениями в электронтранспортной цепи.

По мере накопления органического материала в результате фотосинтеза некоторые фотосинтезирующие бактерии (в том числе предшественники Е. coli) утратили способность существовать только за счет лучистой энергии и полностью перешли на дыхательный метаболизм.

Полагают, что митохондрии впервые появились 1,5 млрд. лет назад, когда такие «дышащие» бактерии стали эндосимбионтами в примитивных эукариотических клетках (см. разд. 7.5.16). Позднее потомки ранних аэробных эукариотических клеток поглотили путем эндоцитоза какую-то фотосинтезирующую бактерию, которая и стала предшествен- Рис. 7-62. Филогенетическое древо возможной эволюции митохондрий, хлоропластов и их бактериальных предков. Полагают, что кислородное дыхание стало развиваться примерно 2 млрд. лет назад. Как видно из рисунка, такое дыхание, вероятно, независимо возникло в трех линиях фотосинтезирующих прокариот - у зеленых, пурпурных и синезеленых бактерий. По-видимому, какая-то форма аэробных пурпурных бактерий, утратившая способность к фотосинтезу, дала начало митохондриям, тогда как несколько различных синезеленых бактерий были предками хлоропластов. Детальный анализ нуклеотидных последовательностей показывает, что митохондрии скорее всего произошли от бактерий, напоминающих современные ризобактерии, агробактерии и риккетсии - три родственные группы, представители которых вступают в тесные ассоциации с современными эукариотическими клетками (см. разд. 20.3.2 и 20.3.3).

ником хлоропластов. Однако уникальность хлоропластов у различных водорослей указывает на независимую эволюцию хлоропластов у разных групп организмов. На рис. 7-62 показаны некоторые из предполагаемых эволюционных путей, рассмотренных выше.

Эволюция всегда консервативна - все новое создается на основе какой-то части уже существующего. Например, некоторые участки электронтранспортной цепи, служившей анаэробным бактериям три миллиарда лет назад, вероятно, вошли в измененном виде в соответствующие цепи митохондрий и хлоропластов высших эукариот. Примером может служить поразительная гомология между структурой и функцией ферментных комплексов в среднем участке митохондриальной дыхательной цепи (комплекс b-с1) и определенными участками электронтранспортной цепи бактерий и хлоропластов (рис. 7-63).

Заключение Как полагают, древнейшие клетки представляли собой организмы, сходные с бактериями, и жили в среде, богатой восстановленными органическими молекулами, образовавшимися в ходе геохимических процессов на протяжении сотен миллионов лет. Эти организмы, вероятно, получали почти весь свой АТР путем превращения восстановленных соединений в различные органические кислоты, которые выводились, как отходы, в окружающую среду. Процессы брожения привели к закислению среды, в связи с чем, возможно, и возник первый протонный насос, связанный с мембраной, при помощи которого внутри клетки поддерживалась нейтральная реакция. Особенности современных бактерий указывают на Рис. 7-63. Сравнительные схемы трех электронтранспортных цепей, подробно рассмотренных в этой главе. Бактерии и хлоропласты содержат связанный с мембраной ферментный комплекс, очень сходный с аналогичным комплексом b-cl митохондрий. Все эти комплексы принимают электроны от хинона (Q) и перекачивают протоны через соответствующие мембраны. Более того, в системах, реконструированных in vitro, различные комплексы могут заменять друг друга, а анализ аминокислотных последовательностей их белковых компонентов показывает, что эти белки эволюционно родственны.

то, что протонный насос, использующий энергию переноса электронов, и протонный насос, функционирующий за счет энергии гидролиза АТР, возникли в этих анаэробных условиях. Обратимость функционирования позволила АТР-зависимому протонному насосу действовать в роли АТР синтетазы. Поэтому по мере создания более эффективных электронтранспортных цепей энергия, высвобождаемая при окислительно восстановительных реакциях между неорганическими молекулами, могла использоваться для синтеза АТР.

Размножение бактерий, использовавших в качестве источника углерода и восстановителей предобразованные органические молекулы, не могло продолжаться долго, так как этот источник пополнялся в результате геохимических процессов очень медленно. Истощение запасов сбраживаемых органических веществ, вероятно, привело к возникновению бактерий, способных создавать углеводы из СО2. Используя уже имевшиеся у них части электронтранспортной цепи, фотосинтезирующие бактерии улавливали с помощью своей единственной фотосистемы лучистую энергию и направляли ее на синтез NADPH, необходимый для фиксации углерода. Последующее появление более сложной фотосинтезирующей цепи переноса электронов у цианобактерий дало возможность использовать в качестве донора электронов при образовании NADPH воду, а не другие более редкие доноры электронов, необходимые остальным фотосинтезирующим бактериям. При этом в результате распространения жизни на обширных пространствах снова аккумулировались восстановленные органические вещества. Кислород, высвобождаемый благодаря фотосинтезу цианобактерий, стал накапливаться в атмосфере примерно 2 млрд. лет назад. При обилии кислорода и органических молекул электронтранспортные цепи адаптировались для переноса электронов с NADH на кислород и у многих бактерий выработался эффективный аэробный метаболизм. Точно такой же аэробный метаболизм характерен для митохондрий эукариотических клеток, и уже есть убедительные данные в пользу того, что митохондрии и хлоропласты - это потомки аэробных бактерий, поглощенных примитивными эукариотическими клетками путем эндоцитоза.

7.5. Геномы митохондрий и хлоропластов [45] По мере роста и деления клеток в их цитоплазме должны образовываться новые органеллы. В неделящихся клетках тоже происходит непрерывное обновление органелл - вместо распадающихся образуются новые. Для этого требуется регулируемый синтез необходимых белков и липидов с последующей доставкой каждого компонента в надлежащий участок органеллы. В гл. 8 уже рассматривался перенос определенных белков и липидов, синтезированных вне органелл, в митохондрии и хлоропласты, а здесь речь пойдет о вкладе этих органелл в их собственный биосинтез.

В биосинтезе белков митохондрий и хлоропластов участвуют две различные генетические системы. Хотя большая часть этих белков кодируется ядерной ДНК и переходит в органеллу после того, как они были синтезированы на рибосомах цитозоля, некоторые белки кодируются собственной ДНК органеллы и синтезируются на рибосомах внутри самой органеллы. Видимо, перенос белков осуществляется только в одном направлении - из цитозоля в органеллы;

во всяком случае такие белки, которые переходили бы в цитозоль из митохондрий или хлоропластов, не известны.

Рис. 7-64. Обобщенная схема синтеза белков, содержащихся в митохондриях и хлоропластах. Толстыми стрелками указаны места воздействия ингибиторов, специфически подавляющих белковый синтез либо в митохондриях, либо в цитозоле.

Участие двух генетических систем в образовании митохондрий и хлоропластов довольно точно согласовано (разд. 7.5.12). Однако эта согласованность не абсолютна, и изолированные органеллы продолжают некоторое время синтезировать в пробирке ДНК, РНК и белки, что позволяет установить, какие белки кодируются ДНК самой органеллы, а какие ядерной ДНК. Другой подход состоит в изучении действия специфических ингибиторов на интактную клетку. Например, циклогексимид ингибирует белковый синтез в цитозоле, но не влияет на синтез белка в митохондриях и хлоропластах. Некоторые другие антибиотики, такие как хлорамфеникол, тетрациклин и эритромицин, наоборот, подавляют синтез белка в энергетических органеллах, но не оказывают заметного влияния на его синтез в цитозоле (рис. 7-64). Подобные ингибиторы широко используются для изучения функций митохондрий и хлоропластов.

7- 7.5.1. Число митохондрий и хлоропластов в клетке поддерживается путем их деления [46] Митохондрии и хлоропласты никогда не возникают de novo, они всегда образуются путем деления уже существующих органелл. Как показывают наблюдения над живыми клетками, митохондрии не только делятся, но могут и сливаться друг с другом. Однако в среднем каждая органелла должна удвоить свою массу и затем разделиться пополам один раз за одну клеточную генерацию. Электронные микрофотографии дают основание полагать, что деление митохондрий начинается с образования кольцевой бороздки на внутренней мембране, подобно тому как это происходит при делении многих бактериальных клеток (рис. 7-65 и 7-66);

таким образом, деление митохондрий - это, по-видимому, контролируемый процесс, а не случайное расщепление надвое.

В большинстве клеток энергопреобразующие органеллы делятся на протяжении всей интерфазы;

таким образом, каждая из них делится независимо от остальных и от всей клетки. Точно так же репликация ДНК в органеллах происходит не только в период синтеза ядерной ДНК (S фаза), но и в другие фазы клеточного цикла. Хотя, по-видимому, индивидуальные молекулы ДНК реплицируются случайным образом (так что в данном клеточном цикле одни могут удвоиться несколько раз, а другие ни разу), общее число их за каждый клеточный цикл удваивается, поддерживая постоянство количества этой ДНК в клетке.

Число энергетических органелл может регулироваться в зависимости от потребности клетки в энергии;

например, значительное увеличение (в 5-10 раз) количества митохондрий наблюдается при многократном сокращении скелетной мышцы в течение длительного периода.

Более того, в ряде случаев деление органелл регулируется клеткой: так, хлоропласты некоторых водорослей, содержащих только одну или несколько таких органелл, делятся непосредственно перед цитокинезом, причем в той же плоскости, в которой будет происходить очередное деление клетки (рис. 7-67). Но действующие при этом регуляторные механизмы на молекулярном уровне не изучены.

7.5.2. В большинстве случаев геномы хлоропластов и митохондрий представлены кольцевыми молекулами ДНК [47] Молекулы ДНК органелл относительно просты, невелики и (за исключением митохондриальных геномов некоторых водорослей и простейших) замкнуты в кольцо. Размеры генома хлоропластов у всех исследованных организмов сходны, тогда как митохондриальные геномы Рис. 7-65. Схема деления митохондрии. Представленный здесь ход событий предполагают, основываясь на статичных изображениях, таких как микрофотография, приведенная на рис. 7-66.

Рис. 7-66. Электронная микрофотография делящейся митохондрии из клетки печени. (С любезного разрешения Daniel S. Friend.) Рис. 7-67. У примитивной нитчатой водоросли Klebsormidium деление хлоропласта происходит в определенное время на ранней стадии митоза. В клетке имеется только один хлоропласт, и плоскость его деления совпадает с плоскостью последующего разделения клетки. (Из J. D. Pickett-Heaps, Cytobios, 1972, 6, 167-183.) у растений намного больше, чем у животных (табл. 7-2). У многих органелл молекулы ДНК по размерам близки к вирусным ДНК. Например, в митохондриях млекопитающих геном представлен кольцевой ДНК, содержащей около 16500 пар оснований (более чем в 10000 раз меньше ядерного генома). У столь различных животных, как дрозофила и морской еж, размеры митохондриальной ДНК почти одинаковы (рис. 7-68). У растений, однако, кольцевой геном митохондрий в 100-150 раз больше в зависимости от вида растения. Размеры самой большой из этих молекул ДНК примерно вдвое меньше, чем у бактериальной ДНК, которая тоже замкнута в кольцо.

Все митохондрии и хлоропласты содержат по нескольку копий своей геномной ДНК (табл. 7-3). Эти молекулы ДНК обычно распределены в виде отдельных групп в матриксе митохондрий и в строме хлоропластов, где, как полагают, они прикреплены к внутренней мембране. Хотя способ упаковки ДНК неизвестен, геном по своей структуре, вероятно, сходен не с хроматином эукариот, а с бактериальным геномом. Например, как и у бактерий, здесь нет гистонов.

В клетках млекопитающих митохондриальная ДНК составляет меньше 1% всей клеточной ДНК. Однако в других клетках (например, в листьях высших растений или в очень крупных яйцах амфибий) доля Таблица 7-2. Размеры геномов органелл1) Тип ДНК Размеры в тысячах пар нуклеотидов ДНК хлоропластов Высшие растения 120- Chlamydomonas (зеленая водоросль) Митохондриальная ДНК Животные (включая плоских червей, насекомых и млекопитающих) 16- Высшие растения 150- Грибы Schizosaccharomyces pombe (дрожжи) Aspergillus nidulans Neurospora crassa Saccharomyces cerevisiae (дрожжи) Chlamydomonas (зеленая водоросль) 16 (линейная молекула) Простейшие Trypanosoma brucei Paramecium 40 (линейная молекула) 1) Эти геномы представлены кольцевыми молекулами ДНК, если не указано иное.

Рис. 7-68. Электронная микрофотография кольцевой ДНК из митохондрии млекопитающего во время репликации. Пока реплицировался только участок между двумя точками, указанными стрелками (цепи, выделенные белым цветом). (С любезного разрешения David Clayton.) Таблица 7-3. Относительное количество ДНК органелл в некоторых клетках и тканях Организмы Ткань или тип клеток Число молекул ДНК Число органелл в Доля ДНК органелл на 1 органеллу клетке во всей ДНК клетки, % Митохондриальная ДНК Крыса Печень 5-10 1000 Мышь Клетки линии L 5-10 100 < Дрожжи * Вегетативные 2-50 1-50 клетки Лягушка Яйцеклетка 5-10 107 ДНК хлоропластов Chlamydomonas Вегетативные клетки 80 1 Кукуруза Листья 20-40 20-40 ДНК энергетических органелл может быть намного больше (табл. 7-3);

в них осуществляется также и большая доля всего клеточного синтеза РНК и белков.

7.5.3. Митохондрии и хлоропласты обладают полноценной генетической системой [48] Несмотря на небольшое число белков, кодируемых генами митохондрий и хлоропластов, эти органеллы осуществляют репликацию и транскрипцию своей ДНК и белковый синтез. Эти процессы протекают в матриксе митохондрий и строме хлоропластов. Хотя белки, участвующие во всех этих процессах, специфичны для органелл, большая часть их кодируется ядерным геномом (разд. 7.5.17). Это тем более удивительно в связи с тем, что весь аппарат белкового синтеза в органеллах сходен с бактериальным, а не с эукариотическим. У хлоропластов это сходство особенно велико:

1. Рибосомы хлоропластов очень напоминают рибосомы Е. coli как по своей чувствительности к различным антибиотикам (хлорамфениколу, стрептомицину, эритромицину, тетрациклину и др.), так и по структуре. При этом не только поразительно сходны нуклеотидные последовательности рибосомных РНК хлоропластов и Е. coli, но рибосомы хлоропластов способны использовать тРНК бактерий при синтезе белка.

Во всех этих отношениях рибосомы хлоропластов отличаются от рибосом, находящихся в цитозоле растительных клеток.

2. Синтез белка в хлоропластах начинается с N-формилметионина, как и у бактерий, а не с метионина, как в цитозоле эукариотических клеток.

3. ДНК хлоропластов в отличие от ядерной ДНК может транскрибироваться с помощью РНК-полимеразы из Е. coli с образованием хлоропластных мРНК, которые эффективно транслируются белок-синтезирующей системой Е. coli.

Хотя у митохондрий генетические системы гораздо менее сходны с аналогичными системами современных бактерий, чем у хлоропластов, митохондриальные рибосомы тоже чувствительны к противобактериальным антибиотикам, а белковый синтез в митохондриях начинается с N формилметионина.

7.5.4. Геном хлоропластов высших растений содержит около 120 генов [49] Гены хлоропластов наиболее изучены у растений и зеленых водорослей, у которых эти органеллы очень сходны. Геном хлоропласта представляет собой кольцевую молекулу ДНК;

в настоящее время определена его полная нуклеотидная последовательность у табака и одного печеночника. Полученные данные говорят о том, что гены хлоропластов этих очень отдаленно родственных высших растений практически идентичны. Помимо четырех рибосомных РНК эти геномы кодируют около 20 рибосомных белков, некоторые субъединицы хлоропластной РНК полимеразы, несколько белков, входящих в состав фотосистем I и II, субъединицы АТР-синтетазы, части ферментных комплексов электрон транспортной цепи, одну из двух субъединиц рибулозобисфосфат-карбоксилазы и 30 тРНК (рис. 7-69). Кроме того, последовательность ДНК, по видимому, кодирует еще по меньшей мере 40 белков с невыясненной функцией. Удивительно, что все известные белки, кодируемые в хлоропластах, входят в состав больших ферментных комплексов, которые содержат также одну или несколько субъединиц, кодируемых ядерным геномом. Возможные причины этого будут рассмотрены позже (разд. 7.5.17).

Поражает сходство хлоропластного и бактериального геномов. Основные регуляторные последовательности, такие как промоторы и терминаторы транскрипции, в обоих геномах фактически идентичны. Белки, кодируемые в хлоропластах, очень похожи на бактериальные, а некоторые группы генов с близкими функциями (например, кодирующие белки рибосом) организованы одинаково в геномах хлоропластов, Е. coli и цианобактерий.

Для того чтобы проследить цепь эволюции от бактерий до хлоро- Рис. 7-69. Организация генома хлоропласта у печеночника. Для этого генома определена полная нуклеотидная последовательность. У всех высших растений организация хлоропластных геномов очень сходна, размеры кольцевой молекулы ДНК варьируют от вида к виду в зависимости от того, какая часть ДНК вокруг генов, кодирующих рибосомные РНК 16S и 23S, представлена двумя копиями.

пластов, потребуются детальные сравнения гомологичных нуклеотидных последовательностей, но некоторые выводы можно сделать уже сейчас:

1) хлоропласты высших растений произошли от фотосинтезирующих бактерий;

2) геном хлоропластов остается почти неизменным уже по меньшей мере несколько сот миллионов лет (именно столько лет назад, по видимому, разошлись пути эволюции печеночников и табака);

3) многие из генов исходной бактерии можно сейчас идентифицировать в ядерном геноме, в который они были перенесены и сохранились до настоящего времени. Например, хотя у высших растений белки рибосом в хлоропластах родственны бактериальным белкам и сами эти рибосомы сходны с рибосомами бактерий, две трети из примерно 60 белков хлоропластных рибосом кодируются в ядре клетки.

7- 7.5.5. Геном митохондрий имеет ряд поразительных особенностей [50] Геном хлоропластов не был первым полностью расшифрованным геномом органелл. Первым оказался митохондриальный геном человека: относительно малые размеры сделали его особенно привлекательным объектом для молекулярных генетиков, вооруженных новейшей методикой секвенирования ДНК (см. разд. 4.6.6), и в 1981 г. была опубликована полная последовательность этого генома, состоящая из 16569 пар нуклеотидов. Сопоставляя ее с известными нуклеотидными последовательностями тРНК и частичными аминокислотными последовательностями белков, кодируемых генами митохондрий, удалось определить на кольцевой молекуле ДНК локализацию всех этих генов (рис. 7-70). По сравнению с геномами ядра, хлоропластов и бактерий митохондриальный геном человека имеет несколько поразительных особенностей:

1) здесь в отличие от других геномов практически каждый нуклеотид входит в состав кодирующей последовательности либо для белка, либо для одной из рРНК или тРНК. Поскольку эти кодирующие последовательности переходят непосредственно одна в другую, для регуляторных последовательностей ДНК остается очень мало места;

2) если в цитозоле имеется по меньшей мере 31 тРНК для различных аминокислот, а в хлоропластах - 30 тРНК, то в митохондриях для осуществления белкового синтеза используются всего 22 тРНК. В митохондриях обычные правила спаривания кодонов с антикодонами со- Рис. 7-70. Организация митохондриального генома человека, установленная в результате определения полной нуклеотидной последовательности ДНК. Геном содержит два гена рРНК, 22 гена тРНК и 13 участков, кодирующих белки. Определены также полные последовательности молекул ДНК митохондриальных геномов коровы и мыши, которые содержат те же гены и организованы сходным образом.

Таблица 7-4. Различия между «универсальным» кодом и митохондриальными генетическими кодами* Кодон «Универсальный» код Митохондриальные коды Млекопитающие Дрозофила Дрожжи Растения UGA STOP Тrp Тrр Тrр STOP AUA Ilе Met Met Met Ile CUA Leu Leu Leu Thr Leu AGA Arg STOP Ser Arg Arg AGG * Курсивом и цветом выделены значения кодонов, отличающиеся от «универсального» кода.

блюдаются менее строго, и многие молекулы тРНК способны узнавать любой из четырех нуклеотидов в третьей (неоднозначной) позиции (разд.

5.1.6). Такое считывание «двух из трех» дает возможность одной тРНК связываться с любым из четырех различных кодонов и позволяет обходиться меньшим числом тРНК при синтезе белка;

3) сопоставление нуклеотидных последовательностей митохондриальных генов с аминокислотными последовательностями белков выявило, возможно, самую поразительную особенность: генетический код в митохондриях видоизменен, и значения четырех из 64 кодонов отличны от значений этих кодонов в других геномах (табл. 7-4).

Почти полная идентичность генетического кода у всех организмов служит убедительным доводом в пользу того, что все клетки произошли от общего предшественника. Как же в этом случае объяснить некоторые отличия генетического кода митохондрий? Приблизиться к пониманию этого помогли недавно полученные данные о различии генетического кода в митохондриях разных организмов. Например, триплет UGA, служащий в универсальном коде стоп-кодоном, в митохондриях млекопитающих, грибов и простейших кодирует триптофан, но в митохондриях растений используется как стоп-кодон. Аналогичным образом триплет AGG, обычно кодирующий аргинин, в митохондриях млекопитающих обозначает сигнал "stop", а у дрозофилы кодирует серин (табл. 7-4). Подобные отклонения указывают на то, что в генетическом коде митохондрий могут происходить случайные перемены. Вероятно, возможность появления и закрепления в потомстве случайных изменений в значении кодона связана с необычайно малым числом белков, кодируемых митохондриальным геномом;

в большом геноме подобные изменения привели бы к нарушению функции многих белков и, как следствие, к гибели клетки.

7.5.6. Митохондрии животных имеют самую простую из известных генетических систем [52] Сравнение последовательностей ДНК у разных организмов показывает, что в митохондриальном геноме скорость замены нуклеотидов в процессе эволюции в 10 раз выше, чем в ядре, что, вероятно, объясняется снижением точности либо репликации, либо репарации митохондриальной ДНК, либо того и другого вместе. Поскольку в митохондриях животной клетки все РНК и белки образуются в результате репликации и экспрессии последовательности ДНК, состоящей всего лишь из 16500 нуклеотидов, вероятность ошибки на каждый считываемый нуклеотид в ходе репликации и репарации ДНК, транскрипции с помощью РНК-полимеразы и трансляции при синтезе белка на митохондриальной рибосоме может быть относительно высокой без вреда для органеллы. По-видимому, этим и объясняется, почему механизмы таких процессов относительно просты по сравнению с теми, которые используются клеткой для тех же целей вне органелл. Например, можно предположить (хотя это еще достоверно не установлено), что наличие всего только 22 тРНК и необычно малые размеры рРНК (менее 2/3 от их величины у Е. coli) снижают точность белкового синтеза в митохондриях.

Благодаря относительно быстрой эволюции митохондриальных генов сравнение последовательностей в их ДНК может быть особенно полезным для датирования таких недавних событий, как этапы эволюции приматов (см. разд. 1.2.2).

7- 7.5.7. Почему у растений такой большой митохондриальный геном? [52] У растений геном митохондрий значительно больше, чем в животных клетках, и содержание митохондриальной ДНК варьирует в широких пределах - примерно от 150000 до 2,5 млн. пар нуклеотидов. И тем не менее митохондриальный геном у растений, видимо, кодирует немногим больше белков, чем у животных. К этому можно еще добавить, что, например, внутри одного из семейств растений (тыквенных) размеры митохондриального генома различаются в семь раз;

а линейный митохондриальный геном зеленой водоросли Chlamydomonas имеет такие же размеры, как и в животных клетках, и составляет 16000 пар нуклеотидов.

О последовательностях нуклеотидов в митохондриальной ДНК высших растений сведений очень мало, но секвенирован почти полностью большой (78 000 п. н.) митохондриальный геном дрожжей Saccharomyces cerevisiae, и оказалось, что только около трети его кодирует белки. Эти данные говорят о том, что, возможно, большая часть «избыточной» ДНК в митохондриях дрожжей (а может быть, и высших растений) не имеет существенного значения для организма.

7.5.8. Некоторые гены органелл содержат интроны [53] В обеих детально изученных митохондриальных системах - человеческой и дрожжевой - важную роль играет процессинг РНК предшественников. В клетках человека обе цепи митохондриальной ДНК транскрибируются с одинаковой скоростью от единственного промотора на каждой цепи, и при этом образуются две различные гигантские молекулы РНК, каждая из которых представляет собой полную копию одной цепи ДНК. Таким образом, транскрипция совершенно симметрична. Молекула РНК, транскрибированная с одной из цепей ДНК, которую называют тяжелой цепью (Н-цепью) из-за ее высокой плотности, выявляемой в градиенте CsCl, расщепляется нуклеазами, и в результате получаются две молекулы рРНК, большая часть митохондриальных тРНК и около десятка РНК, содержащих концевой поли(А). В отличие от этого процессинг РНК, транскрибированной с легкой цепи (L-цепи), приводит к образованию только восьми тРНК и одной малой РНК, содержащей поли(А).

Остальные 90% нуклеотидов этого транскрипта, видимо, не несут полезной информации (будучи комплементарными кодирующей последовательности, синтезированной на другой цепи) и расщепляются. Как полагают, РНК, содержащие концевой поли(А), представляют собой митохондриальные мРНК;

у них отсутствует «кэп» на 5'-конце, а 3'-концевой участок поли(А) содержит около 55 нуклеотидов. Этот полинуклеотидный хвост добавляется после транскрипции при участии митохондриальной поли-А-полимеразы.

В отличие от человека у некоторых растений и грибов (включая дрожжи) митохондриальные гены содержат интроны, которые должны быть удалены из транскрипта с последующим сплайсингом (разд. 3.2.7). У растений интроны обнаружены также примерно в 20 генах хлоропластов.

Многие интроны в генах органелл содержат родственные нуклеотидные последовательности, которые могут исключаться из РНК-транскриптов в результате реакции, катализируемой самой РНК (разд. 9.4.14), хотя в этом «самосплайсинге» обычно участвуют и белки. Открытие интронов в генах органелл было неожиданным с точки зрения эндосимбиотической теории происхождения энергопреобразующих органелл, так как в генах бактерий, от предков которых могли произойти митохондрии и хлоропласты, интронов не обнаружено.

У дрожжей интроны могут иметься в митохондриальном гене одного штамма, но отсутствовать в том же гене другого штамма. По видимому, такие «факультативные» интроны способны включаться в гены и выходить из них подобно транспозонам. С другой стороны, в некоторых митохондриальных генах дрожжей интроны занимают те же позиции, что и в митохондриях Aspergillus и Neurospora;

значит, они были унаследованы от общего предка этих трех грибов. Вероятно, интроны имеют древнее происхождение, и хотя они были утрачены многими бактериями, они сохранились в геномах тех органелл, где регуляция сплайсинга РНК помогает контролировать экспрессию гена (разд. 10.5.5).

7- 7.5.9. Неменделевское (цитоплазматическое) наследование митохондриальных генов позволяет отличать их от генов клеточного ядра [54] По ряду причин большинство экспериментов по изучению механизмов биогенеза митохондрий проводится на культурах Saccharomyces carlsbergensis (пивные дрожжи) и S. cerevisiae (пекарские дрожжи). Во-первых, при росте на глюкозе эти дрожжи обнаруживают уникальную способность существовать только за счет гликолиза и поэтому могут обходиться без функционально активных митохондрий, т.е. без окислительного фосфорилирования. Это дает возможность работать с клетками, митохондриальная и ядерная ДНК которых несут мутации, препятствующие нормальному развитию митохондрий. Такие мутации летальны почти у всех организмов. Во-вторых, дрожжи - простые одноклеточные эукариоты - легко выращивать и подвергать биохимическим исследованиям. И наконец, у дрожжей, обычно размножающихся бесполым способом путем почкования (асимметричного митоза), встречается и половой процесс. При половом размножении две гаплоидные клетки сливаются, образуя диплоидную зиготу, которая затем либо делится путем митоза, либо претерпевает мейоз и снова дает гаплоидные клетки.

Возможность контролировать в лабораторных условиях чередование бесполого и полового размножения (разд. 13.2) намного облегчает проведение генетического анализа. Такой анализ позволяет выявить гены, ответственные за функцию митохондрий, и установить, которые из них находятся в ядерной ДНК и которые - в митохондриальной, поскольку мутации митохондриальных генов не наследуются по законам Менделя, которым подчиняется наследование ядерных генов.

Рис. 7-71. Различие в схеме наследования митохондриальных и ядерных генов у дрожжей. Две дрожжевые клетки из четырех, образовавшихся в результате мейоза, получают тот или иной ядерный ген от одной гаплоидной родительской клетки, а две другие - от другой (менделевское наследование). В отличие от этого в результате постепенной митотической сегрегации митохондрий в период вегетативного роста (см. текст) вполне может случиться, что все четыре клетки, образовавшиеся при мейозе, получат митохондриальные гены только от одной из двух гаплоидных родительских клеток (неменделевское, или цитоплазматическое, наследование). В этом примере мутация митохондриального гена придает митохондриям устойчивость к хлорамфениколу - ингибитору белкового синтеза в энергопреобразующих органеллах и бактериях (разд. 5.1.15).

На рис. 7-71 приведен пример неменделевского (цитоплазматического) наследования митохондриальных генов в потомстве гаплоидных дрожжевых клеток. Мутантный ген придает белок-синтезирующей системе митохондрий устойчивость к хлорамфениколу;

дрожжевые клетки, несущие такой ген, можно легко обнаружить, выращивая культуры в присутствии хлорамфеникола на таком субстрате, как глицерол, который нельзя использовать для гликолиза. В условиях блокады гликолиза АТР будет доставляться только функционально активными митохондриями, и поэтому на такой среде способны расти лишь клетки, обладающие устойчивыми к хлорамфениколу митохондриями. При слиянии гаплоидной клетки, устойчивой к хлорамфениколу, с гаплоидной клеткой дикого типа, чувствительной к этому антибиотику, образуется диплоидная зигота, содержащая смесь митохондрий как мутантного, так и дикого типа. Но если в результате митоза от зиготы отпочкуется диплоидная дочерняя клетка, то в нее перейдет лишь небольшая часть митохондрий. После нескольких митотических циклов в какой-то из новых клеток все митохондрии могут оказаться одинаковыми - либо мутантного, либо дикого типа. Поэтому все потомство такой клетки будет иметь генетически идентичные митохондрии. Такой случайный процесс, в результате которого образуется диплоидное потомство с митохондриальной ДНК только одного типа, называют митотической сегрегацией. Когда диплоидная клетка с одним типом митохондрий претерпевает мейоз, все четыре дочерние гаплоидные клетки получают одинаковые митохондриальные гены.

Этот тип наследования называют неменделевским, или цитоплазматтеским, в отличие от менделевского наследования ядерных генов (рис. 7-71);

он указывает на то, что изучаемый ген находится вне ядерных хромосом, т.е., вероятно, в органеллах цитоплазмы.

7.5.10. У многих организмов гены органелл наследуются по материнской линии [55] Для некоторых организмов, в том числе и для человека, последствия цитоплазматической передачи генов более существенны, чем для дрожжей. У дрожжей сливающиеся две гаплоидные клетки имеют одинаковые размеры и вносят в зиготу одинаковое количество митохондриальной ДНК (рис. 7-71). Таким образом, у дрожжей митохондриальный геном наследуется от обоих родителей, вносящих равный вклад в генофонд потомства (хотя, как мы видели, спустя несколько генераций отдельные потомки нередко будут содержать митохондрии только одного из родительских типов). В отличие от этого у высших животных яйцеклетка вносит в зиготу намного больше цитоплазмы, чем спермий, а у некоторых животных спермин могут вообще не вносить цитоплазмы. Поэтому можно думать, что у высших животных митохондриальный геном будет передаваться только от одного родителя, а именно по материнской линии. Это было подтверждено в экспериментах с лабораторными животными двух линий, различающихся по типу митохондриальной ДНК. При скрещивании животных, несущих митохондриальную ДНК типа А, с животными типа В получается потомство, содержащее митохондриальную ДНК только материнского типа. Точно так же, если проследить распределение различных последовательностей митохондриальной ДНК в больших семьях, можно показать, что ДНК митохондрий и у человека наследуется по материнской линии.

Примерно у двух третей высших растений хлоропласты мужского родителя (они содержатся в пыльцевых зернах) не попадают в зиготу;

таким образом, ДНК хлоропластов, так же как и митохондрий, наследуется по материнской линии. У других растений дефектные хлоропласты служат причиной пестролистности: в результате митотической сегрегации в процессе роста и развития растения смесь нормальных и дефектных хлоропластов разделяется, что приводит к образованию листьев с чередующимися зелеными и белыми участками;

в зеленых участках содержатся нормальные хлоропласты, а в белых - дефектные.

7.5.11. Как показывает изучение мутантов "petite" у дрожжей, важнейшую роль в биогенезе митохондрий играет клеточное ядро Ключевую роль в анализе биогенеза митохондрий сыграли генетические исследования на дрожжах. Ярким примером служит изучение мутантов с обширными делециями в митохондриальной ДНК, которая приводит к полному прекращению белкового синтеза в митохондриях. Не удивительно поэтому, что у таких мутантов отсутствуют «дышащие» митохондрии. Редко встречающаяся, но важная группа таких мутантов вообще не имеет митохондриальной ДНК. Так как при росте на среде с низким содержанием глюкозы такие мутанты образуют необычно мелкие колонии, всех мутантов с дефектными митохондриями называют цитоплазматическими мутантами petite.

Рис. 7-72. Электронные микрофотографии тонких срезов дрожжевых клеток;

можно видеть строение нормальных митохондрий (А) и строение митохондрий у мутанта petite, у которого отсутствуют все белки, кодируемые митохондриальным геномом (Б). В последнем случае органелла состоит только из белков, кодируемых ядерным геномом. (С любезного разрешения Barbara Stevens.) Хотя у мутантов petite нет митохондриального синтеза белка и поэтому они не образуют митохондрий, способных синтезировать АТР, тем не менее у них есть митохондрии с нормальной наружной мембраной, но с плохо развитыми кристами внутренней мембраны (рис. 7-72). В таких митохондриях имеются практически все митохондриальные белки, кодируемые ядерным геномом и переносимые в органеллу из цитозоля, в том числе ДНК- и РНК-полимеразы, все ферменты цикла лимонной кислоты и большинство белков внутренней мембраны. Это наглядно демонстрирует преобладающую роль ядерного генома в биогенезе митохондрий. Кроме того, ясно, что органеллы, способные делиться надвое, могут неопределенно долго воспроизводиться в цитоплазме пролиферирующих эукариотических клеток даже при полном отсутствии собственного генома. Многие биологи полагают, что таким же путем обычно воспроизводятся пероксисомы (разд. 8.5.2).

Что касается хлоропластов, то здесь ближайшими аналогами дрожжевых митохондриальных мутантов petite могут служить мутанты таких одноклеточных водорослей, как Euglena. Клетки, в которых отсутствует хлоропластный синтез белка, все же содержат хлоропласты и вполне жизнеспособны при наличии окисляемых субстратов. Однако если у высших растений развитие зрелых хлоропластов блокировано из-за отсутствия света (разд. 20.4.1), из-за дефектов их ДНК или ее полного отсутствия, то такие растения погибают, как только запасы питательных веществ истощаются.

7- 7.5.12. Образование митохондрий и хлоропластов регулируется белками, кодируемыми ядерным геномом [57] Генетические системы ядра и органелл должны координировать свое участие в построении митохондрий и хлоропластов. Общий контроль, несомненно, осуществляется ядром, поскольку у мутантов с блокированным синтезом белка в органеллах митохондрии и хлоропласты образуются в нормальных количествах, хотя и с нарушенной функцией. В некоторых из таких функционально дефектных органелл продолжается синтез ДНК и частично РНК, из чего следует, что все необходимые для этих процессов белки кодируются ядерными генами.

Ядро должно регулировать число митохондрий и хлоропластов в соответствии с потребностью клетки;

ядро должно также контролировать количество белков, синтезируемых на рибосомах внутри органелл, чтобы поддерживать надлежащий баланс между участием ядра и органелл в биогенезе митохондрий и хлоропластов. Хотя эти регуляторные аспекты имеют ключевое значение для понимания гомеостаза эукариотических клеток, наши знания об этом недостаточны.

Ядерную регуляцию белкового синтеза в митохондриях интенсивно изучали на дрожжевых мутантах. У Saccharomyces cerevisiae было выделено множество мутантов с изменениями в ядерном (а также и в митохондриальном - см. разд. 7.5.9) геноме, не способных к образованию дышащих митохондрий. Каждый из этих ядерных мутантов petite имеет один дефектный белок, кодируемый ядерной ДНК и необходимый для функционирования митохондрий. Выращивая дрожжевые культуры на среде с мечеными аминокислотами и циклогексимидом, подавляющим синтез белков, кодируемых ядерными генами, можно установить, какое влияние оказывает каждая из таких ядерных мутаций на экспрессию митохондриальных генов. Оказалось, что мутации ядерных генов, кодирующих митохондриальные белки, непосредственно связанные с дыхательной функцией митохондрий (такие, как одна из субсединиц АТР- синтетазы или один из ферментов цикла лимонной кислоты), как и следовало ожидать, не влияют на белковый синтез в митохондриях. Мутации же тех генов ядра, в которых закодированы белки митохондриальных рибосом или субъединицы митохондриальной РНК-полимеразы, блокируют в митохондриях синтез всех белков.

К регуляторным процессам наибольшее отношение имеет третья группа ядерных мутантов petite, у которых отсутствуют или изменены один или несколько генных продуктов, кодируемых митохондриальной ДНК. В ядре дрожжевой клетки обнаружено более 50 таких генов, и некоторые из них, необходимые для экспрессии того или иного митохондриального гена, уже подвергнуты клонированию и охарактеризованы.

Часть этих генов кодирует белки, которые, видимо, воздействуют прямо на определенную молекулу мРНК, повышая либо ее стабильность, либо эффективность ее использования в митохондриальном белковом синтезе. Продукты других генов участвуют в сплайсинге митохондриальной РНК и, следовательно, необходимы для экспрессии тех генов митохондрий, которые содержат интроны. Как полагают, оба типа ядерных генов участвуют в регуляции функций белков, кодируемых митохондрией, в соответствии с метаболическими потребностями клетки, однако механизмы этой регуляции не известны.

Хотя главная роль и принадлежит ядру, есть данные о том, что взаимодействие генетических систем ядра и митохондрий происходит в обоих направлениях. Например, если в интактной клетке блокировать митохондриальный синтез белка, то будет наблюдаться повышенное образование переносимых в органеллу ферментов, участвующих в синтезе митохондриальных ДНК, РНК и белков, как будто клетка пытается преодолеть эту блокаду. Природу сигнала, посылаемого от митохондрий к ядру, еще предстоит выяснить.

7.5.13. Энергопреобразующие органеллы содержат тканеспецифические белки [58] Клетка регулирует функции митохондрий и более обычными способами. У млекопитающих главным метаболическим путем переработки азотсодержащих продуктов обмена служит цикл мочевины. Образующаяся при этом мочевина выводится с мочой. Ферменты, кодируемые ядерным геномом, катализируют несколько этапов этого цикла в митохондриальном матриксе. Мочевина образуется лишь в некоторых органах, таких как печень, и ферменты цикла мочевины синтезируются и переходят в митохондрии только в этих органах. Кроме того, дыхательные ферментные комплексы, входящие в состав внутренней митохондриальной мембраны, у млекопитающих содержат несколько тканеспецифических субъединиц, которые кодируются ядром и, вероятно, действуют как регуляторы переноса электронов. Например, у некоторых людей с наследственным заболеванием мышц одна из субъединиц цитохромоксидазы дефектна;

поскольку эта субъединица специфична для скелетных мышц, волокна сердечной мышцы у этих людей функционируют нормально, что позволяет таким больным выживать. Как и следовало ожидать, тканеспецифические различия свойственны и хлоропластным белкам, кодируемым ядерными генами.

Рассмотрим теперь, каким образом специфические цитоплазматические белки переносятся в митохондрии и хлоропласты;

более детально этот вопрос обсуждается в гл. 8.

7.5.14. Перенос белков в митохондрии и хлоропласты требует затраты энергии [59] Большая часть белков, содержащихся в митохондриях и хлоропластах, импортируется этими органеллами из цитозоля (разд. 8.4). В связи с этим возникают два вопроса: как клетка направляет белки к надлежащей органелле и каким образом эти белки проникают в нее?

Частичный ответ был получен при изучении транспорта малой субъединицы (S) рибулозобисфосфат-карбоксилазы в строму хлоропласта.

Если мРНК, выделенную из цитоплазмы одноклеточной водоросли Chlamydomonas или из листьев гороха, ввести в качестве матрицы в белок синтезирующую систему in vitro, то одним из многих образующихся белков будет предшественник S-белка, называемый пpo-S, который больше S на 50 аминокислотных остатков. При инкубации белка пpo-S с интактными хлоропластами он проникает в органеллы и превращается там под действием эндопептидазы в S-белок. Затем этот S-белок связывается с большой субъединицей рибулозобисфосфат-карбоксилазы, синтезируемой на рибосомах хлоропласта, и образует с нею в строме активный фермент. Перенос белка пpo-S в хлоропласт, как и следовало ожидать для процессов этого типа, требует затраты энергии, которую доставляет гидролиз АТР (разд. 8.4.7).

Сходным образом осуществляется и транспорт белков внутрь митохондрий. Если очищенные митохондрии дрожжей инкубировать с клеточным экстрактом, содержащим только что синтезированные радиоактивные дрожжевые белки, то можно наблюдать, что митохондриальные белки, кодируемые ядерным геномом, избирательно включаются в митохондрии - точно так же, как это происходит в интактной клетке. При этом белки наружной и внутренней мембран, матрикса и межмебранного пространства находят свой путь к соответствующему компартменту митохондрии (см. рис. 8-30).

По-видимому, транспорт белков через мембраны митохондрий и хлоропластов происходит в специальных контактных зонах, где внутренняя и наружная мембраны соединяются (рис. 7-73). Белки приходят сюда в форме предшественников, содержащих особый сигнальный пептид. Для того чтобы транспортируемый белок мог быть перенесен в органеллу в такой зоне, его пептидная цепь должна развернуться (см. разд.

8.4.4).

7.5.15. Хлоропласты сами синтезируют большую часть своих липидов, а митохондрии в основном получают их из цитозоля [60] Помимо нуклеиновых кислот и белков для построения новых митохондрий и хлоропластов нужны липиды. Все необходимые хлоропластам липиды обычно образуются в самих органеллах. В листьях шпината, например, синтез всех жирных кислот клетки происходит в хлоропластах, и только образование ненасыщенных связей в их молекулах - в других местах. Даже важнейшие гликолипиды хлоропластов образуются в них самих.

В отличие от этого митохондрии получают большую часть своих липидов извне. В животных клетках фосфолипиды фосфатидилхолин и фосфатидилсерин синтезируются в эндоплазматическом ретикулуме и затем переходят в наружную мембрану митохондрий. Полагают (хотя это еще не доказано), что в процессе переноса участвуют специальные белки (разд. 8.6.15), а затем липиды включаются во внутреннюю мембрану - по видимому, в местах контакта двух мембран. Помимо декарбоксилирования получаемого извне фосфатидилсерина до фосфати- Рис. 7-73. Контактные участки. А. Схематическое изображение небольшой части митохондрии или хлоропласта, содержащей контактную область мембраны. Видимо, такие области участвуют в избирательном переносе белков в органеллу. Недавно контактные участки (называемые также контактными зонами) были выделены, и их специфические белковые компоненты в настоящее время изучаются. Через эти зоны переносятся белки, кодируемые клеточным ядром и синтезируемые в цитозоле. Б. Электронная микрофотография небольшого участка хлоропласта гороха, в котором контактная область (показана стрелками) помечена коньюгатами антител с золотом, которые, как полагают, связываются интегральным мембранным белком, участвующим в транспорте белков. (Из D. Pain, J. S. Kanwar, G. Blobel, Nature, 331, 232-237, 6, 1988.) дилэтаноламина, митохондрии сами катализируют превращение приносимых в органеллу липидов в кардиолипин. Кардиолипин представляет собой «двойной» фосфолипид, содержащий четыре остатка жирной кислоты;

этот липид содержится главным образом во внутренней мембране митохондрии, где составляет около 20% всех липидов.

7- 7.5.16. Митохондрии и хлоропласты, вероятно, произошли от эндосимбиотических бактерий [61] Как уже говорилось в гл. 1, «прокариотический» характер генетической системы органелл, особенно ярко выраженный у хлоропластов, позволяет предполагать, что митохондрии и хлоропласты произошли от бактерий, некогда поглощенных путем эндоцитоза. Согласно этой эндосимбиотической гипотезе, клетки эукариот в начале своего эволюционного пути были анаэробными организмами без митохондрий и хлоропластов, а затем вступили в прочный симбиоз с бактериями и приспособили их систему окислительного фосфорилирования для своих нужд (рис. 7-74). Полагают, что событие, приведшее к появлению митохондрий, произошло 1,5 млрд. лет назад, когда в атмосферу поступило значительное количество кислорода, еще до разделения линий животных и растений (см. рис. 7-61). Вероятно, хлоропласты растений и водорослей появились позднее в результате другого эндосимбиоза, когда клеткой были захвачены фотосинтезирующие бактерии, выделяющие молекулярный кислород. Обычно предполагают, что произошло по меньшей мере три независимых события этого рода, так как тогда можно было бы объяснить различие пигментов и других особенностей у современных высших растений и у зеленых, бурых и красных водорослей (см. рис. 7-62).

Рис. 7-74. Предполагаемый путь эволюционного происхождения митохондрий (выделены цветом). Иногда считают, что все митохондрии произошли от одного и того же предка, однако митохондрии таких эволюционно далеких друг от друга форм, как трипаносомы и эвгленовые (см.

рис. 1-16), могли возникнуть в результате независимых эндосимбиозов. Микроспоридии (Microsporidia, Protozoa) - coвременные анаэробные одноклеточные эукариоты, обитающие в кишечнике многих животных, не имеют митохондрий. Поскольку анализ нуклеотидной последовательности рРНК этих микроорганизмов показал, что в эволюционном отношении они очень далеки от всех других известных эукариот, предполагают, что предки микроспоридий тоже были анаэробами и были сходны с тем эукариотическим организмом, который впервые поглотил предка митохондрий (разд. 1.2.6).

Так как большинство генов, кодирующих белки современных митохондрий и хлоропластов, находится в ядерном геноме, можно думать, что в ходе эволюции эукариот значительная часть генов органелл была перенесена в ядерную ДНК. Это позволило бы объяснить, почему некоторые из ядерных генов, кодирующих митохондриальные белки, сходны с генами бактерий. Так, например, у курицы N-концевая аминокислотная последовательность митохондриального фермента супероксиддисмутазы гораздо больше похожа на соответствующий сегмент супероксиддисмутазы бактерий, чем на N-концевой участок того же фермента, выделенного из цитозоля тех же эукариотических клеток. Еще одним указанием на то, что подобные переносы участков происходили в ходе эволюции, служат обнаруженные в ядерном геноме некодирующие последовательности ДНК, имеющие, вероятно, недавнее митохондриальное происхождение;

очевидно, что эти последовательности были интегрированы в ядерный геном как «балластная» ДНК.

Какой же тип бактерий дал начало митохондриям? Расшифровка полной аминокислотной последовательности и трехмерный рентгеноструктурный анализ цитохромов типа с из различных бактерий выявили близкое сходство этих белков между собой и с цитохромом с дыхательной цепи митохондрий растительных и животных клеток. На основе этих и других биохимических данных было предложено эволюционное древо, изображенное на рис. 7-62. По-видимому, митохондрии произошли от особого рода пурпурных фотосинтезирующих бактерий, которые утратили способность к фотосинтезу и сохранили только дыхательную цепь. Однако до сих пор не ясно, все ли митохондрии (так же как и хлоропласты) возникли в результате одного единственного случая эндосимбиоза. Хотя митохондрии простейших имеют отчетливо выраженные прокариотические свойства, некоторые из них достаточно отличаются от митохондрий растительных и животных клеток, чтобы можно было предположить их независимое происхождение.

7.5.17. Для чего митохондриям и хлоропластам собственная генетическая система? [62] Почему митохондриям и хлоропластам необходима собственная генетическая система, тогда как другие органеллы, например пероксисомы и лизосомы, ее не имеют? Этот вопрос совсем не тривиален, так как поддержание отдельной генетической системы дорого обходится клетке: специально для этих целей в ядерном геноме должно быть закодировано более 90 белков, в том числе много рибосомных белков, аминоациал-тРНК-синтетазы, ДНК- и РНК-полимеразы, ферменты процессинга и модификации РНК (рис. 7-75). Большинство изученных белков из митохондрий и хлоропластов отличаются по аминокислотной последовательности от своих аналогов из других частей клетки, и есть основание полагать, что в этих органеллах сравнительно мало таких белков, которые могли бы встретиться еще где-нибудь. Это означает, что только для поддержания генетической системы каждого вида энергетических органелл в ядерном геноме должно быть не менее 90 дополнительных генов.

Причины такого «расточительства» неясны, и надежда на то, что разгадка будет найдена в нуклеотидных последовательностях митохондриальной ДНК, не оправдалась. Трудно представить себе, почему образующиеся в митохондриях белки должны непременно синтезироваться там, а не в цитозоле.

Одно время предполагалось, что некоторые из синтезируемых внутри органеллы белков слишком гидрофобны, чтобы пройти сквозь ее мембрану из цитозоля. Однако полученные позже данные показали, что такое объяснение неправдоподобно. Во многих случаях даже высоко- Рис. 7-75. Белки, синтезируемые в цитозоле и переносимые затем в митохондрию, не только составляют основную часть всех белков органеллы, но и играют важную роль в митохондриальной системе белкового синтеза. Из компонентов этой системы сама митохондрия синтезирует только мРНК, рРНК и тРНК.

гидрофобные субъединицы синтезируются в цитозоле. Более того, хотя отдельные белковые субъединицы различных митохондриальных ферментных комплексов весьма консервативны в ходе эволюции, места их синтеза изменяются. Различную локализацию генов, кодирующих субъединицы функционально эквивалентных белков у разных организмов, трудно объяснить с помощью какой бы то ни было гипотезы, постулирующей какие-то эволюционные преимущества современных генетических систем митохондрий и хлоропластов.

Возможно, генетические системы этих органелл представляют собой эволюционный тупик. В рамках эндосимбиотической гипотезы это означает, что процесс переноса генов эндосимбионта в ядерный геном хозяина прекратился раньше, чем был завершен;

может быть, в случае митохондрий эта остановка была результатом сравнительно недавних изменений в генетическом коде митохондрий. Такие изменения, вероятно, сделали бы оставшиеся митохондриальные гены функционально неактивными в случае их переноса в ядро.

Заключение Рост и деление митохондрий и хлоропластов контролируются двумя отдельными генетическими системами: геномом самой органеллы и ядерным геномом. Большая часть белков этих органелл закодирована в ядер- ной ДНК, синтезируется в цитозоле и затем переходит в органеллу. Однако некоторые белки митохондрий и хлоропластов и все их РНК кодируются в ДНК самих органелл и в них же синтезируются. Геном митохондрий человека содержит около 16500 пар нуклеотидов и кодирует рибосомные РНК, 22 транспортные РНК и 13 различных полипептидных цепей. Геном хлоропластов примерно в 10 раз больше генома митохондрий человека и содержит около 120 генов. Однако преобладающая роль в биогенезе органелл обоих типов принадлежит ядру: это подтверждается тем, что даже у таких мутантов, у которых отсутствует функционирующий геном органелл, частично функционирующие органеллы образуются в нормальном количестве.

Рибосомы хлоропластов очень сходны с бактериальными рибосомами, тогда как рибосомы митохондрий несколько больше отличаются от последних;

поэтому проследить происхождение митохондрий сложнее. Однако сходство между белками дает основание предполагать, что те. и другие органеллы произошли от бактерий, вступивших в устойчивый симбиоз (в качестве эндосимбионтов) с какими-то примитивными эукариотическими клетками;

как полагают, митохондриям дали начало пурпурные бактерии, а хлоропластам (позднее) - цианобактерии или близкие к ним организмы. Хотя многие гены этих древних бактерий все еще используются для синтеза белков органеллы, большая их часть по неясным причинам включилась в ядерный геном, где они кодируют ферменты, которые сходны с бактериальными и синтезируются на рибосомах в цитозоле, а затем переходят в органеллу.

Литература Общая Becker W.M. The World of the Cell, pp. 117-284. Menlo Park CA, Benjamin-Cummings, 1986.

Ernster L. ed. Bioenergetics. New York, Elsevier, 1984.

Harold F. M. The Vital Force: A Study of Bioenergetics. New York, W. H. Freeman, 1986.

Lehninger A.L. Principles of Biochemistry, Chapters 16, 17, 23. New York, Worth, 1982.

Nicholls D. G. Bioenergetics: An Introduction to the Chemiosmotic Theory. New York, Academic Press, 1982.

Stryer L. Biochemistry, 3rd ed., Chapters 16, 17 and 22. New York, W. H. Freeman, 1988.

Цитируемая 1. Ernster L., Schatz G. Mitochondria: a historical review. J. Cell Biol., 91, 227s-255s, 1981.

Fawcett D. W. The Cell, 2nd ed., pp. 410-485. Philadelphia, Saunders, 1981.

Harold F. M. The Vital Force: A Study of Bioenergetics, Chapter 7. New York, W.H. Freeman, 1986.

Tzagoloff A. Mitochondria. New York, Plenum, 1982.

2. DePierre J. W., Ernster L. Enzyme topology of intracellular membranes. Annu. Rev. Biochem., 46, 201-261, 1977.

Srere P. A. The structure of the mitochondrial inner membrane-matrix compartment. Trends Biochem. Sci., 7, 375-378, 1982.

3. Krstic R. V. Ultrastructure of the Mammalian Cell, pp. 28-57. New York, Springer-Verlag, 1979.

Pollak J. K., Sutton R. The differentiation of animal mitochondria during development. Trends Biochem. Sci., 5, 23-27, 1980.

4. Geddes R. Glycogen: a metabolic viewpoint. Biosci. Rep., 6, 415-428, 1986.

McGilvery R. W. Biochemistry: A Functional Approach, 3rd ed. Philadelphia, Saunders, 1983.

Newsholme E.A., Start C. Regulation in Metabolism. New York, Wiley, 1973.

5. Baldwin J.E., Krebs H. The evolution of metabolic cycles. Nature, 291, 381-382, 1981.

Krebs H. A. The history of the tricarboxylic acid cycle. Perspect Biol. Med., 14, 154-170, 1970.

Reed I. J., Damuni Z., Merryfleld M. L. Regulation of mammalian pyruvate and branched-chain -keto acid dehydrogenase complexes by phosphorylation-dephosphorylation. Curr. Top. Cell Regul., 27, 41-49, 1985.

Williamson J. R., H. Cooper R. H. Regulation of the citric acid cycle in mammalian systems. FEBS Lett., Suppl. 117, K73-K85, 1980.

6. Mitchell P. Coupling of phosphorylation to electron and hydrogen transfer by a chemi-osmotic type of mechanism. Nature, 191, 144-148, 1961.

Racker E. From Pasteur to Mitchell: a hundred years of bioenergetics. Fed. Proc., 39, 210-215, 1980.

7. Hatefi Y. The mitochondrial electron transport and oxidative phosphorylation system. Annu. Rev. Biochem., 54, 1015-1070. 1985.

8. Nicholls D. G. Bioenergetics: An Introduction to the Chemiosmotic Theory, Chapter 3. New York, Academic Press, 1982.

Wood W. В., Wilson J. H., Benbow R. M., Hood L. E. Biochemistry: A Problems Approach, 2nd ed. Menlo Park CA, Benjamin-Cummings 1981. (See problems, Chapter 9, 12 and 14).

9. Al-Awgati A. Proton-translocating ATPase. Annu. Rev. Cell Biol, 2, 179-199, 1986.

Hinkle P. C., McCarty R.E. How cells make ATP. Sci. Am., 283(3), 104-123, 1978.

10. Durand R., Briand Y., Touraille S., Alziari S. Molecular approaches to phosphate transport in mitochondria. Trends Biochem. Sci., 6, 211-214, 1981.

Klingenberg M. The ADP, ATP shuttle of the mitochondrion. Trends Biochem. Sci., 4, 249-252, 1979.

LaNoue K. F., Schoolwerth A. C. Metabolite transport in mitochondria. Annu. Rev. Biochem., 48, 871-922, 1979.

11. Eisenberg D., Crothers D, Physical Chemistry with applications to the Life Sciences, Chapters 4 and 5. Menlo Park CA, Bemjamin-Cummings, 1979.

12. Hatefi Y. The mitochondrial electron transport and oxidative phosphorylation system. Annu. Rev. Biochem., 54, 1015-1069, 1985.

Wikstrom M., Saraste M. The mitochondrial respiratory chain. In: Bioenergetics (L. Ernster ed.), pp. 49-94. New York, Elsevier, 1984.

13. Racher E. A New Look at Mechanisms in Bioenergetics. New York, Academic Press, 1976. (A personal account of the concepts and history).

14. Awzel L. M., McKinney M., Narayanan P., Pedersen P. L. Structure of the mitochondrial F1 ATPase at 9-А resolution. Proc. Natl. Acad. Sci.

USA, 79, 5852-5856, 1982.

Futai M., Kanazawa H. Structure and function of protontranslocating adenosine triphosphatase (F0F1): biochemical approaches. Microbiol.

Rev., 47, 285-312, 1983.

Racker E., Stoeckenius W. Reconstruction of purple membrane vesicles catalyzing light-driven proton uptake and adenosine triphosphate formation. J. Biol. Chem., 249, 662-663, 1974.

Schneider E., Altendorf K. The proton-translocating portion (F0) of the E. coli. ATP synthase. Trends.Biochem. Sci., 9, 51-53, 1984.

15. Hammes G. G. Mechanism of ATP synthesis and coupled proton transport: studies with purified chloroplast coupling factor. Trends Biochem.

Sci., 8, 131-134, 1983.

Ogawa S., Lee Т. М. The relation between the internal phosphorylation potential and the proton motive force in mitochondria during ATP synthesis and hydrolysis. J. Biol. Chem., 259, 10004-10011, 1984.

Pederson P. L., Carafoli E. Ion motive ATPases. II. Energy coupling and work output. Trends Biochem. Sci., 12, 186-189, 1987.

Senior A. E. ATP synthesis by oxidative phosphorylation. Physiol. Rev., 68, 177-231, 1988.

16. Fillingame R. H. The proton-translocating pumps of oxidative phosphorylation. Annu. Rev. Biochem., 49, 1079-1113, 1980.

17. Chance В., Williams G.R. A method for the localization of sites for oxidative phosphorylation. Nature, 176, 250-254, 1955.

Dickerson R. E. The structure and history of an ancient protein. Sci. Am., 226(4), 58-72, 1972. (The conformation and evolution of cytochrome c).

Keilin D. The History of Cell Respiration and Cytochromes. Cambridge U. K., Cambridge University Press, 1966.

Spiro T.G. ed. Iron-Sulfur Proteins. New York, Wiley-Interscience, 1982.

18. Capaldi R.A., Darley-Usmar V., Fuller S., Millet F. Structural and functional features of the interaction of cytochrome с with complex III and cytochrome с oxidase. FEBS Lett., 138, 1-7, 1982.

Casey R. P. Membrane reconstruction of the energy-conserving enzymes of oxidative phosphorylation. Biochim. Biophys. Acta, 768, 319-347, 1984.

Leonard K., Haiker H., Weiss H. Three-dimensional structure of NADH: ubiquinone reductase (complex I) from Neurospora mitochondria determined by electron microscopy of membrane crystals. J. Моl. Biol., 194, 277-286, 1987.

Weiss H., Linke P., Haiker H., Leonard K. Structure and function of the mitochondrial ubiquinol: cytochrome с reductase and NADH:

ubiquinone reductase. Biochem. Sci. Trans., 15, 100-102, 1987.

19. Hackenbrock C.R. Lateral diffusion and electron transfer in the mitochondrial inner membrane. Trends Biochem. Soc. Trans., 15, 151-154, 1981.

20. Dutton P. L., Wilson D. F. Redox potentiometry in mitochondrial and photosynthetic bioenergetics. Biochim. Biophys. Acta, 346, 165-212, 1974.

Hamamoto Т., Carrasco N., Matsushita K., Kabak H. R., Montal M. Direct measurement of the electrogenic activity of D-type cytochrome oxidase from E. coli reconstituted into planar lipid bilayers. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 2570-2573, 1985.

Lehninger A. L. Bioenergetics: The Molecular Basis of Biological Energy Transformations, 2nd ed. Menlo Park CA, Benjamin-Cummings, 1971.

21. Prince R.C. The proton pump of cytochrome oxidase. Trends Biochem. Sci., 13, 159-160, 1988.

Slater Е. С. The Q Cycle, an ubiquitous mechanism of electron transfer. Trends Biochem. Sci., 8, 239-242, 1983.

22. Hanstein W. G. Uncoupling of oxidative phosphorylation. Trends Biochem. Sci., 1, 65-67, 1976.

23. Brand M. D., Murphy M. P. Control of electron flux through the respiratory chain in mitochondria and cells. Biol. Rev. Cambridge Philosophic.

Soc., 62, 141-193, 1987.

Erecinska A., Wilson D. F. Regulation of cellular energy metabolism. J. Membr. Biol., 70, 1-14, 1982.

Racker E. A New Look at Mechanisms in Bioenergetics. New York. Academic Press, 1976.

24. Klinyerberg M. Principles of carrier catalysis elucidated by comparing two similar membrane translocators from mitochondria, the ADP/ATP carrier and the uncoupling protein. Ann. N. Y. Acad. Sci., 456, 279-288, 1985.

Nicholls D.G., Rial E. Brown fat mitochondria. Trends Biochem. Sci., 9, 489-491, 1984.

25. Gottskalk G. Bacterial Metabolism, 2nd ed. New York, Springer-Verlag, 1986.

MacNab R.M. The bacterial flagellar motor. Trends Biochem. Sci., 9, 185-189, 1984.

Neidhardt F. C. et al, eds. Escherichia coli and Salmonella typhimurium: Cellular and Molecular Biology. Washington DC, American Society for Microbiology, 1987.

Skulachev V.P. Sodium bioenergetics. Trends Biochem. Sci., 9, 483-485, 1984.

Thauer R., Jungermann K., Decker K. Energy conservation in chemotrophic anaerobic bacteria. Bacteriol. Rev., 41, 100-180, 1987.

26. Bogorad L. Chloroplasts. J. Cell. Biol., 91, 256s-270s, 1981. (A historical review).

Clayton R. K. Photosynthesis: Physical Mechanisms and Chemical Patterns. Cambridge U.K., Cambridge University Press 1980 (Excellent general treatment).

Haliwell B. Chloroplast Metabolism - The Structure and Function of Chloroplasts in Green Leaf Cells. Oxford U.K., Clarendon, 1981.

Hoober J.K. Chloroplasts. New York, Plenum, 1984.

27. Cramer W.A., Widger W.R., Herrmann R.G., Trebst A. Topography and function of thylakoid membrane proteins. Trends Biochem. Sci., 10, 125-129, 1985.

Miller K.R. The photosynthetic membrane. Sci. Am., 241(4), 102-113, 1979.

28. Akazawa Т., Takabe Т., Kobayashi H. Molecular evolution of ribulose-l,5-bisphos-phate carboxylase/oxygenase (RuBisCO). Trends Biochem.

Sci., 9, 380-383, 1984.

Barber J. Structure of key enzyme refined. Nature, 325, 663-664, 1987.

Lorimer G.H. The carboxylation and oxygenation of ribulose-l,5-biphosphate: the primary events in photosynthesis and photorespiration.

Annu. Rev. Plant Physiol., 32, 349-383, 1981.

29. Bassham J.A. The path of carbon in photosynthesis. Sci. Am., 206(6), 88-100, 1962.

Preiss J. Starch, sucrose biosynthesis and the partition of carbon in plants are regulated by orthophosphate and triose-phosphates. Trends Biochem. Sci., 9, 24-27, 1984.

30. Bjorkman J., Berry J. High-efficiency photosynthesis. Sci. Am. 229(4), 80-93, 1973. (C4 plants).

Cholelet R. The biochemistry of photorespiration. Trends Biochem. Sci., 2,155-159, 1977.

Edwards G., Walker D. С3, С4 Mechanisms, and Cellular and Environmental Regulation of Photosynthesis. Berkeley, University of California Press, 1983.

Heber U., Krause G.H. What is the physiological role of photorespiration? Trends Biochem. Sci., 5, 32-34, 1980.

31. Clayton R. К. Photosynthesis: Physical Mechanisms and Chemical Patterns. Cambridge U.K., Cambridge University Press 1980.

Parson W. W. Photosynthesis and other reactions involving light. In: Biochemistry (G. Zubay ed.), 2nd ed., pp. 564-597. New York, Macmillan, 1988.

32. Barber J. Photosynthetic reaction centres: a common link. Trends Biochem. Sci., 12, 321-326, 1987.

Govindjee, Govindjee R. The absorption of light in photosynthesis. Sci. Am 231(6)68-82, 1974.

Li J. Light-harvesting chlorophyll a/b-proteins three-dimensional structure of a reconstituted membrane lattice in negative stain. Proc. Natl.

Acad. Sci. USA, 82, 386-390, 1985.

Zuber J. Structure of light-harvesting antenna complexes of photosynthetic bacteria, cyanobacteria, and red algae. Trends Biochem. Sci., 11, 414-419, 1986.

33. Deisenhofer J., Epp J., Miki K., Huber R., Michel H. Structure of the protein subunits in the photosynthetic reaction centre of Rhodopseudomonas viridis at ЗА resolution. Nature, 318, 618-624, 1985.

Deiaenhofer J., Michel H., Huber R. The structural basis of photosynthetic light reactions in bacteria. Trends Biochem. Sci., 10, 243-248, 1985.

Knaff D. B. Reaction centers of photosynthetic bacteria. Trends Biochem. Sci., 13, 157-158, 1988.

Michel H., Epp D., Deisenhofer J, Pigment-protein interactions in the photosynthetic reaction center from Rhodopseudomonas viridis. EMBO J., 5, 2445-2451, 1986. (Three-dimensional structure by x-ray diffraction).

34. Govindjee ed. Photosynthesis: Energy Conversion by Plants and Bacteria. New York, Academic Press, 1982. (Two volumes of review articles at an advanced level.) Nugent J. H. A. Photosynthetic electron transport in plants and bacteria. Trends Biochem. Sci., 9, 354-357, 1984.

Scolnik P. A., Mans B. L. Genetic research with photosynthetic bacteria. Annu. Rev. Microbiol., 41, 703-726, 1987.

35. Blankenship R.E., Prince R.C. Excited-state redox potentials and the Z scheme of photosynthesis. Trends Biochem. Sci., 10, 382-383, 1985.

Prince R. C. Manganese at the active site of the chloroplast oxygen-evolving complex. Trends Biochem. Sci., 11, 491-492, 1986.

36. Anderson J. M. Photoregulation of the composition, function and structure of thylakoid membranes. Annu. Rev. Plant Physiol., 37, 93-136, 1986.

Carrillo N., Vallejos R. H. The light-dependent modulation of photosynthetic electron transport. Trends Biochem. Sci., 8, 52-56, 1983.

Miller K. R., Lyon M. K. Do we really know why chloroplast membranes stack? Trends Biochem. Sci., 10, 219-222, 1985.

37. Hinkle P. C., McCarty R.E. How cells make ATP. Sci. Am., 238(3), 104-123, 1978.

Jagendorf A. T. Acid-base transitions and phosphorylation by chloroplasts. Fed. Proc., 26, 1361-1369, 1967.

38. Flugge U. I., Heldt H. W. The phosphate-triose phosphate-phosphoglycerate translocator of the chloroplast. Trends Biochem. Sci., 9, 530-533, 1984.

Heber U., Heldt H. W. The chloroplast envelope: structure, function and role in leaf metabolism. Annu. Rev. Plant Physiol., 32, 139-168, 1981.

39. Raven J. A. Division of labor between chloroplast and cytoplasm. In: The Intact Chloroplast (J. Barber ed.), pp. 403-443, Amsterdam, Elsevier, 1976.

40. Wilson T. H., Lin E. C. C. Evolution of membrane bioenergetics. J. Supramol. Struct., 13, 421-446, 1980.

Woese C.R. Bacterial Evolution. Microbiol. Rev., 51, 221-271, 1987.

41. Gest H. The evolution of biological energy-transducting systems. FEBS Microbiol. Lett, 7, 73-77, 1980.

Gottschalk G. Bacterial Metabolism, 2nd ed. New York, Springer-Verlag, 1986. (Chapter 8 covers fermentations).

Miller S. M., Orgel L. E. The Origins of Life on the Earth. Englewood Cliffs, NJ. Prentice-Hall, 1974.

42. Danson M. J. Archaebacteria: the comparative enzymology of their metabolic pathways. Adv. Microb. Physiol., 29, 165-231, 1988.

Knowles C.J., ed. Diversity of Bacterial Respiratory Systems Vol. 1. Boca Raton FL. CRC Press, 1980.

43. Clayton R. K., Sistrom W. R. eds. The Photosynthetic Bacteria. New York, Plenum, 1978.

Deamer D. W. ed. Light Transducting Membranes: Structure, Function and Evolution. New York, Academic Press, 1978.

Gromet-Elhanan Z. Electrochemical gradients and energy coupling in photosynthetic bacteria. Trends Biochem. Sci., 2, 274-277, 1977.

Olson J. M., Pierson B. K. Evolution of reaction centers in photosynthetic prokaryotes. Int. Rev. Cytol., 108, 209-248, 1987.

44. Dicherson R. E. Cytochrome с and the evolution of energy metabolism. Sci. Am., 242(3), 136-153, 1980.

Gabellini N. Organization and structure of the genes for the cytochrome b/c complex in purple photosynthetic bacteria. A phylogenetic study describing the homology of the b/ci subunits between prokaryotes, mitochondria, and chloroplasts. J. Bioenerg. Biomembr., 20, 59-83, 1988.

Schopf J. W., Hayes J. M., Walter M. R. Evolution of earth's earliest ecosystems: recent progress and unsolved problems. In: Earth's Earliest Biosphere: Its Origin and Evolution (J. W. Schopf ed.), pp. 361-384. Princeton, NJ. Princeton University Press, 1983.

45. Attardi G., Schatz G. Biogenesis of mitochondria. Annu. Rev. Cell. Biol., 4, 289-333, 1988.

Ellis R. J. ed. Chloroplast biogenesis. Cambridge U. K., Cambridge University Press, 1984.

46. Clayton D.A. Replication of animal mitochondrial DNA. Cell 28, 693-705, 1982.

Posakony J.W., England J. M., Attardi G. Mitochondrial growth and division during the cell cycle in HeLa cells. J. Cell Biol., 74, 468-491, 1977.

47. Attardi G.;

Borst P., Slonimski P. P. Mitochondrial Genes. Cold Spring Harbor, NY. Cold Spring Harbor Laboratory, 1982.

Borst P., Grivell L. A., Groot G. S. P. Orga elle DNA. Trends Biochem. Sci., 9, 128-130, 1984.

Palmer J. D. Comparative organization of chloroplast genomes. Annu. Rev. Genet., 19, 325-354, 1985.

48. Grivell L. A. Mitochondrial DNA. Sci. Am., 248(3), 60-73, 1983.

Hoober J.K. Chloroplasts. New York, Plenum, 1984.

49. Ohyama K. et ah Chloroplast gene organization deduced from complete sequence of liverwort Marchantia polymorpha chloroplast DNA.

Nature, 322, 572-574, 1986.

Rochaix J. D. Molecular genetics of chloroplasts and mitochondria in the unicellular green alga Chlamydomonas. FEMS Microbiol. Rev., 46, 13-34, 1987.

Shinozaki K. et al. The complete nucleotide sequence of the tobacco chloroplast genome: its gene organization and expression. EMBO J., 5, 2034-2049, 1986.

Umesono K., Ozeki J. Chloroplast gene organization in plants. Trends Genet., 3, 281-287, 1987.

50. Anderson S. et al. Sequence and organization of the human mitochondrial genome. Nature, 290, 457-465, 1981.

Bibb M. J., Van Etten R. A., Wright С. Т., Walberg M. W., Clayton D. A. Sequence and gene organization of mouse mitochondrial DNA. Cell, 26, 167-180, 1981.

Breitenberger C.A., RajBhandary U.L. Some highlights of mitochondrial research based on analysis of Neurospora crassa mitochondrial DNA.

Trends Biochem. Sci., 10, 478-482, 1985.

Fox T.D. Natural variation in the genetic code. Annu. Rev. Genet, 21, 67-91, 1987.

51. Attardi G. Animal mitochondrial DNA: an extreme example of genetic economy. Int. Rev. Cytol., 93, 93-145, 1985.

Wilson A. The molecular basis of evolution. Sci. Am., 253(4) 164-173, 1985.

52. Levings C.S. The plant mitochondrial genome and its mutants. Cell, 32, 659-661, 1983.

Mulligan R. M., Walbot V. Gene expression and recombination in plant mitochondrial genomes. Trends Genet, 2, 263-266, 1986.

Newton K. J. Plant mitochondrial genomes: organization, expression and variation. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Моl. Biol., 39, 503-532, 1988.

53. Clayton D. A. Transcription of the mammalian mitochondrial genome. Annu. Rev. Biochem., 53, 573-594, 1984.

Gruissem W., Barken A., Deng S., Stern D. Transcriptional and post-transcriptional control of plastid mRNA in higher plants. Trendes Genet., 4, 258-262, 1988.

Mullet J. E. Chloroplast development and gene expression. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Моl. Biol., 39, 475-502, 1988.

Tabak H. F., Grivell L. A. RNA catalysis in the excision of yeast mitochondrial introns. Trends Genet, 2, 51-55, 1986.

54. Birky C. W., Jr. Transmission genetics of mitochondria and chloroplasts. Annu. Rev. Genet, 12, 471-512, 1978.

55. Giles R. E., Blanc H., Cann H. M., Wallace D. C. Material inheritance of human mitochondrial DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 6715 6719, 1980.

56. Bernardi G. The petite mulation in yeast. Trends Biochem. Sci., 4, 197-201, 1979.

Locker J., Lewin A., Rabinowitz M. The structure and organization of mitochondrial DNA from petite yeast. Plasmid, 2, 155-181, 1979.

Montisano D. P., James T. W. Mitochondrial morphology in yeast with and without mitochondrial DNA. J. Ultrastruct. Res., 67, 288-296, 1979.

57. Attardi G., Schatz G. Biogenesis of mitochondria. Annu. Rev. Cell Biol., 4, 289-333, 1988.

Fox T. D. Nuclear gene products required for translation of specific mitochondrially coded mRNAs in yeast. Trends Genet, 2, 97-99, 1986.

Tzagoloff A., Myers A. M. Genetics of mitochondrial biogenesis. Annu. Rev, Biochem., 55, 249-285, 1986.

58. Capaldi R. A. Mitochondrial myopathies and respiratory chain proteins. Trends Biochem. Sci., 13, 144-148, 1988.

DiMauro S. et al. Mitochondrial myopathies. J. Inherited Meta. Dis., 10(Suppl 1), 113-128, 1987.

59. Chua N.-H., Schmidt G. W. Post-translational transport into intact chloroplasts of a precursor to the small subunit of ribulose-l,5-bisphosphate carboxylase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75, 6110-6114, 1978.

Douglas M. G., McCammon M. Т., Vassarotti A. Targeting proteins into mitochondria. Microbiol. Rev., 50, 166-178, 1986.

Keegstra K., Bauerle C. Targeting of proteins into chloroplasts. Bioassays, 9, 15-19, 1988.

Schmidt G. W., Mishkind M. L. The transport of proteins into chloroplasts. Annu. Rev. Biochem., 55, 879-912, 1986.

60. Bishop W. R., Bell R. M. Assembly of phospholipids into cellular membranes: biosynthesis, transmembrane movement and intracellular translocation. Annu. Rev. Cell Biol, 4, 579-611, 1988.

61. Cavalier-Smith T. The origin of eukaryotic and archaebacterial cells. Ann. N.Y. Acad. Sci., 503, 17-54, 1987.

Butow B. A., Doeherty R., Parikh V. S. A path from mitochondria to the yeast nucleus. Philos. Trans. R. Soc. Lond. (Biol.), 319, 127-133, 1988.

Gellissen G., Michaelis G. Gene transfer: Mitochondria to nucleus. Ann. N. Y. Acad. Sci., 503, 391-401, 1987.

Margulis 1. Symbiosis in Cell Evolution. New York, W. H. Freeman, 1981.

Schwartz R. M., Dayhoff M. O. Origins of prikaryotes, eukaryotes, mitochondria, and chloroplasts. Science, 199, 395-403, 1978.

Whatley f. M., John P., Whatley F. R. From extracellular to intracellular: the establishment of mitochondria and chloroplasts. Proc. R. Soc.

Lond. (Biol.), 204, 165-187, 1979.

62. von Heijne G. Why mitochondria need a genome. FEBS Lett., 198, 1-4, 1986.

Оглавление Предисловие редактора перевода Предисловие ко второму изданию Предисловие к первому изданию Примечание для читателей 1. Эволюция клетки 12 1.2.13. Генетический материал эукариотических клеток 1.1. От молекул - к первой клетке 13 упакован очень сложно 1.1.1. Простые биологические молекулы могут образовываться в Заключение пребиотических условиях 1.3. От клеток - к многоклеточным организмам 1.1.2. Полинуклеотиды способны направлять собственный синтез 13 1.3.1. Одиночные клетки способны объединяться и oбразовывать колонии 1.1.3. Самореплицирующиеся молекулы подвержены естественному 1.3.2. Клетки высших организмов становятся отбору 15 специализированными и взаимозависимыми 1.1.4. Специализированные молекулы РНК могут катализировать 1.3.3. В основе многоклеточной организации лежит биохимические реакции 16 взаимодействие клеток 1.1.5. Информация передается от полинуклеотидов к полипептидам 1.3.4. Эпителиальные слои клеток окружают защищенную от 17 внешних воздействий внутреннюю среду организма 1.1.6. Первая клетка окружает себя мембраной 1.1.7. Все современные клетки используют ДНК в качестве 1.3.5. Межклеточные коммуникации определяют наследственного материала 20 пространственное строение многоклеточных организмов Заключение 1.2. От прокариот - к эукариотам 22 1.3.6. Клеточная память позволяет развиваться сложным формам 1.2.1. Прокариотические клетки имеют простую структуру, но 1.3.7. Основные программы развития имеют тенденцию различаются по биохимическим свойствам 22 сохраняться в процессе эволюции 1.3.8. Эукариотические организмы имеют сложный аппарат воспроизведения 1.2.2. Развитие метаболических реакций 1.2.3. Цианобактерии способны фиксировать СО2 и N2 26 1.3.9. Клетки позвоночных имеют более 200 различных типов специализации 1.2.4. Бактерии могут осуществлять аэробное окисление молекул 1.3.10..Клетки иммунной системы специализируются на пищи 27 химическом узнавании 1.2.5. Клетки эукариот содержат несколько характерных органелл 27 1.3.11. Нервные клетки позволяют организму быстро адаптироваться в изменяющихся условиях 1.2.6. Эукариотические клетки зависят от митохондрий, 1.3.12. Связи между нервными клетками определяют типы осуществляющих окислительный метаболизм 30 поведения 1.2.7. Хлоропласты представляют собой потомков «захваченных» Заключение прокариотических клеток 31 Литература 1.2.8. Эукариотические клетки содержат множество различных 2.

Малые молекулы, энергия и биосинтез внутренних мембран 1.2.9. Эукариотические клетки имеют скелет 34 2.1. Химические компоненты клетки 1.2.10. К царству простейших относятся наиболее сложные из 2.1.1. Основа клеточной химии – соединения … рода известных клеток 1.2.11. Гены можно включать и выключать 36 2.1.2. Клетки используют четыре основных типа молекул 1.2.12. Клетки эукариот содержат значительно больше ДНК, чем это необходимо для кодирования белков 2.1.3. Сахара как пища для клеток 2.1.4. Жирные кислоты - компоненты клеточных мембран 2.1.5. Аминокислоты - субъединицы белков 2.1.6. Нуклеотиды - субъединицы ДНК и РНК Заключение 2.2. Упорядоченность биологических систем и энергия 79 2.5.5. Реакции компартментализованы как на уровне клеток, так и на уровне всего организма 2.2.1. Упорядоченность биологических систем обусловлена Заключение выделением клеткой тепловой энергии 79 Литература 2.2.2. Фотосинтезирующие организмы используют солнечный 3. Макромолекулы: структура, форма и информационные свет для синтеза органических соединений 80 функции 3.1. Процессы молекулярного узнавания 2.2.3. Химическая энергия переходит от растений к 3.1.1. Специфические взаимодействия макромолекулы зависят от животным 81 слабых нековалентных связей 2.2.4. Клетки получают энергию в результате окисления 3.1.2. Спираль является общим структурным элементом биологических молекул 82 биологических молекул, построенных из повторяющихся субъединиц 2.2.5. Распад органических молекул осуществляется в результате последовательных ферментативных реакций 3.1.3. Диффузия - первая стадия молекулярного узнавания 2.2.6. Часть энергии, выделенной в реакциях окисления, 3.1.4. Тепловое движение не только приводит молекулы в расходуется на образование АТР 83 соприкосновение, но и отбрасывает их друг от друга 2.2.7. Гидролиз АТР обеспечивает упорядоченность в клетке 3.1.5. Атомы и молекулы находятся в постоянном движении Заключение 2.3. Питательные вещества и источники энергии клетки 85 3.1.6. Процесс молекулярного узнавания не может быть совершенно безошибочным 2.3.1. Молекулы питательных веществ, расщепляясь в три этапа, Заключение образуют АТР 3.2. Нуклеиновые кислоты 2.3.2. АТР в процессе гликолиза может образовываться даже в 3.2.1. Гены состоят из ДНК отсутствие кислорода 87 3.2.2. Молекулы ДНК состоят из двух длинных комплементарных цепей, удерживаемых вместе благодаря спариванию 2.3.3. Окислительный катаболизм поставляет значительно оснований большее количество биологически полезной энергии 3.2.3. Структура ДНК дает ключ к пониманию механизмов наследственности 2.3.4. Центральным процессом метаболизма является цикл лимонной кислоты 3.2.4. Ошибки репликации ДНК приводят к мутациям 2.3.5. При окислительном фосфорилировании перенос электронов к кислороду приводит к образованию АТР 3.2.5. Последовательность нуклеотидов в гене определяет последовательность аминокислот в белке 2.3.6. Аминокислоты и нуклеотиды принимают участие в 3.2.6. С последовательностей ДНК снимаются РНК-копии для круговороте азота 93 синтеза белка Заключение 94 3.2.7. Молекулы РНК эукариотических клеток подвергаются 2.4. Биосинтез и создание упорядоченности 94 сплайсингу, чтобы убрать интронные последовательности 2.4.1. Возможность протекания реакции определяется величиной изменения свободной энергии 3.2.8. Последовательность мРНК «считывается» группами по три нуклеотида и переводится в последовательность 2.4.2. Реакции биосинтеза зачастую непосредственно сопряжены аминокислот с гидролизом АТР 2.4.3. Коферменты участвуют в переносе специфических 3.2.9. Соответствие между аминокислотами и триплетами химических групп 100 нуклеотидов устанавливают молекулы тРНК 2.4.4. Для биосинтеза необходимы восстановительные эквиваленты 3.2.10. Считывание мРНК от одного конца до другого осуществляют рибосомы 2.4.5. Синтез биологических полимеров осуществляется путем повторения элементарных реакций дегидратации 3.2.11. Некоторые молекулы РНК функционируют как катализаторы Заключение 104 Заключение 2.5. Координация катаболизма и биосинтеза 104 3.3. Структура белка 2.5.1. Метаболизм - организуемый и регулируемый процесс 104 3.3.1. Форма белковой молекулы определяется ее амино-кислотной последовательностью 2.5.5. Реакции компартментализованы как на уровне клеток, так и на уровне всего организма 2.5.2 Метаболические пути регулируются изменениями ферментативной активности Заключение 2.5.3. Катаболические реакции могут обращаться при Литература поглощении энергии 3. Макромолекулы: структура, форма и информационные функции 2.5.4. Ферменты могут переходить в активное или неактивное состояния путем ковалентных модификаций 3.1. Процессы молекулярного узнавания 3.1.1. Специфические взаимодействия макромолекулы 3.3.5. Сравнительно немногие потенциально возможные 4.1.3. Различные компоненты клетки можно окрашивать по полипептидные цепи могут оказаться полезными 146 разному 4.1.4. Специфические молекулы могут быть локализованы в клетках с помощью флуоресцентной микроскопии 3.3.6. Новые белки часто возникают в результате незначительных изменений старых 3.3.7. Новые белки часто возникают в результате объединения 4.1.5. Фазово-контрастный и интерференционный микроскопы разных полипептидных доменов 148 позволяют изучать живые клетки 3.3.8. Структурные гомологии могут помочь в определении 4.1.6. Изображение можно усиливать или анализировать с функций вновь открытых белков 149 помощью электронных методов 3.3.9. Белковые субъединицы способны к самосборке в большие 4.1.7. Электронный микроскоп позволяет анализировать тонкую клеточные структуры 150 структуру клетки 3.3.10. Одинаковые белковые субъединицы могут взаимодействовать 4.1.8. Для наблюдения под электронным микроскопом с образованием геометрически регулярных структур 150 биологические образцы необходимо подвергнуть специальной обработке 3.3.11. Самособирающиеся структуры могут состоять из различных 4.1.9. Сканирующий электронный микроскоп используется для белковых субъединиц и нуклеиновых кислот 153 получения трехмерного изображения поверхности 3.3.12. Не все клеточные структуры образуются путем самосборки 4.1.10. Для изучения деталей поверхности в просвечивающем 154 электронном микроскопе используют оттенение Заключение 3.4. Функции белков 155 4.1.11. Методы электронной микроскопии замораживание 3.4.1. Конформация белка определяет его химические свойства 156 скалывание и замораживание –травление обеспечивают 3.4.2. Связывание субстрата - первая стадия ферментативного уникальную возможность наблюдать внутреннее строение катализа 158 клетки 4.1.12. Методы негативного контрастирования и криоэлектронной микроскопии обеспечивают высокое разрешение при 3.4.3. Ферменты ускоряют реакции, но не смещают химического анализе макромолекул равновесия 3.4.4. Многие ферменты заставляют реакции протекать 4.1.13. Детальная структура молекул, образующих преимущественно в одном направлении, сопрягая их с кристаллическую решетку, может быть рассчитана на гидролизом АТР 160 основании полученных дифракционных картин 3.4.5. Мультиферментные комплексы повышают скорость клеточного метаболизма 4.1.14. Дифракция рентгеновских лучей дает возможность выявить трехмерную организацию атомов в молекулах 3.4.6. Внутриклеточные мембраны ускоряют реакции, лимитируемые диффузией 3.4.7. Молекулы белка способны обратимо изменять свою форму Заключение 4.2. Изучение химической среды в живых клетках 3.4.8. Аллостерические белки участвуют в регуляции метаболизма 4.2.1. Для определения химических условий в популяции живых клеток можно использовать ядерный магнитный резонанс 3.4.9. Аллостерические белки совершенно необходимы для (ЯМР) клеточной сигнализации 3.4.10. Белки можно заставить изменять конформацию 163 4.2.2. Концентрацию ионов можно измерять внутриклеточными электродами 3.4.11. Изменения конформации белка, происходящие с затратой 4.2.3. Быстрые изменения концентрации внутриклеточных ионов энергии, могут быть использованы для выполнения полезной можно измерять с помощью светоизлучающих индикаторов работы 165 3.4.12. Мембранные аллостерические белки, используя энергию АТР, 4.2.4. Существует несколько методов для введения в клетки могут служить молекулярными насосами 166 молекул, не проникающих через мембрану 3.4.13. Белки могут мобилизовать энергию ионных градиентов для Заключение выполнения полезной работы 4.3. Разделение клеток и их культивирование 3.4.14. Белковые машины играют основную роль во многих 4.3.1. Клетки можно выделить из тканей и разделить на биологических процессах 167 различные типы Заключение 167 4.3.2. Клетки можно выращивать в культуральном сосуде Литература 4. Как изучают клетки 172 4.3.3. С помощью сред определенного химического состава 4.1. Микроскопия 172 можно идентифицировать специфические факторы роста 4.1.1. С помощью светового микроскопа можно различить объекты, отстоящие друг от друга на 0,2 мкм 4.3.4. Для получения гомогенных клеток обычно используют клеточные линии эукариот 4.3.5.. Слияние клеток приводит к образованию клеточных гибридов 4.1.2. Для проведения микроскопических исследований ткани обычно фиксируют и режут Заключение 4.4. Фракционирование клеточного содержимого 208 4.6.9. Искусственные ДНК-зонды позволяют проводить дородовую диагностику наследственных болезней 4.4.1. С помощью ультрацентрифугирования можно разделять органеллы и макромолекулы 4.4.2. Детали сложных внутриклеточных процессов на молекулярном 4.6.10. Гибридизация позволяет выявлять и отдаленно уровне можно расшифровать в бесклеточных системах 210 родственные гены 4.6.11. Для локализации специфических последовательностей нуклеиновых кислот в хромосомах и клетках 4.4.3. Для фракционирования белков можно использовать используют гибридизацию in situ хроматографию 4.4.4. С помощью электрофореза в полиакриламидном геле в 4.6.12. Методы рекомбинантных ДНК дают возможность присутствии додецилсульфата натрия (ДСН) можно определить изучать даже минорные белки клеток размеры и субъединичный состав белков 4.6.13. Функция генов наиболее ярко проявляется в организме мутантов 4.4.5. Методом гель-электрофореза можно разделить в одном геле 4.6.14. Клетки и организмы, содержащие измененные гены, более 1000 белков 216 можно исправить 4.4.6. Избирательное расщепление белка приводит к образованию 4.6.15. С помощью искусственных генов, кодирующих характерного набора пептидных фрагментов 219 антисмысловые РНК, можно создавать специфические доминантные мутации 4.4.7. С помощью автоматических приборов можно анализировать Заключение короткие аминокислотные последовательности Литература 5. Основные генетические механизмы Заключение 220 5.1. Синтез РНК и белка 4.5. Изучение клеточных макромолекул с помощью антител и 5.1.1. РНК-полимераза «переписывает» заключенную в ДНК радиоактивных изотопов 221 информацию в виде РНК: процесс транскрипции 4.5.1. Методы выявления радиоактивных атомов отличаются высокой чувствительностью 5.1.2. Промоторная последовательность определяет, какая именно цепь ДНК будет транскрибироваться 4.5.2. Радиоактивные изотопы используют для изучения перемещения молекул в клетках и в целом организме 5.1.3. Молекулы транспортных РНК служат адапторами, переводящими нуклеотидные последовательности в 4.5.3. Для выявления и выделения специфических молекул можно аминокислотные использовать антитела 4.5.4. Клеточные линии гибридом служат источником 5.1.4. Каждая аминокислота присоединяется к моноклональных антител 226 соответствующей молекуле тРНК при помощи специфического фермента 4.5.5. Антитела и другие макромолекулы можно инъецировать в живые клетки 5.1.5. Аминокислоты присоединяются к карбоксильному концу растущей полипептидной цепи Заключение 4.6. Технология рекомбинантных ДНК 228 5.1.6. Генетический код вырожден 4.6.1. Технология рекомбинантных ДНК революционизировала 5.1.7. Реакции синтеза белка протекают на рибосомах клеточную биологию 4.6.2. Рестрицирующие нуклеазы расщепляют ДНК в специфических 5.1.8. Рибосома продвигается шаг за шагом вдоль цепи мРНК участках нуклеотидных последовательностей 230 5.1.9. Белковая цепь отделяется от рибосомы, как только она достигает одного из трех терминирующих кодонов 4.6.3. Клонирование ДНК позволяет получать любые последовательности ДНК в большом количестве 5.1.10. Рамка считывания матрицы устанавливается в момент инициации синтеза полипептидной цепи 4.6.4. Метод гель-электрофореза позволяет быстро фракционировать молекулы ДНК разного размера 5.1.11. У эукариот на каждой молекуле мРНК синтезируется только один вид полипептидных цепей 4.6.5. Очищенные молекулы ДНК можно метить радиоизотопами in vitro 5.1.12. Множество рибосом, присоединившихся к одной молекуле мРНК, образуют полисому 4.6.6. Выделенные фрагменты ДНК можно легко секвенировать 5.1.13. Общая скорость белкового синтеза регулируется у эукариот факторами инициации 4.6.7. Реакция гибридизации нуклеиновых кислот - чувствительный метод выявления специфических последовательностей 5.1.14. Точность белкового синтеза обеспечивается двумя нуклеотидов различными механизмами 4.6.8. Методы Нозерн- и Саузерн-блоттинга позволяют гибридизовать 5.1.15. Многие ингибиторы белкового синтеза прокариот молекулы нуклеиновых кислот, предварительно эффективные антибиотики фракционированные с помощью электрофореза 5.1.16. Эволюция белкового синтеза Заключение 5.2. Механизмы репарации ДНК 276 5.4.2. Общая рекомбинация инициируется в точке разрыва одной из двух цепей двойной спирали ДНК 5.2.1. Высокая надежность сохранения нуклеотидных последовательностей ДНК 5.2.2. Скорость мутирования в растущих клетках совпадает с 5.4.3. Гибридизация ДНК может служить моделью этапа общей оценками, полученными на основе эволюционных рекомбинации, связанного с комплементарным спариванием исследований 277 5.2.3. Большинство мутаций, изменяющих белки, вредны и 5.4.4. Белок rесА у Е. coli дает возможность одиночным цепям элиминируются естественным отбором 278 ДНК спариваться с гомологичным участком двойной спирали ДНК 5.2.4. Наблюдаемые низкие частоты мутаций необходимы для сохранения вида в целом и каждого индивидуума 5.4.5. Общая генетическая рекомбинация включает обычно обмен с перекрещиванием цепей 5.2.5. Низкие частоты мутаций означают, что родственные организмы 5.4.6. Общая генетическая рекомбинация в сочетании с построены практически из одних и тех же белков 279 ограниченным синтезом ДНК ведет к конверсии генов 5.2.6. Без коррекции спонтанные повреждения в ДНК быстро 5.4.7. Ферменты сайт-специфической рекомбинации вводят в изменили бы ее нуклеотидные последовательности 280 геном особые нуклеотидные последовательности ДНК и выводят их из геномов 5.2.7. Стабильность генов обеспечивается репарацией ДНК 281 Заключение 5.5. Вирусы, плазмиды и транспозоны 5.2.8. Различные типы повреждений в ДНК распознаются разными 5.5.1. Вирусы - это мобильные генетические элементы ферментами 5.2.9. Клетки синтезируют репарирующие ферменты в ответ на 5.5.2. Вирус заключен в белковый капсид или в мембранную повреждение ДНК 284 оболочку 5.2.10. Особенности структуры и химические свойства двойной 5.5.3. Геномы вирусов представлены разнообразными формами, а спирали ДНК облегчают ее репарацию 285 генетическим материалом у них может быть как ДНК, так и РНК Заключение 286 5.5.4. Хромосома вируса содержит информацию для синтеза 5.3. Механизмы репликации ДНК 287 ферментов, участвующих в репликации вирусной нуклеиновой кислоты 5.3.1. Репликация ДНК, как и ее репарация, основана на комплементарном спаривании оснований 5.5.5. РНК-вирусы и ДНК-вирусы реплицируются путем образования комплементарных цепей 5.3.2. Репликационная вилка асимметрична 5.3.3. Высокая точность репликации ДНК предполагает наличие 5.5.6. Хромосомы вирусов способны включаться в хромосомы механизма, осуществляющего коррекцию 289 клетки-хозяина 5.5.7. Непрерывный синтез вирусных белков может превращать нормальные клетки в раковые 5.3.4. Репликация ДНК в направлении 5' 3' обеспечивает эффективную коррекцию 5.5.8. Опухолевые РНК-вирусы принадлежат к классу ретровирусов 5.3.5. Для синтеза коротких затравочных молекул на матрице отстающей цепи требуется особый фермент 5.5.9. Некоторые транспозоны очень сходны с ретровирусами 5.3.6. Особые белки способствуют расплетанию двойной спирали 5.5.10. У другой группы транспозонов переход совершается ДНК перед репликационной вилкой 292 непосредственно из одного участка генома в другой 5.3.7. Белки в репликационной вилке действуют кооперативно, образуя «репликационную машину» 5.5.11 Большинство вирусов, вероятно, возникло в процессе эволюции из плазмид 5.3.8. Ошибки при репликации ДНК в бактериальных клетках устраняются особой корректирующей системой, распознающей Заключение неправильное спаривание оснований 5.6. Клонирование ДНК и генная инженерия 5.6.1. Рестрицирующие нуклеазы облегчают клонирование генов 5.3.9. Репликационные вилки возникают в точках начала репликации 5.6.2. Получение библиотеки ДНК с помощью вирусных или плазмидных векторов 5.3.10. ДНК-топоизомеразы предотвращают спутывание ДНК во время репликации 5.6.3. Два типа библиотек ДНК используется для разных целей 5.3.11. Репликация ДНК у эукариот и прокариот в основных чертах сходна 5.6.4. Библиотеки кДНК могут быть получены из отобранных популяций молекул мРНК Заключение 5.4. Механизмы генетической рекомбинации 301 5.6.5. Для выявления нужных клонов в генной библиотеке можно 5.4.1. Процессы общей рекомбинации направляются использовать гибридизацию с радиоактивным ДНК-зондом взаимодействиями, обусловленными спариванием оснований между комплементарными цепями гомологичных спиралей 5.6.6. Выделение перекрывающихся клонов ДНК («прогулка по ДНК хромосоме») позволяет идентифицировать ген, находящийся по соседству с тем, который уже клонирован 5.6.7. Трансляция in vitro облегчает идентификацию 6.3. Мембранные углеводы надлежащего клона ДНК 6.3.1. Углеводы в биологических мембранах располагаются только на поверхности, не контактирующей с цитозолем 5.6.8. Экспрессирующие векторы могут быть использованы для сверхпродукции белков 5.6.9. Гены можно «перестраивать» и таким путем получать Заключение белки с желаемой аминокислотной последовательностью 6.4. Перенос малых молекул через мембрану 337 6.4.1. Липидные бислой, не содержащие белков, непроницаемы для ионов, но свободно пропускают воду 5.6.10. Сконструированные гены можно ввести в половые клетки мыши или плодовой мушки и получить трансгенные организмы 6.4.2. Мембранные транспортные белки могут работать как переносчики или каналы 5.6.11. Отобранные сегменты ДНК можно клонировать in vitro посредством полимеразной цепной реакции 6.4.3. Активный транспорт осуществляется белками переносчиками, связанными с источником энергии 5.6.12. Применение рекомбинантных ДНК сильно облегчает картирование и анализ крупных геномов 6.4.4. Белки-переносчики действуют как связанные с мембраной ферменты Заключение 343 6.4.5. (Na+ + К+)-насос плазматической мембраны – это АТРаза Литература 344 + 6. Плазматическая мембрана 349 6.4.6. (Na+ + К )- АТРаза необходима для поддержания осмотического равновесия и стабилизации объема клеток 6.1. Липидный бислой 6.1.1. Мембранные липиды - это амфипатические молекулы, самопроизвольно формирующие бислои 6.4.7. Некоторые Са2+ -насосы - это тоже мембраносвязанные АТРазы 6.1.2. Липидный бислой - это двумерная жидкость 352 6.4.8. Мембраносвязанные ферменты, синтезирующие АТР, это транспортные АТРазы, действующие в обратном 6.1.3. Текучесть липидного бислоя зависит от его состава направлении 6.1.4. Липидный бислой служит растворителем для мембранных 6.4.9. Активный транспорт может осуществляться с помощью белков 355 ионных градиентов 6.1.5. Липидный бислой асимметричен 356 6.4.10. Антипорты в плазматической мембране регулируют 6.1.6. Гликолипиды обнаруживаются на поверхности всех внутриклеточное значение рН плазматических мембран, однако их функция неизвестна 6.4.11. В основе межклеточного транспорта растворенных веществ лежит асимметричное распределение белков переносчиков в клетках эпителия Заключение 6.2. Мембранные белки 360 6.4.12. Активный транспорт в бактериях может идти путем векторного переноса групп 6.2.1. Полипептидная цепь многих мембранных белков пронизывает липидный бислой один или более раз 6.4.13. Бактерии с двойными мембранами обладают транспортными системами, которые зависят от водорастворимых субстрат - связывающих белков 6.2.2. Мембранные белки могут быть растворены и очищены в растворах детергентов 6.4.14. Белковые каналы образуют в плазматической мембране поры 6.2.3. Поверхность мембранных белков, обращенную к цитоплазме, можно изучать на примере «теней» 6.4.15. Мембранный потенциал зависит от К+ -проточных эритроцитов каналов и градиента К+ через мембрану 6.2.4. Спектрин - белок цитоскелета, нековалентно связанный с 6.4.16. Потенциал-зависимые воротные ионные каналы цитоплазматической стороной мембраны эритроцитов 365 ответственны за электрическую возбудимость нервных и мышечных клеток 6.2.5. Гликофорин пронизывает липидный бислой в виде 6.4.17. Регистрация токов, проходящих через изолированный одиночной -спирали 367 участок мембраны, показывает, что индивидуальные Na+ каналы открываются по принципу «все или ничего» 6.2.6. Полоса 3 из мембраны эритроцитов человека представляет собой белок, транспортирующий анионы 6.4.18. Ацетилхолиновый рецептор - это трансмиттер-зависимый 6.2.7. Бактериородопсин - это протонный насос, катионный канал пронизывающий бислой в виде семи -спиралей 6.4.19. Нервно-мышечная передача включает в себя последовательную активацию по крайней мере четырех 6.2.8. Четыре полипептидных цепи в мембраносвязанном различных наборов воротных каналов комплексе образуют фотосинтезирующий реакционный центр у бактерий 6.4.20. Ионофоры повышают ионную проницаемость мембран 6.2.9. Многие мембранные белки диффундируют в плоскости мембраны Заключение 6.2.10. Клетки могут объединять белки и липиды в 6.5. Перенос через мембрану макромолекул и частиц:

специфические домены на мембране 375 экзоцитоз и эндоцитоз Заключение 376 6.5.1. Существуют два пути экзоцитоза - конститутивный 6.5.2. Регулируемый экзоцитоз - это локальный ответ мощью трех больших ферментных комплексов плазматической мембраны и находящейся под ней дыхательной цепи цитоплазмы 7.1.7. Энергия, высвобождаемая в процессе переноса 6.5.3. Существуют два вида эндоцитоза: пиноцитоз и фагоцитоз электронов по дыхательной цепи, запасается в форме 410 электрохимического протонного градиента на внутренней мембране митохондрий 6.5.4. Пиноцитозные пузырьки образуют окаймленные ямки в плазматической мембране 7.1.8. Энергия электрохимического протонного градиента 6.5.5. Окаймленные ямки содержат клатрин 412 используется для синтеза АТР и транспорта метаболитов 6.5.6. Существуют по крайней мере два типа окаймленных и неорганических ионов в матрикс пузырьков 6.5.7. Эндоцитоз, опосредуемый рецепторами, служит 7.1.9. Быстрое превращение ADP в АТР в митохондриях концентрирующим приспособлением для поглощения позволяет поддерживать высокое отношение специфических внеклеточных макромолекул 413 концентраций ATP/ADP в клетках 7.1.10. Разница между G0 и G. Для того чтобы клетка могла 6.5.8. Клетки поглощают холестерол вместе с липопротеинами использовать гидролиз АТР, необходима большая низкой плотности (ЛНП) путем опосредуемого отрицательная величина G рецепторами эндоцитоза 7.1.11. Клеточное дыхание необычайно эффективно 6.5.9. Содержимое эндосом попадает в лизосомы, если не Заключение возвращается обратно специфическим образом 7.2. Дыхательная цепь и АТР-синтетаза 7.2.1. Из митохондрий можно выделить функционально 6.5.10. Комплексы лиганд-рецептор сортируются внутри эндосом активные частицы, «вывернутые наизнанку» 7.2.2. АТР-синтетазу можно выделить и снова встроить в 6.5.11. Макромолекулы могут переноситься через складки мембрану в активной форме эпителиальных клеток в процессе трансцитоза 7.2.3. АТР-синтетаза может действовать в обратном направлении - расщеплять АТР и перекачивать протоны 6.5.12. Окаймленные ямки и пузырьки обеспечивают главный путь жидкофазного эндоцитоза во многих клетках 7.2.4. Дыхательная цепь переносит ионы Н+ через внутреннюю митохондриальную мембрану 6.5.13. Эндоцитозный цикл может иметь отношение к движению 7.2.5. Многие переносчики электронов могут быть клеток и к феномену «кэппинга» 419 идентифицированы с помощью методов спектроскопии 6.5.14. Специализированные клетки - фагоциты - поглощают частицы, связывающиеся со специфическими рецепторами 7.2.6. Дыхательная цепь содержит три больших ферментных на их поверхности 420 комплекса, встроенных во внутреннюю мембрану 6.5.15. Фагоцитоз - это локальная ответная реакция, осуществляющаяся путем «застегивания» мембраны по 7.2.7. Перенос электронов осуществляется путем случайных принципу застежки-молнии столкновений между донорами и акцепторами электронов, диффундирующими во внутренней 6.5.16. Слияние мембран при экзоцитозе и эндоцитозе, вероятно, митохондриальной мембране катализируется специальными белками слияния 7.2.8. Значительный перепад окислительно Заключение 425 восстановительного потенциала на каждом из трех Литература 425 комплексов дыхательной цепи доставляет энергию, необходимую для перекачивания протонов 7. Преобразование энергии: митохондрии и хлоропласты 7.2.9. Механизмы перекачивания протонов компонентами 7.1. Митохондрии 431 дыхательной цепи еще не вполне ясны 7.1.1. Митохондрии имеют наружную и внутреннюю мембраны, 7.2.10. Н+-ионофоры рассеивают протонный градиент и тем образующие два внутренних компартмента 431 самым разобщают транспорт электронов и синтез АТР 7.1.2. Внутренняя мембрана образует складки - кристы 434 7.2.11. В нормальных условиях поток электронов по дыхательной цепи сдерживается дыхательным контролем 7.1.3. Окислительные процессы в митохондриях начинаются после образования в матриксе достаточного количества 7.2.12. Природные разобщители превращают митохондрии ацетил-СоА из пирувата и жирных кислот бурой жировой ткани в генераторы тепла 7.2.13. Все бактерии используют хемиосмотические механизмы 7.1.4. Окисление ацетильной группы до ацетил-СоА в цикле лимонной кислоты ведет к образованию молекул NADH и Заключение FADH2 для дыхательной цепи 7.3. Хлоропласты и фотосинтез 7.3.1. Хлоропласты сходны с митохондриями, но имеют один дополнительный компартмент 7.1.5. На митохондриальной мембране энергия окислительных реакций преобразуется в результате хемиосмотического 7.3.2. В хлоропластах осуществляются две уникальные мощью процесса в энергию АТР трех больших ферментных комплексов дыхательной цепи 7.1.6. Электроны переносятся с NADH на кислород с по- реакции: образование АТР и NADPH за счет энергии преодолеть серьезный кризис в эволюции клетки света и превращение СО2 в углеводы 7.3.3. Фиксацию углерода катализирует рибулозобисфосфат- 7.4.4. Первый атмосферный кислород был, вероятно, продуктом карбоксилаза 463 более сложных фотосинтетических электронтранспортных цепей цианобактерий 7.3.4. В цикле фиксации углерода на одну связанную молекулу СО2 затрачиваются три молекулы АТР и две молекулы Заключение NADPH 7.5. Геномы митохондрий и хлоропластов 7.3.5. Для облегчения роста некоторых тропических растений 7.5.1. Число митохондрий и хлоропластов в клетке поддерживается в условиях низких концентраций СО2 фиксация углерода путем их деления в их листьях компартментализована 7.5.2. В большинстве случаев геномы хлоропластов и митохондрий представлены кольцевыми молекулами ДНК 7.3.6. Фотосинтез определяется фотохимией молекулы хлорофилла 7.5.3. Митохондрии и хлоропласты обладают полноценной генетической системой 7.3.7. Фотосистема содержит реакционный центр и антенный комплекс 7.5.4. Геном хлоропластов высших растений содержит около генов 7.3.8. Лучистая энергия, поглощенная хлорофиллом реакционного центра, используется для замены слабого 7.5.5. Геном митохондрий имеет ряд поразительных особенностей донора электронов сильным 7.3.9. В процессе бактериального фотосинтеза на 7.5.6. Митохондрии животных имеют самую простую из известных плазматической мембране создается электрохимический генетических систем протонный градиент энергия которого используется для 7.5.7. Почему у растений такой большой митохондриальный геном?

синтеза как ATP, так и NADPH 470 7.3.10. У растений и цианобактерий в результате 7.5.8. Некоторые гены органелл содержат интроны нециклического фотофосфорилирования образуются как 7.5.9. Неменделевское (цитоплазматическое) наследование NADPH, так и АТР 472 митохондриальных генов позволяет отличать их от генов клеточного ядра 7.3.11. В процессе циклического фотофосфорилирования хлоропласты могут синтезировать АТР без образования 7.5.10. У многих организмов гены органелл наследуются по NADPH материнской линии 7.3.12. Геометрия перемещения протонов в митохондриях и в 7.5.11. Как показывает изучение мутантов "petite" у дрожжей, хлоропластах сходна 475 важнейшую роль в биогенезе митохондрий играет клеточное ядро 7.3.13. Внутренняя мембрана хлоропласта, подобно внутренней мембране митохондрии, содержит белки-переносчики, 7.5.12. Образование митохондрий и хлоропластов регулируется облегчающие обмен метаболитами с цитозолем белками, кодируемыми ядерным генопреодолеть серьезный кризис в эволюции клетки 7.3.14. Хлоропласты осуществляют и другие биосинтетические реакции 7.4.4. Первый атмосферный кислород был, вероятно, продуктом более сложных фотосинтетических электронтранспортных Заключение цепей цианобактерий 7.4. Эволюция электронтраиспортных цепей 7.4.1. Древнейшие клетки, вероятно, синтезировали АТР с Заключение помощью процессов брожения 477 7.5. Геномы митохондрий и хлоропластов 7.4.2. Появление электронтранспортной цепи, запасающей 7.5.1. Число митохондрий и хлоропластов в клетке поддерживается энергию, позволило анаэробным бактериям путем их деления использовать в качестве источника энергии 7.5.2. В большинстве случаев геномы хлоропластов и митохондрий несбраживаемые органические соединения 478 представлены кольцевыми молекулами ДНК 7.4.3. Фотосинтезирующие бактерии, найдя неисчерпаемый источник восстановительной силы, смогли 7.5.3. Митохондрии и хлоропласты обладают полноцен- Содержание книги Том I Введение в биологию клетки 1. Эволюция клетки 2. Малые молекулы, энергия и биосинтез 3. Макромолекулы: структура, форма и информационные функции 4. Как изучают клетки?

II Молекулярная организация клеток 5. Основные генетические механизмы 6. Плазматическая мембрана 7. Преобразование энергии: митохондрии и хлоропласты Том II Молекулярная организация клеток (продолжение) 8. Внутриклеточная сортировка макромолекул и сохранение клеточных компартментов 9. Клеточное ядро 10. Контроль генной экспрессии 11. Цитоскелет 12. Межклеточная сигнализация 13. Рост и деление клеток 14. Межклеточная адгезия, клеточные соединения и внеклеточный матрикс Том III От клеток к многоклеточным организмам 15 Половые клетки и оплодотворение 16 Клеточные механизмы развития 17 Дифференцировка клеток и поддержание нормальной организации тканей 18 Иммунная система 19 Нервная система 20 Особенности растительных клеток 21 Рак УВАЖАЕМЫЙ ЧИТАТЕЛЬ!

Ваши замечания о содержании книги, ее оформлении, качестве перевода и другие просим присылать по адресу:

129820, Москва 1-Рижский пер., д. 2, издательство «Мир» Учебное издание Брюс Албертс, Деннис Брей, Джулиан Льюис и др.

МОЛЕКУЛЯРНАЯ БИОЛОГИЯ КЛЕТКИ 2-е издание, переработанное и дополненное В 3-х томах Том Заведующая редакцией канд. биол. наук М. Д. Гроздова, Научный консультант редакции акад. Т. М. Турпаев, Ведущие редакторы М. Р. Погосбекова, Ю. И. Лашкевич Редакторы М. С. Карнюшина, Н. Ю. Плавинская Художник Е. И. Волков Художественные редакторы А. Е. Волков, Л. М. Аленичева Технический редактор М. А. Страшнова Корректор Т. М. Подгорная ИБ № Лицензия Л.Р № 010174 от 22.01.92 г.

Сдано в набор 03.02.92. Подписано к печати 04.01.94.

Формат 84 х 1081/16 - Бумага офсетная. Печать офсетная.

Гарнитура тайме. Объем 16,25 бум. л. Усл. печ. л. 54,60.

Усл. кр.-отт. 108,78. Уч.-изд. л. 55,53.

Изд. № 4/7791. Тираж 10000 экз. Зак. 1321. С Издательство «Мир» Комитета Российской Федерации по печати 129820, ГСП, Москва, И-110, 1-й Рижский пер., Можайский полиграфкомбинат Комитета Российской Федерации по печати 143200, г. Можайск, ул. Мира, Издательство «Мир» выпускает в 1994 г.

следующие книги Ревель П., Ревель Ч. "СРЕДА НАШЕГО ОБИТАНИЯ", в 4-х книгах. Пер. с англ. - 78 л., ил.

Кн. I. Народонаселение и пищевые ресурсы Кн. II. Загрязнение воды и воздуха Кн. III. Энергетические проблемы человечества Кн. IV. Здоровье и среда, в которой мы живем Книга американских авторов - доступное, ясное и интересно написанное руководство по экологии и охране окружающей среды.

Pages:     | 1 |   ...   | 9 | 10 ||



© 2011 www.dissers.ru - «Бесплатная электронная библиотека»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.